方法文章

基于β-内酰胺酶的导电生物传感器检测法用于检测生物分子相互作用

DOI：

10.3791/55414

⸱

2018年2月1日

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1Life Science Department, University of Liège, 2Institute of Condensed Matter and Nanoscience, Catholic University of Louvain, 3Laboratory of Clinical Microbiology, Catholic University of Louvain, 4Biotechnology Department, CER Group

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

在本研究中，我们报道了一种基于杂合β-内酰胺酶技术的电导型生物传感器新方法，用于研究蛋白质-蛋白质相互作用。该方法依赖于β-内酰胺水解过程中质子的释放。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

生物传感器正变得越来越重要，并已广泛应用于病原体检测、分子诊断、环境监测和食品安全控制等多个领域。在本研究中，我们利用β-内酰胺酶作为高效的报告酶，开展了多项蛋白质-蛋白质相互作用研究。此外，这类酶能够接受肽段或结构化蛋白质/结构域的插入，这极大地促进了其在构建嵌合蛋白中的应用。在最近的一项研究中，我们将一个单结构域抗体片段插入到Bacillus licheniformis BlaP β-内酰胺酶中。这些小型结构域也被称为纳米抗体，定义为骆驼科动物来源的单链抗体的抗原结合结构域。与常见的双链抗体类似，它们对其靶标具有高亲和力和高特异性。所获得的嵌合蛋白在保持β-内酰胺酶活性的同时，对其靶标表现出高亲和力，表明纳米抗体和β-内酰胺酶两个部分均保持功能完整。在本研究中，我们报道了一种详细的实验方案，将我们的杂合β-内酰胺酶系统与生物传感器技术相结合。通过检测酶催化活性所释放的质子引起的电导率变化，可实现对纳米抗体与其靶标特异性结合的检测。

引言

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

生物传感器是一类分析装置，它将生物分子相互作用与被称为换能器的物理或化学信号装置相结合1。所记录的信号可被解读并转换，用于监测固定化分子与游离分子之间的相互作用。大多数生物传感器使用抗体来检测分析物，例如激素或不同病原体标志物2。可采用多种传感器形式，包括基于质量、磁性、光学或电化学的生物传感器。其中，电化学生物传感器是使用最广泛的传感器之一，其功能是将结合事件转化为电信号。所有基于抗体的生物传感器的性能和灵敏度主要取决于两个关键参数：i）抗体的质量；ii）用于产生信号的系统的特性2。

抗体是高分子质量的二聚体蛋白（150–160 kDa），由两条重链和两条轻链组成。轻链与重链之间的相互作用主要通过疏水相互作用以及一个保守的二硫键来稳定。每条链均包含一个可变区，该区主要通过三个称为互补决定区（CDR1-2-3）的高变区与抗原相互作用。尽管该领域已取得诸多进展，但在低成本表达系统中大规模表达全长抗体仍面临挑战。例如, E. coli）常常导致不稳定且易聚集的蛋白质产生。因此，人们已设计出多种抗体片段，例如单链可变区片段3 （ScFvs ≈ 25 kDa）。它们由一条重链和一条轻链的可变区组成，通过一段合成的氨基酸序列共价连接。然而，由于这些片段会将其疏水区域的较大部分暴露于溶剂中，因此往往稳定性较差，并具有聚集倾向。4在此背景下，单链骆驼科抗体片段（称为纳米抗体或VHHs）似乎是ScFvs的理想替代物。这些结构域对应于骆驼科单链抗体的可变区。与传统抗体不同，骆驼科抗体不含轻链，仅包含两条重链。5因此，纳米抗体是能够以与传统抗体相似的亲和力结合抗原的最小单体抗体片段（12 kDa）。6此外，与其它全长抗体或抗体片段相比，它们具有更高的稳定性和溶解性。最后，由于其分子尺寸较小且互补决定区3（CDR3）环较长，能够识别隐蔽的表位并结合酶的活性位点。7,8如今，这些领域正受到广泛关注，并已被整合到生物传感器技术中。例如，Huang 等开发了一种基于纳米抗体的生物传感器，用于检测和定量人前列腺特异性抗原（PSA）9.

