方法文章

寨卡病毒特异性诊断表位发现

DOI:

10.3791/56784

2017年12月12日

本文内容

摘要

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在本实验方案中,我们描述了一种利用高密度肽微阵列发现寨卡病毒特异性诊断肽的技术。该方案可 readily 适用于其他新发传染病的研究。

摘要

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高密度肽微阵列可在单个标准显微镜载玻片上同时筛选六千多种以上的肽。该方法可用于药物发现、治疗靶点鉴定以及诊断技术的开发。本文介绍了一种利用高密度肽微阵列发现特异性寨卡病毒(ZIKV)诊断肽的实验方案。将经确认感染寨卡病毒(ZIKV)的人血清样本与高密度肽微阵列共同孵育,该微阵列包含由整个ZIKV蛋白序列转化而来的3,423种独特的15个线性氨基酸(aa)残基肽段,相邻肽段间具有14个氨基酸残基的重叠,并以双份形式点样。在同一微阵列上使用不同的二抗进行染色,检测到可与血清中存在的免疫球蛋白M(IgM)和免疫球蛋白G(IgG)抗体结合的肽段。这些肽段被选中用于后续验证实验。本方案中,我们详细描述了高密度肽微阵列的设计、处理及分析策略。

引言

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基于临床症状诊断寨卡病毒(ZIKV)感染具有挑战性,因为其传播媒介、地理分布和症状与登革病毒和基孔肯雅病毒感染相似1。鉴于孕妇在妊娠期间感染ZIKV可能导致不良妊娠结局,区分这三种病毒尤为重要。尽管现有的分子诊断检测具有特异性,但仅在急性感染期相对较短的时间内对血液或唾液样本有效2,3。因此,在感染初期之后,血清学检测对于诊断至关重要4

开发针对寨卡病毒(ZIKV)的特异性血清学检测方法面临两个挑战:第一,目前尚不清楚人类免疫系统所识别的寨卡病毒抗原;第二,黄病毒属中保守的氨基酸序列会引发抗体交叉反应。我们的目标是发现可用于诊断的ZIKV特异性多肽。已有多种方法被用于筛选覆盖整个蛋白质的多肽文库,包括噬菌体、细菌和酵母表面展示技术5,6,7,8,9,10。我们的策略是采用高....

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方案

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这些数据来自纽约大学牙医学院开展的一项正在进行的研究,已获得纽约大学医学院机构审查委员会(IRB # H10-01894)的批准。本研究使用的临床样本为去标识化的样本,此前已用于诊断,并获得了纽约州卫生部沃兹沃思中心(位于纽约州奥尔巴尼)的使用许可。

1. 将寨卡病毒高密度肽微阵列芯片安装至特定孵育托盘中

  1. 使用无粉手套仅触碰载玻片边缘进行操作。载玻片尺寸为 75.4 mm × 25.0 mm,厚度为 1 mm。将载玻片放入孵育盘中,确保微阵列表面朝上。
  2. 将密封垫的光面朝下,覆盖在微阵列表面。为确保位置准确,需使密封垫上的螺孔与底板上的螺孔对齐重合。
  3. 将孵育盘上部置于密封垫上,形成微阵列反应室。
  4. 用手以对角交替顺序依次均匀拧紧螺钉,起始于左上方,随后为右下方,逐个旋紧以固定载玻片。盖上孵育盘的盖子。

2. 背景相互作用检测:用二抗染色微阵列

注意:使用移液器将溶液(标准缓冲液和封闭缓冲液、稀释的二抗)滴加到芯片室的角落。

  1. 将微阵列置于标准缓冲液(1×磷酸盐缓冲液(PBS),0.05% Tween 20,pH 7.4,经0.45 µm滤膜过滤)中孵育,每张微阵列总体积为2,000 µL,在室温(RT)下以140 rpm转速于摇床上孵育15分钟。

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结果

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使用所述方案获得的结果如图2 图3所示。在使用抗人IgM二抗对微阵列进行预染色时,未观察到背景相互作用(数据未显示)。使用抗人IgM偶联物染色后,多个区域的绿色荧光强度高于背景,表明这些肽段与宿主血清样本中的IgM发生了结合(图2)。IgG检测(红色荧光信号)仅显示出少数几个肽段(图2)。

由同一微阵列制造商提供的专用软件在扫描后对微阵列进行分析。生成的读出文件包含每个点的信号强度、背景值以及对应的肽序列。通过绘制从原始值中减去背景后获得的绿色前景中位数值,可将每种对IgM产生强反应的肽的点荧光强度可视化(图3)。

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讨论

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我们设计了一项实验方案,利用包含寨卡病毒全蛋白序列(法属波利尼西亚株)的高密度肽微阵列。该微阵列通过点样3,423种不同的重叠线性肽制备而成,每种肽段长度为15个氨基酸,相邻肽段在序列上仅有一个氨基酸残基的差异。,14个残基重叠)。尽管可以打印较短的重叠片段,但较长的重叠片段可使表位定位更加精确。每种多肽均打印两次以提高可靠性。

实验开始前,必须先用二抗对微阵列进行预染色,以检测可能存在的背景信号,并将其与样本特异性信号区分开来。使用特定的封闭缓冲液也至关重要,因为其他封闭剂(如牛血清白蛋白(BSA)或脱脂奶粉)可能导致信号强度降低。一份经验证含有ZIKV IgM抗体的血清样本最初以1:1,000稀释度与微阵列孵育,但未检测到信号。随后将稀释度降低至1:500,结果在与样本中IgM抗体发生反应的肽段上观察到微弱信号。当经验证的寨卡病毒(Zika)血清样本稀释至1:250时,获得了最佳结果。为避免背景信号增强,未再使用更高浓度的血清样本进行重复测试。操作微阵列时需格外小心,以防刮伤其表面。因此,稀释后的血清和标准缓冲液等溶液应从微阵列反应室的角落加入和移除。另一个.......

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披露

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作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

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本项目目前获得美国国家儿童健康与人类发展研究所(NIDCRR44 DE024456)的小企业创新研究(SBIR)行政补充资助。该资助源自NIDCR关于HIV的U01 DE017855资助项目,旨在开发一种用于HIV的确认性即时诊断检测方法。我们衷心感谢德国海德堡PEPperPRINT公司的Silke Weisenburger在技术方面提供的协助与大力支持。同时,我们感谢纽约大学朗格尼医学中心提供LI-COR Odyssey成像系统。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
PEPperCHIP 定制多肽微阵列PEPperPRINTPPC.001.001定制多肽微阵列:我们的微阵列包含完整的寨卡病毒蛋白序列
PEPperCHIP 孵育槽 3/1PEPperPRINTPPC.004.001
PEPperCHIP 染色试剂盒(680 nm)(抗 HA,DyLight 标记)PEPperPRINTPPC.037.002
PepSLide 分析仪PEPperPRINTPSA.004.00114 天免费 Windows 许可证
Rockland 封闭缓冲液RocklandMB-070
抗人 IgM(μ 链)DyLight 800Rockland609-145-007
抗人 IgG Fc DyLight 680Thermo ScientificSA5-10138
LI-COR Odyssey 成像系统LI-COR
轨道摇床设备IKAMTS 2/4 数字微孔板摇床
Adobe IllustratorAdobe
DeltagraphRedrocks

参考文献

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  1. Kelser, E. A. Meet dengue's cousin. Zika. Microbes Infect. 18 (3), 163-166 (2016).
  2. Musso, D., et al. Detection of Zika virus in saliva. J Clin Virol. 68, 53-55 (2015).
  3. Siqueira, W. L., et al.

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标签

IgM IgG

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