方法文章

大鼠牵张成骨的高效可再生性协议

DOI：

10.3791/56433

⸱

2017年10月23日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1CNRS, ISM, Inst Movement Sci, Aix Marseille Univ, 2Sainte-Marguerite Hospital, Institute for Locomotion, Department of Orthopaedics and Traumatology, APHM, 3Sainte-Marguerite Hospital, Institute for Locomotion, Department of Peadiatric Orthopaedics, APHM, 4Ecole centrale de Marseille, 5Faculté de Pharmacie, Laboratoire de Biochimie, 6Service Central de la Qualité et de l'Information Pharmaceutiques, APHM

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

这项研究描述了一个可复制和详细的协议使用新开发的外固定器的牵引成骨 (做) 在股骨大鼠模型, 允许生理负重的动物后, 外固定架。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本协议描述了在大鼠股骨模型中使用一种新研制的外固定器牵引成骨术。牵引成骨术 (做) 是一种外科手术技术, 导致骨再生后, 截切。osteotomized 肢通过逐渐的分散而相互移动, 达到预期的伸长率。该方法广泛应用于人下肢延长, 骨不连后治疗, 或骨肿瘤切除术后骨缺损的再生, 以及颌面部重建。只有少数的研究清楚地证明了他们的协议在获得功能性再生骨的效率,即, 在取出外固定架后, 将支持不带骨折的生理负重的骨骼。此外, 由于缺乏信息, 使得不同的研究和重复性的协议受到限制, 使学习比较困难。本研究的目的是制定一个可复制的协议, 包括一个适当的外固定器设计大鼠肢体延长, 与详细的手术技术, 允许动物的生理负重后, 去除外部固定.

引言

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

牵引成骨术 (做) 是一种外科技术广泛使用临床1,2,3,4在人为更低的1,2和上部3肢体延长,治疗后骨不连, 或再生骨缺损后骨肿瘤切除术以及颌面部重建4。在骨内固定支架置入后, 可导致骨再生。osteotomized 四肢通过逐渐分心2 , 以达到预期的伸长距离。巩固期间跟随, 在期间没有更多伸长。

执行过程分为三不同的阶段: 延迟、分心和整合。通常, 7 天的潜伏期是在截骨4之后开始的。这允许骨骼修复开始愈合过程的初始步骤4。潜伏期后, 牵引力被应用到再生愈伤组织和周围软组织的一个分心期1,2,4。当达到预期的伸长率, 分心停止和巩固期开始。在此期间, 外固定器保持, 直到再生骨功能足以支持其去除。

不同的参数对骨修复有影响, 如长度和伸长率, 外固定器的类型, 分心的频率, 巩固期的长短, 或机械应力类型应用于分散的愈伤组织。举例来说, 延长的速度和频率可能导致过早的合并5或通过创建不可恢复的损伤, 如坏死组织或囊肿在胼胝体内,6,7。

许多协议已经应用于不同的动物模型8,9,10 , 以研究骨骼修复过程并最大限度地巩固骨骼。在大鼠中, 大多数研究11、12、13、14、15 , 重点讨论如何通过加速愈伤组织合并来缩短执行协议。其中一些实验研究使用了外部固定架已经商业化可用于人类临床应用的5,13,15,16。然而, 这些类型的外固定器不适合做的大鼠股骨, 这表现出不同的解剖特征, 从人的股骨。此外, 只有少数研究清楚地证明了它们的协议在获得功能性再生骨716中的效率。因此, 很难比较不同的研究结果, 由于他们的不同协议和缺乏有关外部固定器的信息12,13,14,17。

因此, 这项研究的目的是描述, 在大鼠模型, 一个有效的和可重复的协议做股骨, 导致功能性再生骨。为此, 我们设计了一个自制和易于使用的外固定器, 特别是对大鼠股骨, 这是我们在这个协议中详细描述。在起草该装置的技术规格时, 我们考虑到了机械应力分布良好和避免残余应力产生的所有基本约束。技术规格包括一个适当的几何为设备允许纯净的牵引力量在骨头和周围的组织, 适当的重量为动物的步态, 控制骨头伸长的长度和好对骨头段的对准在销钉和骨骼的交叉处不产生剪切应力。此外, 该装置必须在不受干扰、生物相容性和消毒无损伤的情况下使用。经过7周的整合后, 本议定书对大鼠股骨做了一个功能性再生骨, 证明了动物的生理负重没有骨折的再生愈伤组织后外固定架。动物的生理步态与再生愈伤组织和 x 射线分析的显微 CT 分析得到的建筑参数一致。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

所描述的所有程序均由 Aix-马赛机构动物保育和使用委员会和法国研究部批准, 并在马赛医学院的常规动物院进行 (法国).

