尺寸事项:新生隐球菌中胶囊直径的测定

摘要

多糖胶囊是新生隐球菌的主要毒力因子, 其大小与菌株的毒力密切相关。胶囊直径测量用于表型检测和测量疗效。本文提出了一种标准的胶囊诱导方法, 并比较了两种染色法和测量直径法。

摘要

新生隐球菌多糖胶囊是致病性酵母的主要毒力因子和最常见的研究领域之一。囊粒大小在菌株间有很大差异, 在引入压力或低养分条件时, 具有快速生长的能力, 与菌株的毒力呈正相关。由于这些原因, 胶囊的大小对C. 隐球菌研究人员非常感兴趣。在表型测试中诱导了C. 隐球菌胶囊的生长, 以帮助了解不同处理方法对酵母的影响以及菌株之间的大小差异。这里我们描述了胶囊诱导的标准方法之一, 并比较了两种被接受的染色和测量胶囊直径的方法: (i) 印度墨水, 一个负的污点, 使用与常规光镜和 (ii) 共染色与荧光染料的细胞壁和胶囊后, 共聚焦显微镜。最后, 我们展示了如何通过计算图像分析来自动测量来自印度墨水染色样品的胶囊直径。

引言

每年影响一季度百万人, 每年造成18万以上死亡,新生隐球菌是致病性, 胞内酵母和球菌^1,2,的致病剂³. 受影响最严重的是贫穷国家的艾滋病毒阳性患者, 他们没有现成的抗逆转录病毒疗法, 使他们敏锐地易患疾病^4,5,6。疾病控制中心的数据表明, 在撒哈拉以南非洲地区, 比起在记录中的 ¹上的任何埃博拉病毒爆发, 每年都有更多的人死于肺结核。最常见的接触途径是吸入在环境中常见的干燥孢子⁷。进入肺部后, 有几种致病因素有助于在受感染的个体中获得C. 隐球菌的成功。多糖胶囊被认为是微生物的主要毒力因子, 因为 acapsular 菌株不是毒性的⁸。

隐球菌胶囊由三个主要成分组成: glucuronoxylomannan (GXM)、galactoxylomannan (GalXM) 和 mannoproteins (MPs)⁹。虽然 MPs 是胶囊中相对较小的细胞壁相关组件, 但它们是免疫的, 可以促进一种主要支持炎症的响应^9,10。相比之下, GXM 和 GalXM 构成了胶囊的大部分 (> 90% 的重量), 并有免疫抑制效应¹¹。除了免疫调节作用外, 胶囊的快速扩增在体内形成了一个机械屏障, 可通过宿主吞噬细胞 (即、中性粒细胞和巨细胞)¹²摄取。C. 隐球菌胶囊及其合成是复杂的, 但总的来说, 增加的胶囊直径与增加的毒力^6,13,14相关。考虑到这一点, 对于C. 隐球菌研究人员来说, 能够快速准确地量化胶囊测量是很重要的。

C. 隐球菌细胞及其多糖胶囊都是动态结构, 随着时间的推移¹⁵显示变化。该胶囊可以在密度、大小和组件上发生变化, 以响应主机环境中的更改^16,17,18。低铁或营养水平, 接触血清, 人体生理 pH 值和增加 CO₂是已知的启动胶囊生长^16,18,19,20。此外, 研究人员还显示结构变化导致感染期间免疫反应有显著差异, 在其主机²¹²²上为C. 隐球菌提供了优势。这是众所周知的, 因为C. 隐球菌胶囊的体系结构已经以多种方式进行了分析。例如, 电子显微镜显示, 该胶囊具有一个具有内部电子密层的异构矩阵, 在外层, 更透水层的下面是²³。光散射和光镊的使用使研究人员得以进一步阐明其大分子特性²⁴。通过对静态和动态光散射测量结果的分析, 我们知道多糖胶囊具有复杂的分支结构²³。光学镊子用于测试结构的刚度, 并评估其抗体反应性²⁴。然而, 到目前为止, 对C. 隐球菌胶囊最常用的分析是对其大小的测量。

为了量化胶囊的大小, 研究者使用了一个简单的测量方法: 胶囊的线性直径。数字显微镜用于捕获多个C. 隐球菌细胞 (一般上百个) 的图像, 它们都是印度墨水或荧光染料染色的。测量每个细胞体和周围胶囊的大小。通过对整个细胞直径 (细胞体 + 胶囊) 的减去细胞体直径, 计算出该胶囊的平均直径。直到这一点, 这些测量已经手动完成。虽然一般准确, 这种方法有缺点的研究人员。大型数据集可能需要几天甚至几周的时间来进行手工分析。由于这些测量是手工完成的, 所以主观和人为的错误可能会影响结果。

