我们在此介绍一种将转座子诱变与高通量测序相结合的技术,用于在仓鼠攻毒后鉴定并定量组织中的转座子钩端螺旋体突变株。该方案可用于筛选突变株在动物体内的存活与播散能力,也可应用于 体外 研究。
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我们在此介绍一种将转座子诱变与高通量测序相结合的技术,用于在仓鼠攻毒后鉴定并定量组织中的转座子钩端螺旋体突变株。该方案可用于筛选突变株在动物体内的存活与播散能力,也可应用于 体外 研究。
在本文中,我们描述了一种转座子测序(Tn-Seq)技术,用于鉴定和定量 问号钩端螺旋体 在感染金黄叙利亚仓鼠期间适合度发生变化的突变株。Tn-Seq 技术结合了随机转座子诱变与高通量测序技术的优势。将转座子突变株混合物(输入池)接种至动物体内,数天后采集血液和组织样本,以鉴定并定量各器官中突变株的数量(输出池)。通过将输出池与输入池进行比较,评估突变株的适合度变化 体内 每个突变株的适应性。该方法能够在有限数量的动物中筛选大量突变株库。经过少量修改后,本方案可适用于任何钩端螺旋体病动物模型,包括储存宿主模型(如大鼠)和急性感染模型(如仓鼠),以及 体外 研究。Tn-Seq 提供了一种强大的工具,用于筛选具有特定表型的突变体 体内 和 体外 适合度缺陷
对于某些细菌(如钩端螺旋体属 Leptospira spp.)而言,由于可用的遗传工具有限,致病基因的鉴定较为困难。一种常用的方法是通过随机转座子诱变构建突变体文库,随后确定每个突变体中转座子的插入位点,并在动物模型中对各个转座子突变体进行致病性检测。该方法耗时长、成本高,且需要使用大量实验动物。
当随机诱变技术首次被开发用于病原体时 问号钩端螺旋体通过在动物模型中测试单个突变株,鉴定了与毒力相关的基因1根据突变体在信号传导或运动性中的潜在作用,或其定位于外膜或细胞表面的预测结果进行筛选。由于大多数钩端螺旋体 基因编码功能未知的假定蛋白质2根据这些标准筛选突变体,会限制发现新的钩端螺旋体毒力基因的能力。
最近,研究人员利用仓鼠和小鼠模型对L. interrogans转座子突变株文库进行了感染性筛选3。每只动物接种一个包含多达10种突变株的混合文库。若通过血液和肾脏培养物的PCR检测到某突变株,则判定其具有感染性。由于需要对文库中的每种突变株分别进行PCR反应,该方法耗时费力。此外,由于未对培养物中各突变株的频率进行定量,该策略倾向于识别出高度减毒的突变株。
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警告:致病性钩端螺旋体(Leptospira spp.)菌株必须在生物安全二级(BSL-2)防护条件下操作。必须穿戴适当个人防护装备(PPE)。所有对致病性钩端螺旋体(Leptospira spp.)的操作均须在II级生物安全柜中进行。
1. 转座子突变文库的构建15
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通过接合方式构建L. interrogans转座子突变体文库需要使用过滤装置,如图1所示。每次接合反应可获得100至200个接合子。
通过半随机PCR扩增转座子末端及其邻近宿主序列,对每个突变体中产生的PCR产物进行测序,以确定转座子插入位点15 (图2A)。半随机PCR结果的一个示例如下所示 图2B在大多数情况下,使用 Deg1 和 Tnk1 引物进行第一轮 PCR,以及使用 Tag 和 TnkN1 引物进行第二轮 PCR 时,会观察到一条主导扩增条带。然而,由于五聚体序列的特异性较低(…N10在Deg1引物的3'端包含简并序列(GATAT-3'),该引物将在钩端螺旋体基因组.......