1. 根据以下准则定义外部固定器的功能规范

  1. 优化骨骼锚固.
    1. 植入 half-threaded 针脚, 其直径 (螺纹部分) 为 1 mm.
  2. 选择设计以减少对动物的不适.
    1. 选择适合于 7723 mm 3 (32 mm x 19 mm x 12.7 mm) 的体积的小尺寸的外部固定器。
    2. 选择一个低重量的外固定器, 不带针脚的13克, 避免干扰动物和 #39; 步态。选择铝作为材料的两个区块由于其低密度.
      注: 倒块的重量大大降低了两部分的比重.
  3. 控制固定器的运动, 使拉伸力的方向与骨骼的方向保持平行, 并确保纯拉伸力。
    1. 使用穿过两个块的滑动条。槽和开放的方块, 使每个可以承担两个引脚.
    2. 使用一个平滑侧的延伸螺钉, 在块中自由转动, 可以用手指夹住, 并通过旋转使第二块偏移的螺纹侧。将两根针固定在骨折的两侧, 使拉力方向与骨骼方向平行。保持纵向轴的拉伸力, 使销钉上的应力分布良好。用锁定螺钉固定四针脚.
  4. 选择可以经受灭菌温度的铝、钛和钢等材料.
  5. 确保针放置对应于外部固定架几何 ( 图 1 B )。
    1. 使用一个钻孔导轨, 其中包含在骨骼上拧紧的夹具以保持钻孔位置.
    2. 缩短夹具的杠杆臂以降低夹紧力。将夹钳放在装置中间, 在以后的骨折处, 以清除两侧.
  6. 通过添加花螺钉来拧紧和松开移动块, 使分散操作易于手动调整.
    1. 使用的螺钉宽度足以用手指单独操作.
    2. 在两个块之间的延伸螺钉中间添加一个钻孔方形螺母, 以便轻松分散.
    3. 使此方形螺母 (每边 8 mm) 大于两个块, 以允许手动使用细针或任何类型的对象。转动螺丝和 #188; 转动以允许0.125 毫米延长.

2。手术

注意: 所有外科手术都需要一个助手。四12周大的雄性大大鼠被喂食标准的实验室食谱 ad 随意 .