自动计算图像分析已成为许多分子细胞生物学领域的研究人员不可缺少的工具, 能够更快更可靠地分析生物图像^25,26,27。精确的图像分析技术对于从通常复杂而庞大的数据集挖掘定量信息是必要的。然而, 一些测量, 特别是对C. 隐球菌胶囊的测量, 一直难以实现自动化。准确地识别细胞壁与胶囊之间的界面, 在相衬显微镜下成像时通常以暗环的形式出现, 用一个简单的阈值来解决会很麻烦。此外, 在文化中的C. 隐球菌细胞往往聚集在一起, 准确测量细胞的精确分割是必要的。

该项目的目的是 (i) 说明在C. 隐球菌中胶囊诱导的标准协议之一, (ii) 比较和对比印度墨水和荧光染色, 因为它们涉及胶囊直径测量, (iii) 发展简单,用印度墨水染色的图像测量胶囊直径的计算方法使用图像分析软件, (iv) 评估手动测量胶囊直径和使用软件自动化的好处和局限性。我们发现, 这两种染色方法, 荧光标记的细胞壁和胶囊, 而更费时, 提供了最一致的结果之间的实验。然而, 这两种方法都使我们能够成功地区分出不同胶囊大小的实验室和临床C. 隐球菌菌株。此外, 我们能够自动测量胶囊直径从印度墨水染色图像, 并发现这是一个可行的替代手工测量胶囊。

方案

注意: C. 隐球菌是生物安全级别 2 (BSL-2) 病原体, 研究人员必须采取适当的预防措施。有关如何与 BSL-2 病原体安全工作的详细程序, 可在疾病控制中心网站上找到, 但重要的是要注意, 所有接触到C. 隐球菌的人都应该接受适当的训练来处理致病剂应始终佩戴适当的个人防护用品 (PPE), 一般是乳胶或丁腈橡胶手套。此外, 离心机上的转子应密封, 以防止 aerosolization 的样品和任何泄漏清除立即使用10% 漂白剂解决方案²⁸。

1. 胶囊诱导

注: 除非另行注明, 所有步骤均应在室温下进行。

1. 在酵母蛋白胨葡萄糖 (YPD) 汤 (pH 值 6.5 +/-0.2) 中培养C. 隐球菌, 并在37摄氏度孵育, 直到它们处于对数阶段 (约 18-36 h)。
2. 离心细胞在 870 x g为5分钟在21°c 和洗涤三次与磷酸盐缓冲盐水 (PBS)。
3. 使用 hemocytometer (或自动单元格计数器) 在 Dulbecco 最小的基本介质 (DMEM) 中, 在 2 x 10⁵ cells/2 mL 上计数单元格和并用重悬。
4. 诱导胶囊, 孵育在37°c 和 5% CO₂为 18 h。
   注意: 在介质中缺少营养素和 CO₂的存在相结合会刺激C. 隐球菌胶囊的生长。
5. 孵化后, 通过离心 (如上所述) 收割细胞, 除去除5-10 µL 上清的全部。同时, 收获相应的非诱导细胞样本, 为每个菌株进行测量。使用这些作为负控制。
   注: 细胞小球将非常小, 可能很难看到。吸上清液时要小心。
6. 用印度墨水 (2.1 节) 或荧光染料染色 (2.2 节)。

2. 染色

1. 只用印度墨水染色
   1. 为了用印度墨水染色酵母, 并用重悬在剩余的清液中的颗粒, 并将 4μL (大约一半) 的细胞悬浮物和4μL 的印度墨水添加到玻璃显微镜滑梯上。轻轻搅拌, 避免起泡。
   2. 应用13毫米玻璃盖玻片 (#1 5 厚度) 和密封边缘与无毒密封胶 (清除指甲油), 以防止样品干燥。
2. 只用荧光染料染色
   1. 用荧光染料染色酵母, 并用重悬50µL PBS 中的细胞颗粒, 1% 牛血清白蛋白 (BSA)。
   2. 用等量的 Calcofluor 白色 (CFW) (1 µg/毫升) 和蒴果单克隆 18B7 (参见材料表), 在37摄氏度的30分钟内, 孵化出与 AlexaFluor488 (AF488) (10 µg/毫升) 相结合的培养物。
   3. 离心细胞在 870 x g 5 分钟在21°c 后孵化和吸出上清。
   4. 并用重悬细胞颗粒在10µL PBS 与1% 牛血清白蛋白 (BSA)。
   5. 吸管8µL 细胞悬浮在玻璃显微镜幻灯片上。
   6. 应用13毫米玻璃盖玻片 (#1 5 厚度) 和密封边缘与无毒密封胶 (清除指甲油), 以防止样品干燥。
3. 用印度墨水和荧光染料染色
   1. 为了更直接地比较印度墨水染色与荧光染料的功效, 用两种着色剂对同一细胞种群进行染色。要做到这一点, 首先孵化细胞与荧光胶囊和细胞壁染色, 每步 2.2.1-2.2.3。
   2. 接下来, 将荧光染色的电池悬浮液和印度墨水的等量容积 (4 µL) 移到玻璃滑梯上。轻轻地混合。
   3. 应用13毫米玻璃盖玻片 (#1 5 厚度) 和密封的边缘与无毒密封胶 (清除指甲油), 以防止样品干燥。