如上所述，生物传感器检测中的一个重要参数是用于产生电信号的系统的效率。因此，基于酶的电化学生物传感器受到越来越多的关注，并已广泛应用于医疗保健、食品安全和环境监测等多个领域。这类生物传感器依赖于酶对底物的催化水解反应来产生电信号。在此背景下，已有研究表明，与碱性磷酸酶或辣根过氧化物酶等其他多种酶相比，β-内酰胺酶具有更高的特异性、更高的灵敏度以及更简便的实验操作性10。β-内酰胺酶是一类能够通过水解作用使细菌对β-内酰胺类抗生素产生耐药性的酶。这类酶通常为单体结构，具有高度稳定性、高效性且分子量较小。此外，将功能结构域或多肽插入到β-内酰胺酶中可形成双功能嵌合蛋白，已被证明是研究蛋白质-配体相互作用的有效工具。事实上，近期研究显示，将抗体可变区片段插入TEM1 β-内酰胺酶后，所获得的嵌合蛋白仍能以高亲和力结合其靶抗原。有趣的是，抗原的结合被证实可诱导TEM1催化活性的变构调控11,12。此外，我们在多项研究中表明，将蛋白质结构域插入Bacillus licheniformis BlaP β-内酰胺酶的允许性环区，可生成功能性的嵌合蛋白，非常适合用于监测蛋白质-配体相互作用13,14。我们最近将一种名为cAb-Lys3的纳米抗体插入BlaP的这一允许性插入位点15。该纳米抗体被证实可结合鸡蛋清溶菌酶（HEWL）并抑制其酶活性16。我们发现，所构建的嵌合蛋白BlaP-cAb-Lys3对HEWL仍保持高特异性和高亲和力，同时其β-内酰胺酶活性未受影响。随后，我们将这种嵌合β-内酰胺酶技术与电化学生物传感器成功结合，证明所产生的电信号强度依赖于固定在电极上的BlaP-cAb-Lys3与HEWL之间的相互作用。事实上，BlaP对β-内酰胺类抗生素的水解会释放质子，该过程可被转化为定量的电信号。将嵌合β-内酰胺酶技术与电化学生物传感器相结合的方法具有快速、灵敏、定量以及可实时检测信号的优点。本文详细描述了该方法学。

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方案

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1. 蛋白质样品制备

  1. 按照我们之前的研究方法制备并纯化杂合蛋白BlaP-cAb-Lys315。将蛋白储存于50 mM磷酸盐缓冲液（pH 7.4）中，缓冲液组成为：8 g NaCl、0.2 g KCl、1.44 g Na2HPO4 和 0.24 g KH2PO4 溶解于800 mL蒸馏水中，在定容至1 L前将溶液pH调节至7.4。用滤膜过滤除菌处理蛋白溶液。
  2. 配制鸡卵清溶菌酶（HEWL）储备液。将100 mg（40,000 单位/mg）市售HEWL溶解于10 mL磷酸盐缓冲液（PBS，见步骤 2.1.1）中。使用孔径0.22 μm的滤膜过滤，对蛋白溶液进行除菌处理。

