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方法文章

一种在昆虫细胞中生产重组mCD1d蛋白的方法

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DOI:

10.3791/556

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2007年12月10日

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本文内容

摘要

一种制备昆虫细胞并用杆状病毒感染以生产重组mCD1d蛋白及生成mCD1d四聚体的方法。

摘要

CD1蛋白构成了一类第三种抗原提呈分子。它们是细胞表面糖蛋白,以分子量约为50 kDa的糖基化重链形式表达,并与β2-微球蛋白非共价结合。这类分子结合脂类而非肽类。尽管其结构证实CD1蛋白与MHC I类和II类抗原提呈分子具有相似性,但小鼠CD1d(mCD1d)的抗原结合槽相对较窄、较深,且高度疏水,具有两个结合口袋,而经典的由MHC编码的抗原提呈分子则具有多个较浅的结合口袋。根据其氨基酸序列,这种疏水性结合槽为脂类抗原的结合提供了理想的环境。

自然杀伤T细胞(NKT细胞)通过其T细胞受体(TCR)识别由CD1d分子结合或呈递的糖脂。对由CD1分子呈递的脂质产生反应的T细胞,已证实参与了对自身免疫性疾病和感染性疾病的防护,以及肿瘤排斥反应。因此,识别、纯化并追踪CD1反应性NKT细胞应答的能力具有重要意义。由α-半乳糖基神经酰胺(a-Galcer)与CD1d构成的四聚体的开发,极大地促进了人们对NKT细胞生物学特性的理解。其他基于不同CD1分子构建的四聚体也已被成功制备,这些新型试剂显著拓展了人们对脂质反应性T细胞功能的认识,在监测脂质疫苗应答、自身免疫性疾病诊断及其他治疗应用中具有潜在价值。

方案

一、解冻细胞

取一管冻存的 TN5 细胞,在 37°C 水浴中解冻。向 25 cm2 组织培养瓶中加入 5 ml 昆虫 Express 培养基(Invitrogen,货号-10486)。注意:Express 培养基不含谷氨酰胺,需向每升培养基中添加 10 ml 100X 谷氨酰胺-青霉素-链霉素混合液或单独的谷氨酰胺。将 TN5 细胞加入培养瓶中,在 27°C 培养箱中孵育 30 分钟。随后,轻轻吸除含 DMSO 的培养基,注意不要扰动贴壁于瓶底的细胞。加入 5 ml 新鲜培养基。

二、细胞的培养与扩增

每天观察细胞生长情况。当培养瓶中细胞融合度接近70%时,通过轻敲培养瓶两侧使细胞脱落悬浮,加入21 ml昆虫表达培养基和5 ml细胞培养物,将细胞转移至175 cm2培养瓶中。每个T175培养瓶的终体积应约为25–30 ml培养基。 根据需要,将融合生长的培养瓶(细胞浓度约为100万个/ml)以1/4或1/5比例传代。切勿让细胞过度生长。记录细胞传代次数。传代次数不得超过30代,以免导致细胞老化并引发细胞裂解。当细胞达到目标体积且浓度为100万个/ml时,进行细胞感染操作。

我通常培养至2到2.5升,这通常相当于七十个175 cm2的培养瓶,每瓶约....

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讨论

本实验步骤介绍了如何启动、培养昆虫细胞,以及如何利用这些细胞感染并测定杆状病毒的滴度。该实验最关键的部分在于细胞的维持以及准确测定杆状病毒的滴度。一旦制备出CD1四聚体,便可作为分析糖脂反应性T细胞的有力工具。杆状病毒系统还被广泛用于表达重组蛋白,包括MHC II类分子四聚体,因此本实验方法具有更广泛的适用性。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Express Five SFM 无血清培养基Invitrogen10486025
High Five TM 昆虫细胞InvitrogenB855-02
Glutamine Pen strep抗生素Invitrogen10378-016
25 cm² TC 培养瓶 塑料培养瓶Fisher Scientific10-126-28
175 cm² TC 培养瓶 带塞密封培养瓶Fisher Scientific10-126-8
锥形瓶 细胞培养用锥形瓶Fisher Scientific07 200 672
YM 30 浓缩器30,000 分子量截留值(MWCO)EMD MilliporeUFC 903096
FPLC 设备GE Healthcare
BrA 酶与缓冲液 生物素化试剂盒AvidityBIRA500
Ni-NTA 琼脂糖柱His标签蛋白纯化柱GE Healthcare
脱盐柱 用于去除蛋白中的盐分GE Healthcare
MonoQ 柱阴离子交换色谱柱GE Healthcare
S200 柱 尺寸排阻色谱柱GE Healthcare
alpha-Galcer 糖脂
PE-链霉亲和素 用于蛋白偶联Molecular Probes, Life TechnologiesS-866

参考文献

  1. Benlagha, K., Weiss, A., Beavis, A., Teyton, L., Bendelac, A. In vivo identification of glycolipipd antigen-specific T cells using fluorecent CD1d tetramers. J. Exp. Med. 191, 1895-1903 (2000).
  2. Kinjo, Y., Wu, D., Kim, G., Xing, G. W., Poles, M. A., Ho, D. D., Tsuji, M., Kawahara, K., Wong, C. H., Kronenberg, M.

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