  1. 准备手术工具.
    1. 对以下所有手术器械进行消毒: 1 rugine、2森和 #39 器、1微奥尔森 Hegar 针夹、1梅奥 Hegar 针支架、1梅奥剪刀和1手术刀.
    2. 消毒外固定架, 钻孔导轨, 4 half-threaded 针, 4 螺丝, 尖端和钻柱, 以及 piezotome 的尖端和串。灭菌135和 #176 对这些仪器进行消毒; C 为 18 min.
    3. 在无菌场、手术台上安装一个发热垫。将所有仪器或工具放在另一个不育的领域.
  2. 麻醉并准备该动物.
    1. 称量大鼠准备麻醉剂和镇痛合剂
    2. 确定并计算 Bupremorphine 和卡洛芬的用量, 准备镇痛合剂即兴。使用丁丙诺啡 (0.03 毫克/毫升) 和卡洛芬 (5 毫克/毫升) 分别在0.05 毫克/千克和5毫克/千克.
    3. 抑制大鼠和皮下注射镇痛合剂. #160; 等待几秒钟, 然后注射腹腔麻醉合剂.
    4. 用电动剃须刀剃掉右后肢, 用聚维酮碘溶液消毒肢体.
    5. 在无菌场上横向 (右侧向上) 放置动物, 以便在 mediolateral 轴上正确定位外固定架.
      6. 在手术过程中,
    6. 在头部放置一个不育的压缩来保护眼睛.
  3. 将外部固定器植入股骨。
    1. 标志性皮肤切口。用一个标记, 从远端部分 (膝部) 和第二个点 (髋部) 在矢状面中中线的后面绘制一个点。然后在这2点之间画一条线.
    2. 使用手术刀沿绘图线切割拉伸的皮肤.
    3. 在 股二头肌之间切开 和 股外 , 直到股骨完全暴露在手术刀的帮助下。使用2森和 #39 器 (可能需要助手) 来促进肌肉切开.
    4. 抬起骨膜并在 rugine 的帮助下从骨骼中断开软组织.
    5. 检查裸露的股骨是否足够长。
      1. 在外部固定器的最近端和远端孔中插入针脚.
      2. 定位外固定器并检查两个针脚是否可以固定在股骨上.
    6. 在股骨中植入4平行的1毫米 half-threaded 针。
      1. 采用钻孔导轨, 将2森和 #39 的肌肉分开; 器。拧紧股骨中部的钻孔导轨夹钳.
      2. 在股骨中钻 4 pre-holes。使用电钻, 钻孔的速度为 2000 rpm 通过一个金属钻头0.6 毫米直径通过4导孔。
        1. 从最近端和远端的孔开始, 并完成指南中的两个中间部分。小心地穿过两个皮质, 但不要破坏股骨下方的软组织.
      3. 从钻孔导轨上脱下.
      4. 放大 4 pre-holes 与 0.8 mm half-threaded 针。
        1. 通过 0.6 mm 孔来回工作 pin。小心保持垂直于股骨和下沉通过两个皮质.
      5. 植入 1 mm half-threaded 针脚。
        1. 用针夹抓住 1 mm half-threaded 针脚的头.
        2. 下沉引脚以放大 pre-hole。检查针脚是否穿透两个皮层, 并不凸出超过1毫米, 与森和 #39; s 牵引器.
      6. 将外部固定器连接到 4 half-threaded 针脚。确保偏移量 (固定架与 #39 之间的距离, 两个块和骨表面) 约6毫米, 以便于缝合和系统的良好刚性 18 .
      7. 固定4锁定螺钉, 使外部固定器锁定在针脚上.
  4. Osteotomize 股骨.
    1. 在2中心针脚与 piezotome 之间执行截骨.
    2. 关闭禾和使用一个连续针与可缝合线 (5.0) 和梅奥-Hegar 针持有人。确保只有皮肤缝合, 而不是肌肉.
  5. 验证手术和监视动物.
    1. 在手术后执行 X 光检查, 而动物仍在麻醉中。检查所有针脚的深度, osteotomized 的肢沿长轴排列.
    2. 通过皮下注射丁丙诺啡 (0.03 毫克/毫升) 和 Enrofloxacine (50 毫克/毫升) 分别在0.05 毫克/千克和10毫克/千克 #160 确保镇痛和 antibioprophylaxy;
    3. 确定并计算用于反转麻醉的 antipamezole 量。使用 antipamezole 在1毫克/千克和做皮下注射管理产品。和 #160; 允许动物重拾意识并将它归还给它的笼子.
    4. 手术后六小时, 分别在 0.05mg/千克和5毫克/千克皮下注射第二剂量的镇痛合剂 (丁丙诺啡和卡洛芬); #160;
      至少在接下来的3天里, 每天给这些注射两次镇痛合剂, 每天一次, 为 antibioprophylaxy。必须定期进行临床检查以评估镇痛的有效性, 并且必须根据每种动物的行为体征进行修改。和 #160;
    5. 检查动物是否可以在手术后的第二天正常行走.

3。分心

  1. 在1周内将外固定器保持在中性点。x 射线的肢体在这一阶段结束。检查针脚的位置和骨骼段的对齐方式.
  2. 手动将方形螺母旋转一半 (0.25 mm), 每12小时顺时针转动一次以执行分心。分心10天, 这将导致一个5mm 的骨骼延长, 代表了12% 延长相对于手术骨段的初始长度. 在此步骤中,
    1. 不麻醉动物。x 射线的肢体中途通过和在这段时间结束检查的定位针和对齐骨段.
  3. 将外部固定架保持47天。x 线每周检查肢体的进展, 注意力分散的间隙钙化。64天, 取出外固定架, 让动物自由行走2天 (66 天)。总合并期持续7周.
  4. 安乐所有老鼠经过7周的整合, 过量吸入七氟醚.
  5. 在没有周围组织的情况下切除分心和对侧股骨.
    1. 在手术刀的帮助下, 在矢状面后的中线上的疤痕上进行皮肤切口。从臀部顶端到膝前部的切口.
    2. 在 股二头肌 和 股外 与手术刀之间切开直到股骨完全暴露。尽可能地断开附着在骨骼上的肌肉.
    3. 切断所有膝关节韧带, 并拆除关节.
    4. 切开髋关节的关节囊.
    5. 彻底清洁骨骼而不删除 half-threaded 针脚。用手术刀取出所有的软组织.
  6. 对对侧股骨重复从3.5.1 到3.5.5 的步骤.
  7. x 光分心和对侧股骨。卸下 4 half-threaded 针脚, 并将所有股骨存储在-20 和 #176 上; C 用于微 CT 扫描分析 (10 和 #181; m 分辨率).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