2. 生物传感器检测

  1. 溶液与缓冲液的配制
    1. 通过将 8 g NaCl、0.2 g KCl、1.44 g Na2HPO4 和 0.24 g KH2PO4 溶解于 800 mL 去离子水中，配制 50 mM PBS。用 1 N HCl 或 1 N NaOH 将 pH 调至 7.4，再将溶液定容至 1 L。过滤除菌后，于 4 °C 保存。
    2. 通过将 3 g 酪蛋白水解物溶解于 100 mL 上述配制的 PBS 中（见步骤 2.1.1），配制封闭/饱和溶液。过滤除菌后，于 4 °C 保存。
    3. 通过将 1 g 酪蛋白水解物溶解于 100 mL 上述配制的 PBS 中（见步骤 2.1.1），配制结合溶液。过滤除菌后，于 4 °C 保存。
    4. 通过将 100 μL Tween 20（100%）加入 100 mL 上述配制的 PBS 中（见步骤 2.1.1），配制洗涤溶液（0.1% Tween - PBS）。于 4 °C 保存。
    5. 通过将 1 mL Triton X-100（100%）加入 100 mL 上述配制的 PBS 中（见步骤 2.1.1），配制电极预处理溶液（1% Triton X-100 - PBS）。于 4 °C 保存。
    6. 通过将 26 g KCl 溶解于去离子水中并定容至 100 mL，配制电极再生溶液（3.5 M KCl）。过滤除菌后，于 4 °C 保存。
    7. 通过将 0.29 g NaCl 溶解于去离子水中并定容至 1 L，配制 5 mM NaCl 溶液。过滤除菌后，于 4 °C 保存。随后，通过将 26.7 mg 苄青霉素溶解于 20 mL 5 mM NaCl 溶液中，配制检测溶液（4 mM 苄青霉素）。过滤除菌后，于 -20 °C 保存。
  2. 传感器的制备与再生
    注：聚苯胺涂层传感器芯片由 P. Bogaerts 博士、S. Yunus 博士和 Y. Glupczynski 教授（比利时鲁汶天主教大学 - CHU Mont-Godinne）研发并慷慨提供。该传感器的描述以及用于合成这些传感器的聚苯胺电聚合方法详见其先前的研究工作17。简而言之，该系统采用可重复使用的传感器，包含八个独立芯片，通过传统的印刷电路板（PCB）技术制造。每个芯片由三个圆形电极组成：顶部为工作电极，聚苯胺在此电极上电化学合成；中间为参比电极；底部为对电极。参比电极和对电极均在碳层上使用固态 Ag/AgCl 银汞齐进行功能化处理。
    1. 将传感器尖端浸入含有 300 µL/孔电极预处理溶液（1% Triton X-100 - PBS，见步骤 2.1.5）的 96 孔板孔中，进行 3 次清洗。每次清洗在室温下轻柔混匀 2 分钟。
    2. 将传感器尖端浸入含有 300 µL/孔去离子水的 96 孔板孔中，于室温下轻柔混匀 2 分钟，以冲洗电极。
    3. 将传感器尖端浸入含有 300 µL/孔再生溶液（3.5 M KCl，见步骤 2.1.6）的 96 孔板孔中，在 4 °C 下过夜或在室温下处理 1 小时，以再生电极。
    4. 将传感器尖端浸入含有 300 µL/孔磷酸盐缓冲液（见步骤 2.1.1）的 96 孔板孔中，进行 3 次清洗。每次清洗在室温下轻柔混匀 2 分钟。
  3. 在传感器上进行结合实验
    1. 将 15 µL 用 PBS 配制的 40 µg/mL HEWL 溶液滴加至电极表面，使 HEWL 涂覆于电极的 PANI（聚苯胺）表面。于 4 °C 过夜或室温孵育 1 小时。
    2. 将传感器芯片的电极部分浸入含有 300 µL/孔磷酸盐缓冲液（见步骤 2.1.1）的 96 孔板孔中，进行三次电极清洗。每次清洗在室温下轻柔混匀 2 分钟。
    3. 在电极表面滴加 50 µL 封闭溶液（见步骤 2.1.2），以封闭电极。室温孵育 1 小时。随后按前一步骤所述清洗三次（见步骤 2.3.2）。
    4. 将 BlaP-cAb-Lys3 溶液用结合溶液（见步骤 2.1.3）稀释至 20 µg/mL，并将 15 µL 该稀释液滴加至电极表面。室温孵育 10 分钟。抗原-纳米抗体反应完成后，使用洗涤溶液（见步骤 2.1.4）按前述步骤清洗三次。随后用 PBS 冲洗电极一次（见步骤 2.1.1）。
    5. 检测时，通过铜电路部分将传感器芯片连接至数字万用表。然后，在正极电极上滴加 50 µL 检测溶液（见步骤 2.1.7），在负极电极上滴加 50 µL 5 mM NaCl 溶液（见步骤 2.1.7），以启动传感器响应。室温孵育 30 分钟，并使用数字万用表监测电导率。
      注：该万用表由 P. Bogaerts 博士、S. Yunus 博士和 Y. Glupczynski 教授（比利时鲁汶天主教大学 - CHU Mont-Godinne）提供。该恒电位仪通过 USB 接口由计算机控制，可同时分析传感器上的八个不同芯片。Yunus 及其同事开发的软件17可生成实时曲线图，显示参比电极与样品电极之间的电导差随时间的变化。