3. 图像采集/显微术

1. 用印度墨水染成的成像细胞。
   1. 使用标准光显微镜 (100X 放大倍数) 获取图像。
   2. 每个条件下至少有50个单元格的图像。
      注意: 每个字段的单元格数会有所不同, 这是可以接受的。然而, 重要的是, 重叠的单元格保持在最低限度, 因为它们很难测量 (手动和自动软件)。对于这些实验, 图像获得了在深度16位, 曝光时间优化, 以最大限度地提高图像对比度, 同时尽量减少的模糊, 因为小的移动的细胞。
2. 荧光染料染色的成像细胞
   1. 通过荧光显微镜对细胞进行成像, 打开显微镜成像软件, 选择合适的显影激发和发射波长 (CFW 和 AF488 分别使用405nm 和 488 nm 灯激发)。使用荧光显微镜获取图像。
   2. 每个条件下至少有50个单元格的图像。
      注意: 每个字段的单元格数会有所不同, 这是可以接受的。然而, 重要的是, 重叠的单元格保持在最低限度, 因为这些都难以测量 (手动和自动软件)。
   3. 获取单元格的 z 堆栈图像序列, 以确保获得给定字段中每个单元格的最大胶囊直径。
      1. 在显微镜控制软件中, 点击 "z 栈" 栏打开 "z 栈" 控制面板, 然后选择面板左上角的 "第一个/最后一个" 选项。
      2. 使用显微镜上的精细对焦控制, 集中在一个单一酵母细胞的最宽点以下的水平, 并在当前的视野中的所有胶囊, 并点击 "设置第一"。
      3. 使用精细焦点控件将焦点放在同一个单元格体的最宽点之上, 并在当前字段中的所有单元格中, 单击 "最后设置"。
      4. 然后, 单击 "获取" 选项卡上的 "开始实验" 以获取当前位置的 z 堆栈。在多个位置重复该过程, 直到获得至少50个单元格的 z 堆栈图像为止。
         注: 对于这些实验, 共焦针孔被设置为 1.0 AU 和一个重叠 z 系列10-20 片覆盖0.7 µM 每一个在选定的位置获得。非通风单元。
   4. 接下来, 使用适当的图像分析软件将每个 z 栈系列转换为最大强度投影 (MIP)。
      注意: MIPs 项目在堆叠图像²⁹的每一个平面上的最大强度。创建 MIPs 使一个人能够产生2维的图像表示形式, 对应于捕获的3维堆栈中的最大单元格和胶囊直径。
3. 用印度墨水和荧光染料染成的成像细胞
   1. 使用 widefield (40X 放大) 或共聚焦显微镜 (63X 或100X 放大) 获取图像。对于印有印度墨水和荧光染料的细胞, 使用 widefield 显微镜捕捉图像, 并配备计算机控制阶段和油浸泡目标。
      注: 使用的显微镜应使用成像软件 CFW 控制。通过 340-380 nm 激发过滤器激发出的荧光, 发射的光应该通过从 400 nm 的分色镜中反射出来的 435-485 nm 屏障过滤器检测出来。AF488 荧光可以通过465-495 纳米励磁过滤器激发, 通过一个 505 nm 的分色镜反射的 515-555 nm 屏障过滤器可以检测出发射光。
   2. 每个染色方法的每种条件下至少有50个细胞。

4. 胶囊的手动测量

1. 对于染有印度墨水或荧光污渍的细胞, 使用细胞测量软件手动测量胶囊和细胞直径 (参见材料表)。要做到这一点, 请转到 "文件" > "打开图像" > "度量值", 并使用游标在整个单元格的最宽点 (总直径) 中绘制一条直线。
2. 接下来, 再次单击 "测量", 并通过单元格体 (细胞体直径) 绘制一条直线。
   注意: 测量被自动保存到单元格中。
3. 对所有单元格重复此过程 (最小为 50/组)。
4. 要在测量后保存图像, 请单击 "文件" > "另存为", 并相应地命名图像。
5. 选择新测量的文件并将数据导出到电子表格软件。
6. 用方程计算平均胶囊直径: ([总直径]-[细胞体直径])。