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尽管我们已展示了通过腹腔接种42株L. interrogans突变株的仓鼠初步实验结果17,但我们预计可通过Tn-Seq技术筛选更大规模的突变株库。由于接合子的频率较低(每次接合产生100–200个接合子),需要进行多次接合反应才能获得足够数量的突变株用于大规模Tn-Seq实验。在液体培养基中维持大量突变株会带来操作上的挑战,需加以解决。可使用深孔96孔板进行培养。培养物的密度可通过分光光度计在420 nm波长下测定光密度进行监测。所需动物数量的确定部分取决于输入菌株库的规模,必须通过功效分析来确定。对于大规模实验,我们建议在生物统计学家的指导下进行功效分析。
瓶颈效应可能影响从输出池中回收随机突变体的效率。尽管在我们的初步研究中未观察到严重的瓶颈效应17(图7),但大规模实验仍可能受到突变体随机丢失的影响。通过增加输入池中每个突变体的细胞数量以提高挑战剂量,可最大限度地降低出现瓶颈效应的可能性
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作者无任何利益冲突需要披露。
本工作由退伍军人事务部杰出奖(授予 D.A.H.)和美国国立卫生研究院资助 R01 AI 034431(授予 D.A.H.)支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 来自Streptomyces kanamyceticus的硫酸卡那霉素 | Sigma-Aldrich | K4000 | |
| 2,6-二氨基庚二酸 | Sigma-Aldrich | D1377 | |
| 盐酸二水 Spectinomycin 五水合物 | Sigma-Aldrich | S4014 | |
| 配备暗场聚光镜的 Axio Lab A1 显微镜 | Zeiss | 490950-001-000 | |
| DNeasy 血液与组织试剂盒 | Qiagen | 69504/69506 | |
| MinElute PCR 纯化试剂盒 | Qiagen | 28004/28006 | |
| QIAquick PCR 纯化试剂盒 | Qiagen | 28104/28106 | |
| Model 505 超声破碎仪 | Fisher Scientific | FB-505 | |
| 2.5" 杯状探头 | Fisher Scientific | FB-4625 | |
| Bead Ruptor 24 | Omni International | 19-010 | 第 3.1.2.4 步 |
| 末端脱氧核苷酸转移酶 | Promega | M828C | |
| Phusion 主混合液 | Thermo Scientific | F531 | 基因组文库制备,第 3.4 步 |
| DreamTaq 主混合液 | Thermo Scientific | K9011/K9012 | 转座子插入位点鉴定,第 1.2 步 |
| dCTP | Thermo Scientific | R0151 | |
| ddCTP | Affymetrix/USB Products | 77112 | |
| T100 梯度 PCR 仪 | BioRad | 1861096 | |
| Qubit 2.0 荧光计 | Invitrogen | Q32866 | 第 3.6 步 |
| Qubit dsDNA HS 检测试剂盒 | Invitrogen | Q32851/Q32854 | 第 3.6 步 |
| Qubit 检测管 | Life Technologies | Q32856 | 第 3.6 步 |
| PBS pH 7.2 (1X) | Gibco | 20012-027 20012-050 | |
| 一次性手术刀 No10 | Feather | 2975#10 | |
| 塑料 K2 EDTA 2 ml 采血管 | BD vacutainer | 367841 | |
| 带 26G x ½” 针头的 U-100 注射器 | BD vacutainer | 329652 | 腹腔注射攻毒,第 2.2.1 步 |
| 3 mL 带鲁尔锁扣针头的注射器 | BD vacutainer | 309657 | 心脏穿刺,第 2.4.2 步 |
| 25G X 5/8” 针头 | BD vacutainer | 305901 | 心脏穿刺,第 2.4.2 步 |
| 带塞子的 25 mm 烧结玻璃底座 | EMD Millipore | XX1002502 | 过滤装置系统,第 1.1.7 步 |
| 25 mm 铝制弹簧夹 | EMD Millipore | XX1002503 | 过滤装置系统,第 1.1.7 步 |
| 15 ml 硼硅酸盐玻璃漏斗 | EMD Millipore | XX1002514 | 过滤装置系统,第 1.1.7 步 |
| 125 ml 带侧管的锥形瓶 | EMD Millipore | XX1002505 | 过滤装置系统,第 1.1.7 步 |
| 醋酸纤维素滤膜 VVPP(孔径 0.1 mm;直径 25 mm) | EMD Millipore | VVLP02500 |
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