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结果

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BlaP-cAb-Lys3 嵌合蛋白的设计与构建

图1展示了将cAb-Lys3插入来自解淀粉芽孢杆菌（Bacillus licheniformis）的A类β-内酰胺酶BalP的一个容许性环区。该插入位于Asp198和Lys199残基之间。在cAb-Lys3的两侧各引入了一个凝血酶切割位点。携带组成型表达质粒（编码BlaP-cAb-Lys3嵌合蛋白）的细胞能够在低浓度氨苄青霉素存在下生长。该结果表明，这种嵌合β-内酰胺酶具有可溶性，正确折叠，并能成功分泌至细菌的周质空间，在其中有效提供对氨苄青霉素的抗性。我们进一步分析了该嵌合蛋白的双功能特性。如我们先前研究所述，实验数据表明，嵌合蛋白中的β-内酰胺酶部分以及cAb-Lys3部分均保留了各自的生物学活性15。

电导型生物传感器检测<...

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讨论

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在本研究中，我们介绍了一种利用 BlaP β-内酰胺酶作为载体蛋白对纳米抗体进行功能化的方法，并证明了可成功将所获得的杂合蛋白应用于电位传感器检测。与其它生物传感器检测方法相比，本工作的主要创新之处在于抗体部分与产生电信号的酶活性之间实现了共价偶联。这种所谓的蛋白质插入技术具有若干优势与局限性，将是本节讨论的重点。

杂合β-内酰胺酶技术的优势。

β-内酰胺酶是高效的酶
影响生物传感器灵敏度和信噪比的最重要参数之一，是用于产生信号的酶活性。在此背景下，β-内酰胺酶具有多项优势：它们分子量小（≈29 kDa）、为单体结构、非常稳定，更重要的是，与其他用于电位型传感器检测的酶（如葡萄糖氧化酶、脲酶、脂肪酶、过氧化物酶或碱性磷酸酶）相比，具有更高的比活性和更高的催化转换速率20。基于上述所有原因，β-内酰胺酶是多种生物传感器检测中的首选酶类。

直接插入到 ββ-内酰胺酶可提高插入蛋白/结构域...

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披露

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作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者感谢比利时瓦隆大区在SENSOTEM和NANOTIC研究项目框架内的资助，以及国家科学基金（F.R.S.-F.N.R.S）提供的财政支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
试剂
KH2PO4Sigma-AldrichV000225 
K2HPO4Sigma-Aldrich1551128
NaClSigma-AldrichS7653
Tris–HClRoche10812846001
EDTA Sigma-AldrichE9884
KClSigma-AldrichP9541
Na2HPO4 Sigma-AldrichNIST2186II
2-巯基乙醇Sigma-AldrichM6250
丙氨酸Sigma-AldrichA7627
HClO4Fluka342881 M HClO4 溶液，经销商：Sigma-Aldrich
酪蛋白水解物Sigma-Aldrich22090
青霉素钠Sigma-AldrichB0900000
鸡蛋清溶菌酶Roche10837059001
庚烷Sigma-Aldrich246654
甲醇Sigma-Aldrich322415
氨水溶液Sigma-Aldrich38053928% NH3 in H2O，经双重蒸馏纯化（浓？）
实验室耗材
6 孔板 Greiner Bio-One657165CELLSTAR 6 孔板
设备
pH 计WTW1AA110Lab pH 计 inoLab pH 7110
真空过滤系统NalgeneNALG300-4100带接收瓶的滤器，经销商：VWR
电位传感器芯片由 Yunus 及同事制备（参考文献 16）
PGSTAT30 AutolabMetrohm Autolab已停产，后继型号为 Autolab PGSTAT302N
数字万用表，METRAHit 22MGossen Metrawatt已停产，后继型号为 Metrahit Base

