方法文章

使用定量实时PCR检测大鼠腹膜中的微小RNA表达

DOI：

10.3791/55505

⸱

2017年6月27日

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1Division of Nephrology, First Department of Integrated Medicine, Saitama Medical Center, Jichi Medical University, 2Division of Nephrology, Department of Internal Medicine, Jichi Medical University, 3Department of Medical Physiology, Meiji Pharmaceutical University

本文内容

摘要

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在这里，我们提出了使用定量实时逆转录聚合酶链反应检测大鼠腹膜中microRNA表达的方案。该方法适用于在几种病理条件下研究大鼠腹膜中的microRNA表达谱。

摘要

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微小RNA（miRNA）是在转录后调节信使RNA表达的小型非编码RNA。已经在大鼠的各种器官和组织中研究了miRNA表达谱。然而，用于纯化miRNA的标准方法和其在大鼠腹膜中的表达检测尚未很好地建立。我们已经开发了一种有效和可靠的方法，使用定量实时逆转录聚合酶链反应（qRT-PCR）在大鼠腹膜中纯化和定量miRNA。该方案由四个步骤组成:1）净化腹膜样品; 2）从腹膜样品纯化包括miRNA的总RNA; 3）逆转录miRNA产生cDNA;和4）qRT-PCR检测miRNA表达。使用该方案，我们成功地确定了6种miRNA（miRNA-142-3p，miRNA-21-5p，miRNA-221-3p，miRNA-223-3p，miRNA-327和miRNA-34a-5p）的表达增加与对照组相比，大鼠腹膜纤维化模型的腹膜显着。该方案可用于研究许多病理条件下大鼠腹膜中miRNA表达谱。

引言

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微小RNA（miRNA）是转录后调节信使RNA（mRNA）表达的短的非编码RNA。 miRNAs表达的变化调节许多在各种病理状况（包括癌症，炎症，代谢紊乱和纤维化）2,3,4,5,6,7,8中发挥关键作用的mRNA的表达。因此，miRNA具有潜在的新生物标志物和治疗靶标2,3,4,5,6,7,8。已经在各种大鼠中测定了miRNA表达谱器官和组织，包括肝脏，心脏，肺和肾脏9 。然而，用于纯化和检测大鼠腹膜中的miRNA的标准方法尚未得到很好的建立。

该方案的总体目标是成功地纯化和检测大鼠腹膜中的miRNA。首先，使用玻璃均化器将腹膜样品匀浆，然后在微量离心旋转塔10中暴露于生物聚合物破碎系统。接下来，使用基于二氧化硅膜的旋转柱10从腹膜样品纯化包括miRNA的总RNA。然后，使用逆转录酶，poly（A）聚合酶和oligo-dT引物11从纯化的总RNA合成cDNA。最后，使用插层染料11通过qRT-PCR测定miRNA的表达。这个协议的理由是b在以前的研究中，通过简单的过程8,10,11，显示了组织中miRNA的显着纯化和检测。据报道，在微量离心旋转柱和基于二氧化硅膜的旋转柱中使用生物聚合物粉碎系统可以从组织....

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方案

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所有动物实验方案均由Jichi Medical University动物伦理委员会批准，并按照"Jichi Medical University Guide for Laboratory Animals"的实验动物使用和护理指南进行。

腹膜样本收集

  1. 收集以下物品:50 ml离心管，棉花浸泡在异氟烷，软木塞，磷酸盐缓冲盐水（PBS），手术剪刀和镊子的培养皿中。
  2. 用过量的异氟烷安乐死大鼠，然后用70％乙醇喷洒大鼠的腹部皮肤，并将大鼠放在软木塞背面。
  3. 使用剪刀和镊子在腹部皮肤，肌肉和腹膜中进行纵向切口。
  4. 使用镊子拾取腹膜，并在其上部沿着隔膜下方的最下肋骨上方进行水平切口，并在其上侧面使用手术剪刀。接下来，使用手术剪刀进行横向纵向切口以从身体移除腹膜。然后用PBS在培养皿中洗涤。
  5. 切割并修剪20毫克（3-5毫米2 ）的腹膜样品，这是适合以下步骤的尺寸，使用手术剪刀和镊子。

2.从腹膜样品中纯化总RNA

注意:在这里，使用玻璃均化器和生物聚合物切碎系统将微量20mg的腹膜膜样品在微量离心旋转柱中均质化。然后，使用基于二氧化硅膜的旋转柱分离来自腹膜样品的总RNA。

  1. 收集以下物品:在微量离心旋转塔10....