从外科手术结束到合并结束的 x 线图像显示, 股骨 half-threaded 针没有松动, 表明稳定的锚固。别针是平行和保存完好。在执行过程中, osteotomized 肢沿骨骼的纵轴定向 (图 2)。在潜伏期结束时, 没有钙化区域是可见的 (图 2B)。在分心期结束时, 一些钙化区可见于先前存在的皮层 (图 2C)。经过28天的固结 (45 天), osteotomized 肢间隙的钙化区较小, 我们观察到的骨膜愈伤组织不仅靠近间隙, 而且在针脚的水平 (图 2D)。经过47天的巩固 (天 64), 再生愈伤组织完全桥接 (图 2E)。在...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

这项研究描述了一个可复制的协议, 包括一个适当的外固定器设计的大鼠肢体延长, 与详细的手术技术, 允许动物的生理负重后, 去除外固定架。我们的协议导致了一个功能性的再生骨骼。经过47天的巩固, 去除自制的外固定器和2天的生理负重, 动物并没有诱发任何骨折的再生愈伤组织。由于微 CT 重建, 完全架桥的证据证实了再生愈伤组织的功能。先前的研究清楚地证明了钙化桥接的存在与再生愈伤组织能够维持19的负荷之间的正相关关系。此外, vBMD 发现的再生愈伤组织约67% 的 vBMD 发现骨干部分股骨从 controlateral 肢体20。我们还发现了再生愈伤组织的平均 vBMD, 与先前描述的21的值相近。这突出了稳定的环境创造了自制的外部固定器, 导致有效的骨修复。此外, 该固定器是良好的耐受动物。外固定架的定位和重量并没有干扰动物的步态, 所以他们可以在手术后行走。

在整个协议中, 没有折断或松动的针脚发生, 证据表明, 线程程序确保有效和稳定...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者没有什么可透露的。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

这项工作得到了 CNRS Mecabio 挑战的支持和资助。

作者感谢动物护理技术员在整个过程中照顾动物。作者还通过 IVTV 承认里昂中心。感谢马乔里 Sweetko 的语言版本。

我们感激 Marylène Lallemand、Cécile Génovésio 和帕特里克. 劳伦对这项实验研究的贡献。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
KétamineRenaudin578 540-2由动物屋
Mé 供应;dé托米丁Virbac6799091动物屋供应
七氟烷Centravet567 477-2动物屋
BuprenorphineIndivor 法国3400932731060动物屋供应
恩诺沙星渠道制药制造FR/V/4955220动物屋供应
PiezotomeSatelec ActeonF57510
加热宠物垫TherasageAL8365936由动物屋供应
牙科 X 射线S.A.R.L 创新 médicales et dentairesWYZ - BLUEX
Winiwix 软件Softys 牙科PFT
显微 CT 系统nanoScan SPECT/CTGEIT-31105EN （05/14）分包：IVTV 中央
里昂显微 CT 分析软件phoenix datos X2 重建无免费软件
电动剃须刀BrawnGT415供应：动物屋
森s 牵开器Word Precision Instruments501718钝版
Betadine SolutionMundipharma Medical CompanyD08AG02由动物屋供应
可吸收缝合线 （5.0）EthiconJV1023由动物屋供应
RugineWord 精密仪器503406
Mayo-Hegar 持针Word 精密仪器
金属钻头BeuterlockV020944018003
Micro Olsen-Hegar 持针器Word 精密仪器501989
Mayo 剪刀Word 精密仪器501752
手术刀Word 精密仪器500236
Sprague-DawleyJanvier无12弱者和男性
供应 器 V503382