参考文献

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  1. Higgins, I. J., Lowe, C. R. Introduction to the principles and applications of biosensors. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 316, 3-11 (1987).
  2. Byrne, B., Stack, E., Gilmartin, N., O'Kennedy, R. Antibody-based sensors: principles, problems and potential for detection of pathogens and associated toxins. Sensors (Basel). 9, 4407-4445 (2009).
  3. Huston, J. S., et al. Protein engineering of antibody binding sites: recovery of specific activity in an anti-digoxin single-chain Fv analogue produced in Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A. 85, 5879-5883 (1988).
  4. Mechaly, A., Zahavy, E., Fisher, M. Development and implementation of a single-chain Fv antibody for specific detection of Bacillus anthracis spores. Appl Environ Microbiol. 74, 818-822 (2008).
  5. Hamers-Casterman, C., et al. Naturally occurring antibodies devoid of light chains. Nature. 363, 446-448 (1993).
  6. Sheriff, S., Constantine, K. L. Redefining the minimal antigen-binding fragment. Nat Struct Biol. 3, 733-736 (1996).
  7. Stijlemans, B., et al. Efficient targeting of conserved cryptic epitopes of infectious agents by single domain antibodies. African trypanosomes as paradigm. J Biol Chem. 279, 1256-1261 (2004).
  8. Thanongsaksrikul, J., et al. A V H H that neutralizes the zinc metalloproteinase activity of botulinum neurotoxin type A. J Biol Chem. 285, 9657-9666 (2010).
  9. Huang, L., et al. Prostate-specific antigen immunosensing based on mixed self-assembled monolayers, camel antibodies and colloidal gold enhanced sandwich assays. Biosens. Bioelectron. 21, 483-490 (2005).
  10. Yolken, R. H., Wee, S. B., Van Regenmortel, M. The use of beta-lactamase in enzyme immunoassays for detection of microbial antigens. J Immunol Methods. 73, 109-123 (1984).
  11. Kojima, M., et al. Activation of circularly permutated beta-lactamase tethered to antibody domains by specific small molecules. Bioconjug Chem. 22, 633-641 (2011).
  12. Iwai, H., Kojima-Misaizu, M., Dong, J., Ueda, H. Creation of a Ligand-Dependent Enzyme by Fusing Circularly Permuted Antibody Variable Region Domains. Bioconjug Chem. 27, 868-873 (2016).
  13. Vandevenne, M., et al. The Bacillus licheniformis BlaP beta-lactamase as a model protein scaffold to study the insertion of protein fragments. Protein Sci. 16, 2260-2271 (2007).
  14. Vandevenne, M., et al. Rapid and easy development of versatile tools to study protein/ligand interactions. Protein Eng Des Sel. 21, 443-451 (2008).
  15. Crasson, O., et al. Enzymatic functionalization of a nanobody using protein insertion technology. Protein Eng Des Sel. 28, 451-460 (2015).
  16. Yunus, S., Attout, A., Vanlancker, G., Bertrand, P., Ruth, N., Galleni, G. A method to probe electrochemically active material state in portable sensor applications. Sensors and Actuators B: Chemical. 156, 35-42 (2011).
  17. Bogaerts, P., Yunus, S., Massart, M., Huang, T. D., Glupczynski, Y. Evaluation of the BYG Carba Test, a New Electrochemical Assay for Rapid Laboratory Detection of Carbapenemase-Producing Enterobacteriaceae. J Clin Microbiol. 54, 349-358 (2016).
  18. Wang, L. P., Wang, W., Di, L., Lu, Y. N., Wang, J. Y. Protein adsorption under electrical stimulation of neural probe coated with polyaniline. Colloids Surf B Biointerfaces. 80, 72-78 (2010).
  19. Piletsky, S., Piletska, E., Bossi, A., Turner, N., Turner, A. Surface functionalization of porous polypropylene membranes with polyaniline for protein immobilization. Biotechnol. Bioeng. 82, 86-92 (2003).