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结果

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这里提供的结果是基于我们以前报告的研究8 。我们调查了腹膜纤维化中的miRNA表达谱。腹膜纤维化是腹膜透析的主要并发症。其特征在于间皮细胞单层的损失和细胞外基质成分的过量积累，并且与腹膜破裂14,15相关。通过腹膜内注射100mL / kg腹膜透析液（2.5％葡萄糖，100mM NaCl，35mM乳酸钠，2mM CaCl 2和含有20mM甲基乙二醛的0.7mM MgCl 2 ），产生腹膜纤维化大鼠模型5雄性大鼠，每周一周，持续3周，年龄12周，体重230-250克。以下组作为对照:无任何治疗的大鼠（模拟大鼠）和大鼠注射腹膜透析液无甲基乙二醛（对照组大鼠）。基于miRNA微阵列筛选，我们发现六种miRNA（miRNA-142-3p，miRNA-21-5p，miRNA-221-3p，miRNA-223-3p，miRNA-327和miRNA-34a-5p）的水平，与模拟大鼠和对照大鼠相比，腹膜纤维化大鼠腹膜膜显着增加，按照本手册中提出的方案.......

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讨论

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使用本手册中提出的方案，大鼠腹膜中的miRNA成功纯化并使用qRT-PCR进行检测。 qRT-PCR数据分析的可靠性取决于纯化的miRNA的质量。因此，可以在qRT-PCR前通过260nm处的吸光度与280nm处的吸光度比检查miRNA的纯度，这可以使用分光光度计测量。当使用qRT-PCR不能获得miRNA的显着扩增时，模板cDNA的浓度可能会增加。每个miRNA特异性引物的浓度也可以增加。

确定miRNA表达水平有几种替代方法，包括微阵列，Northern印迹和核糖核酸酶保护测定。 qRT-PCR是一种敏感的，高通量的方法，与Northern印迹或核糖核酸酶保护测定相比，需要最少量的样品。微阵列可以对exp进行调查许多miRNAs同时发生，数据通常与qRT-PCR 17获得的数据具有很强的相关性;然而，对于可以确认研究组18之间的微阵列数据比较的有效性的方法尚未达成共识。

此协议有以下限制。首先，通过该方案验证miRNA检测在其他.......

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披露

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作者宣称他们没有利益冲突。

致谢

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我们要感谢Miyako Shigeta的出色的技术支持。这项工作得到了JSS KAKENHI（授权号25461252）的部分支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
QIA 粉碎机Qiagen79654生物聚合物粉碎系统，微量离心柱离心柱
miRNeasy Mini 试剂盒Qiagen217004硅胶膜离心柱
QIAzol 裂解试剂Qiagen79306苯酚/胍基裂解试剂
缓冲液 RLTQiagen79216洗涤缓冲液 1
缓冲液 RWTQiagen1067933洗涤缓冲液 2
miScript II RT 试剂盒 Qiagen218161包括 10×含有脱氧核苷酸、核糖核苷酸三磷酸和 oligo-dT 引物的 Nucleics 混合物;miScript Reverse Transcriptase Mix，含有poly（A）聚合酶和逆转录酶;miScript HiSpec缓冲液
miScript SYBR Green PCR试剂盒Qiagen218073包括QuantiTect SYBR Green PCR预混液和miScript Universal Primer
RNU6-2引物  QiagenMS00033740未公开
miRNA-142-3p 引物QiagenMS000314515'-UGUAGUUUCC
UACUUUAUGGA-3'  
miRNA-21-5p 引物QiagenMS000090795'-UAGCUUAUCAG
ACUGAUGUUGA-3'miRNA-221-3p
引物QiagenMS000038575'-AGCUACAUUGU
CUGCUGGGUUUC-3'miRNA-223-3p
引物QiagenMS000333205'-UGUCAGUUUG
UCAAAUACCCC-3'miRNA-34a-5p
引物QiagenMS000033185'-UGGCAGUCU
UAGCUGGUUGU-3'miRNA-327
引物QiagenMS000008055'-CCUUGAGGGG
CAUGAGGGU-3'MicroAmp
光学 96 孔反应板，用于 qRT-PCRThermo Fisher Scientific431681396 孔反应板
MicroAmp 光学胶膜 Thermo Fisher Scientific4311971用于 96 孔反应板的封底膜
QuantStudio 12K Flex Flex 实时荧光定量 PCR 系统Fisher Scientific4472380实时荧光定量 PCR 仪器
QuantStudio 12K Flex 软件版本 1.2.1。Thermo Fisher Scientific4472380实时 PCR 仪器软件甲基
乙二醛Sigma-AldrichM0252
MidpericTerumo未分配 腹膜透析液
斯普拉格–Dawley 大鼠SLC未分配 
Thermo

参考文献

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  1. Krol, J., Loedige, I., Filipowicz, W. The widespread regulation of microRNA biogenesis, function and decay. Nat Rev Genet. 11 (9), 597-610 (2010).
  2. Beermann, J., Piccoli, M. T., Viereck, J., Thum, T. Non-coding RNAs in Development and Disease: Back....

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MicroRNA ExpressionQuantitative Real time PCRPeritoneal MembraneRNA PurificationReverse TranscriptionmiRNA DetectionPeritoneal FibrosisRat ModelTotal RNA IsolationqRT PCR Protocol

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