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方法文章

体外体内 评估肠上皮细胞通透性的方法

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DOI:

10.3791/57032

2018年10月19日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文介绍了两种评估肠道屏障功能的方法。使用上皮电阻仪(伏特/欧姆计)直接在组织培养板孔中测量培养上皮细胞的跨上皮电阻,以评估其屏障完整性。在小鼠中,采用荧光素异硫氰酸酯标记的葡聚糖(FITC-dextran)灌胃法测定肠道通透性。 体内.

摘要

肠道屏障可防御致病微生物和微生物毒素。其功能受紧密连接通透性和上皮细胞完整性的调控,肠道屏障功能的破坏可促进胃肠道及全身性疾病的发展。本文介绍了两种测量肠上皮通透性的简单方法。体外实验中,将Caco-2BBe细胞以单层形式接种于组织培养板孔中,使用上皮电阻仪(伏特/欧姆计)测量跨上皮电阻(TER)。该方法因操作简便且可重复性好而具有较高可靠性。体内实验中,通过口服灌胃给予小鼠4 kDa荧光素异硫氰酸酯(FITC)-葡聚糖,随后检测采集的小鼠血清样本中FITC-葡聚糖的浓度,以评估上皮通透性。口服灌胃可提供精确的给药剂量,因此是体内测量肠道通透性的首选方法。综上所述,这两种方法可分别用于体外体内测量肠上皮通透性,进而用于研究疾病与屏障功能之间的关联。

引言

肠上皮细胞不仅负责营养物质的吸收,还构成重要的屏障,以抵御病原微生物和微生物毒素的侵袭。这种肠道屏障功能由紧密连接通透性和上皮细胞完整性所调控1,2,3,上皮屏障功能的失调与炎症性肠病(IBD)相关。毗邻连接的肌动球蛋白环(PAMR)位于细胞内,紧邻紧密连接。PAMR的收缩由肌球蛋白轻链(MLC)调控,对调节紧密连接通透性至关重要4,5,6,7,8,9,10。肿瘤坏死因子(TNF)通过上调肠上皮MLC激酶(MLCK)的表达并诱导闭合蛋白(occludin)内化,在肠道屏障功能丧失中起核心作用11,12,13

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方案

本研究已获苏州大学剑桥-苏大基因资源中心(CAM-SU)动物护理与使用方案的批准。

1. 在多孔聚碳酸酯膜上接种和培养 Caco-2bbe 细胞

  1. 在含有10%胎牛血清的DMEM培养基中,于T75培养瓶中培养细胞。根据细胞密度定期更换培养基。
    注意:为了获得最佳的铺板效果,细胞应快速分裂并呈扁平的“煎蛋状”,这表明细胞处于生长阶段。
  2. 当细胞融合度达到80%时,将培养瓶从培养箱中取出,吸去培养基。用1-2 mL无钙、镁的无菌PBS冲洗残留培养基。2+。用移液管加入1.5 mL胰蛋白酶-EDTA至培养瓶中,轻轻摇晃培养瓶;然后将培养瓶放入 37 °C 孵育20分钟,期间不摇动。
  3. 在细胞进行胰蛋白酶消化的同时,将含有孔隙聚碳酸酯膜的插件(孔径大小, 0.4 µm;表面积,0.33 cm²2;参见 材料表) 加入24孔板中。在基底室(膜的下层空间)加入1.0 mL培养基。
  4. 将5 mL培养基加入培养瓶中,用力将细胞反复吹打瓶壁5-10次,以获得松散的单个细胞或2-3个细胞组成的细胞团。
  5. 将0.166 mL细胞(达到1:8稀释比例)接种至顶端室(膜的上层空间)。于37°C、5% CO₂培养箱中孵育 37 °C 长达3周。
    1. 每周三次通过压力泵小心....

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结果

在培养条件下,Caco-2BBe 细胞以单层形式生长,并逐渐分化为具有刷状缘的成熟吸收性肠上皮细胞。在本方案中,将 Caco-2BBe 细胞以高密度接种于聚碳酸酯膜上,接种后一天细胞即达到 100% 汇合度。然而,此时细胞仍处于未分化状态:为实现细胞的完全分化,需每 2–3 天更换一次培养基,持续 3 周。通过细胞核和 F-肌动蛋白染色,可显示未分化细胞与分化细胞之间的差异。在未分化细胞中可清晰观察到张力纤维。与未分化细胞相比,分化后的细胞体积更小,细胞核更大,且张力纤维更少(图 1)。

TNF 通过依赖 MLCK 的紧密连接调节在肠道屏障功能丧失中起核心作用。检测了不同时间点未处理或经 TNF 处理细胞的 TER。如图 2所示,TNF 以剂量依赖性方式显著降低 Caco-2BBe 单层细胞的 TER,表明 TNF 增加了上皮通透性。.......