  20. Khatkhatay, M. I., Desai, M. A comparison of performances of four enzymes used in ELISA with special reference to beta-lactamase. J Immunoassay. 20, 151-183 (1999).
  21. Worn, A., et al. Correlation between in vitro stability and in vivo performance of anti-GCN4 intrabodies as cytoplasmic inhibitors. J Biol Chem. 275, 2795-2803 (2000).
  22. Ostermeier, M. Engineering allosteric protein switches by domain insertion. Protein Eng Des Sel. 18, 359-364 (2005).
  23. Choi, J. H., Laurent, A. H., Hilser, V. J., Ostermeier, M. Design of protein switches based on an ensemble model of allostery. Nat Commun. 6, 6968(2015).
  24. Collinet, B., et al. Functionally accepted insertions of proteins within protein domains. J Biol Chem. 275, 17428-17433 (2000).
  25. Betton, J. M., Jacob, J. P., Hofnung, M., Broome-Smith, J. K. Creating a bifunctional protein by insertion of beta-lactamase into the maltodextrin-binding protein. Nat Biotechnol. 15, 1276-1279 (1997).
  26. Ay, J., Gotz, F., Borriss, R., Heinemann, U. Structure and function of the Bacillus hybrid enzyme GluXyn-1: native-like jellyroll fold preserved after insertion of autonomous globular domain. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 6613-6618 (1998).
  27. Ruth, N., et al. DNA vaccination for the priming of neutralizing antibodies against non-immunogenic STa enterotoxin from enterotoxigenic Escherichia coli. Vaccine. 23, 3618-3627 (2005).
  28. Zervosen, A., et al. Characterization of the cattle serum antibody responses against TEM beta-lactamase and the nonimmunogenic Escherichia coli heat-stable enterotoxin (STaI). FEMS Immunol Med Microbiol. 54, 319-329 (2008).
  29. Chevigne, A., et al. Use of bifunctional hybrid beta-lactamases for epitope mapping and immunoassay development. J Immunol Methods. 320, 81-93 (2007).
  30. Ke, W., et al. Structure of an engineered beta-lactamase maltose binding protein fusion protein: insights into heterotropic allosteric regulation. PloS One. 7, 39168(2012).
  31. Saeedfar, K., Heng, L. Y., Ling, T. L., Rezayi, M. Potentiometric urea biosensor based on an immobilised fullerene-urease bio-conjugate. Sensors (Basel). 13, 16851-16866 (2013).
  32. D'Orazio, P. Biosensors in clinical chemistry. Clin Chim Acta. 334, 41-69 (2003).
  33. Szucs, J., Pretsch, E., Gyurcsanyi, R. E. Potentiometric enzyme immunoassay using miniaturized anion-selective electrodes for detection. Analyst. 134, 1601-1607 (2009).
  34. Ding, J., Wang, X., Qin, W. Pulsed galvanostatic control of a polymeric membrane ion-selective electrode for potentiometric immunoassays. ACS Appl Mater Interfaces. 5, 9488-9493 (2013).
  35. Wang, X., et al. A polymeric liquid membrane electrode responsive to 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine oxidation for sensitive peroxidase/peroxidase mimetic-based potentiometric biosensing. Anal Chem. 86, 4416-4422 (2014).
  36. Grieshaber, D., MacKenzie, R., Voros, J., Reimhult, E. Electrochemical Biosensors - Sensor Principles and Architectures. Sensors (Basel). 8, 1400-1458 (2008).
  37. Bakker, E., Pretsch, E. Nanoscale potentiometry. Trends Analyt Chem. 27, 612-618 (2008).
  38. Zhang, D., Liu, Q. Biosensors and bioelectronics on smartphone for portable biochemical detection. Biosens Bioelectron. 75, 273-284 (2016).
  39. Nemiroski, A., et al. Universal mobile electrochemical detector designed for use in resource-limited applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 11984-11989 (2014).
  40. Socio-economic impact of mHealth- An assessment report for the European Union. , Price Waterhouse Coopers. Commission, T.E (2013).

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