参考文献

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jauregui, J. J., Ventimiglia, A. V., Grieco, P. W., Frumberg, D. B., Herznberg, J. E. Regenerate Bone stimulation following limb lengthening: a meta-analysis. BMC Musculoskelet Disord. 17 (1), 407(2016).
  2. Morcos, M. W., Al-Jallad, H., Hamdy, R. Comprehensive review of Adipose Stem Cells and Their Implication in Distraction Osteogenesis and Bone Regeneration. Biomed Res Int. 2015 (842975), 1-20 (2015).
  3. Cansü, E., Ünal, M. B., Parmaksizoglu, F., Gürcan, S. Distraction lengthening of the proximal phalanx in distal thumb amputations. Acta Orthop Traumatol Turc. 49 (3), 227-232 (2014).
  4. Singh, M., Vashistha, A., Chaudhary, M., Kaur, G. Biological Basis of Distraction Osteogenesis - A Review. J Oral Maxillofac Surg Med Pathol. 28 (1), 1-7 (2016).
  5. Sailhan, F., Gleyzolle, B., Parot, R., Guerini, H., Viguier, E. Rh-BMP-2 in Distraction Osteogenesis: Dose Effect and Premature Consolidation. Injury. 41 (7), 680-686 (2010).
  6. Schiller, J. R., Moore, D. C., Ehrlich, M. G. Increased Lengthening Rate Decreases Expression of Fibroblast Growth Factor 2, Platelet-Derived Growth Factor, Vascular Endothelial Growth Factor, and CD31 in a Rat Model of Distraction Osteogenesis. J Pediatr Orthop. 27 (8), 961-968 (2007).
  7. Aronson, J., Shen, X. C., Skinner, R. A., Hogue, W. R., Badger, T. M., Lumpkin, C. K. Rat Model of Distraction Osteogenesis. J Orthop Res. 15 (2), 221-226 (1997).
  8. Aida, T., Yoshioka, I., Tominaga, K., Fukuda, J. Effects of latency period in a rabbit mandibular distraction osteogenesis. Int J Oral Maxillofac Surg. 32, 54-62 (2003).
  9. Lammens, J., Liu, Z., Aerssend, J., Dequeker, J., Fabry, G. distraction Bone Healing Versus Osteotomy Healing: A Comparative Biochemical Analysis. J Bone Miner Res. 13 (2), 279-286 (1998).
  10. Isefuku, S., Joyner, C. J., Simpson, A. H. R. W. A Murine Model of Distraction Osteogenesis. Bone. 27 (5), 661-665 (2000).
  11. Eberson, C. P., Hogan, K. A., Moore, D. C., Ehrlich, M. G. Effect of Low-Intensity Ultrasound Stimulation on Consolidation of the Regenerate Zone in a Rat Model of Distraction Osteogenesis. J Pediatr Orthop. 23 (1), 46-51 (2003).
  12. Özdel, A., Sarisözen, B., Yalçinkaya, U., Demirag, B. The Effect of HIF Stabilizer on Distraction Osteogenesis. Acta Orthop Traumatol Turc. 49 (1), 80-84 (2015).
  13. Takamine, Y., et al. Distraction Osteogenesis Enhanced by Osteoblastlike Cells and Collagen Gel. Clin Orthop Relat Res. 399, 240-246 (2002).
  14. Wang, X., Zhu, S., Jiang, X., Li, Y., Song, D., Hu, J. Systemic Administration of Lithium Improves Distracted Bone Regeneration in Rats. Calcif Tissue Int. 96 (6), 534-540 (2015).
  15. Xu, J., et al. Human Fetal Mesenchymal Stem Cell Secretome Enhances Bone Consolidation in Distraction Osteogenesis. Stem Cell Res Ther. 7 (1), (2016).
  16. Yasui, N., et al. Three Modes of Ossification during Distraction Osteogenesis in the Rat. Bone Joint J. 79 (5), 824-830 (1997).
  17. Chang, F., et al. Stimulation of EP4 Receptor Enhanced Bone Consolidation during Distraction Osteogenesis. J Orthop Res. 25 (2), 221-229 (2007).
  18. Nyman, J. S., et al. Quantitative Measures of Femoral Fracture Repair in Rats Derived by Micro-Computed Tomography. J Biomech. 42 (7), 891-897 (2009).
  19. Hsu, J. T., Wang, S. P., Huang, H. L., Chen, Y. J., Wu, J., Tsai, M. T. The assessment of trabecular bone parameters and cortical bone strength: a comparison of micro-CT and dental cone-beam CT. J Biomech. 46, 2611-2618 (2013).
  20. Xue, J., et al. NELL1 Promotes High-Quality Bone Regeneration in Rat Femoral Distraction Osteogenesis Model. Bone. 48 (3), 485-495 (2011).
  21. Mark, H., Bergholm, J., Nilsson, A., Rydevik, B., Strömberg, L. An External Fixation Method and Device to Study Fracture Healing in Rats. Acta Orthop. 74 (4), 476-482 (2003).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

X CT

相关文章