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讨论

该实验方案中有多个关键步骤。始终使用Caco-2BBe(表达刷状缘的)细胞进行TER测定,该细胞系是从Caco-2细胞系中筛选出的、能够表达刷状缘蛋白的亚系。当Caco-2BBe细胞完全分化后(汇合后培养约3周),会呈现出绒毛状吸收性表型17。在测定过程中必须避免污染,并对电极进行灭菌处理。由于该操作为非无菌操作,大多数情况下测定时间不得超过8小时。在测量过程中,我们确定了插入物内外两个点之间的电阻值。由于细胞状态的差异,不同位点的电阻测量值有时可能存在显著差异;这是该方法的主要局限性之一。然而,这种变异可通过统计学方法及其他方法显著降低。TER方法也可应用于其他细胞类型,例如用于评估肺上皮细胞和血管内皮细胞的屏障完整性。此外,TER测定还可用于药物毒性研究。

给予可通过扩散进入肠上皮的不可消化大分子,可用于评估肠道通透性。该方法的优点在于可在体检测肠道的屏障功能。可使用的标记物有多种类型,包括放射性同位素、聚乙二醇和糖类18。然而,为精确测量通透性,需考虑若干因素:(.......

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披露

作者声明不存在竞争性财务利益。

致谢

我们感谢哈佛医学院布莱根妇女医院的Jerrold R. Turner博士在完成本研究过程中提供的慷慨帮助。本工作由国家自然科学基金委员会(资助编号 81470804, 31401229 和 81200620)、江苏省自然科学基金(项目编号 BK20180838 和 BK20140319)、江苏省研究生科研创新计划项目(项目编号 KYLX16-0116)、苏州大学高级研究项目(项目编号 SDY2015_06)以及克罗恩病 & 结肠炎基金会研究奖学金(资助编号 310801)。

....

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
22 G 灌胃针VWR20068-608
4 kDa FITC-葡聚糖Sigma46944
AvertinSigmaT48402
黑色荧光检测用 96 孔板Fisher14-245-197A
C57/B6 小鼠南京大学南京生物医药研究院
Caco-2BBe 细胞ATCCCRL-2102
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals2160110
含高糖和丙酮酸钠的 DMEM 培养基HycloneSH30243.01B
上皮电阻(伏特/欧姆)测量仪Millicell-ERSMERS00002
乙醇国药集团化学试剂有限公司10009218
Falcon 管(15 mL)Corning430791
FBSGibco10437-028
荧光显微镜OlympusFV1000
荧光计BiotekSynergy 2
HBSS138 mM NaCl, 0.3 mM Na2HPO4, 0.4 mM MgSO4, 0.5 mM MgCl2, 5.0 mM KCl, 0.3 mM KH2PO4, 15.0 mM HEPES, 1.3 mM CaCl2, 25 mM 葡萄糖 
IFNgPeproTech315-05-20
模块化组织包埋中心LeicaEG1150H
血清采集管Sarstedt41.1378.005
T75 培养瓶Corning430641
TNFPeproTech315-01A
石蜡SigmaA6330-1CS
聚碳酸酯膜(Transwell)Costar3413
压力泵AUTOSCIENCEAP-9925
旋转切片机LeicaRM2235
胰蛋白酶-EDTAGibco25200-056
二甲苯国药集团化学试剂有限公司10023418

参考文献

  1. Turner, J. R. Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nature reviews. Immunology. 9, 799-809 (2009).
  2. Odenwald, M. A., Turner, J. R. The intestinal epithelial barrier: a therapeutic target? Nature reviews. Gastroenterology & ....

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重印与许可

标签

肠道上皮通透性跨上皮电阻Caco-2BBe 细胞FITC 葡聚糖检测口服灌胃法DSS诱导性结肠炎TER测定细胞培养单层荧光检测组织病理学分析