5. 胶囊的自动测量

注意: 对于成功的自动测量, 请使用具有较高对比度的16位图像, 并将其与适当的图像分析软件适当地集中在一起 (请参见材料表)。当成像C. 隐球菌用于胶囊测量时, 重点放在细胞壁和胶囊之间的边界上的暗环上是很重要的。这使得软件能够正确地描绘细胞和胶囊。

1. 使用适当的图像编辑软件反转并创建所有印有墨迹的彩色细胞图像的副本 (请参阅材料表)。为此, 请单击 "文件" > "打开" 以打开印度墨迹着色图像, 然后 "控制" + "I" 反转图像。单击 "文件" > "另存为" 以保存反转图像。
2. 要将原始图像和倒图导入到软件中, 请单击 "文件" > "导入序列" > "加载图像" > "定义序列 (手动)" > "维度 (通道)" > "导入" > "应用"。
   注意: C. 隐球菌细胞体和胶囊可以用特定的算法 (称为 "食谱") 来识别和屏蔽, 该软件包括在内。
3. 使用 "菌落分析器 (荧光)" 食谱对倒置图像进行检测和掩模, 然后单击 "应用"。在反转图像中, 定义C. 隐球菌细胞边界的暗环比周围的胶囊更亮。
4. 使用 "菌落分析器 (荧光)" 食谱对倒置图像, 以分割C. 隐球菌细胞体从他们的胶囊, 然后单击 "应用"。这将创建计数掩码。通过右键单击标记为 "计数掩码" 的标签, 重命名此计数掩码 "单元格体"。
   注意: 该食谱由多个图像处理步骤组成: 背景删除、对象检测、对象分离和子集筛选。
5. 接下来, 使用原始图像上的 "细胞增殖" 食谱来检测和遮盖胶囊, 然后点击 "应用"。这将创建计数掩码。通过右键单击标记为 "计数掩码" 的标签, 重命名此计数掩码 "胶囊"。
6. 使用食谱, ' 胶囊分区 ', 创建一个新的面具上的原始图像, 以分割相邻的胶囊彼此。为此, 请从食谱下拉菜单中单击 "胶囊分区"。在 "胶囊分区" 框中, 为胶囊区域选择现在重命名的计数掩码 "胶囊" (5.5)。为加密单元格选择现在重命名的计数掩码 "单元格体" (5.4)。为输入通道选择 "原件", 并 "为已分区的胶囊创建掩码。单击 "应用
   注: 配方产生细胞和胶囊直径, 定义为穿过细胞和胶囊中心的最长和最短轴的平均值, 以及从检测掩模处测量的面积。查找此软件中 "电子表格" 选项卡下的输出。对所有图像重复此过程 (最少50个单元格/组)。该配方的参数可以调整, 以优化单个图像的检测或优化的批量检测多图像。额外的测量可以计算的配方, 综合表征细胞和胶囊的形态。
7. 将数据导出到电子表格软件的选择中进行进一步分析。

结果

为了说明胶囊诱导、细胞染色、影像学和测量技术, 我们使用了三株C. 隐球菌:常见的, 特点很好的实验室菌株, H99S³⁰, 和前两个临床分离菌株未知的胶囊直径, B18 和 B52³¹。

使用印度墨水的胶囊感应、染色和图像采集工作流显示在图 1A中。从所有三种菌株中取出的图像在图 1B中显示为预置和后置。研究人员将知道, 如果胶囊诱导是成功的, 通过比较的细胞, 已经经历了胶囊诱导到那些从相同的文化, 没有。明显的大小增加通常是明显的在大多数菌株后诱导, 虽然一些菌株将展出自然小胶囊, 即使在诱导 (见图像的 B18 在图 1B)。应该指出的是, 如果在感应之前...

讨论

数十年来, 该胶囊一直是研究的主要焦点, 对 mycologists 和临床医生感兴趣的C. 隐球菌和球菌由于其作用的主要致病因素的病原体。用显微显微镜测量不同生长条件下的胶囊大小差异, 可以提供有关病原体及其对各种刺激的反应的重要信息 (即, 不同的环境条件,潜在的药物治疗,等) 在这里, 我们概述了一种方法, 以诱导生长的胶囊在C. 隐球菌, 并比较了两种不同的胶囊染色协议。最后, 我们展示了如何使用图像分析软件自动测量从印度墨水染色细胞的图像的胶囊直径, 产生的结果, 可比手工测量方法。

在我们的实验中, 我们比较了两个临床菌株, B18 和 B52, 与 H99S, 标准实验室应变的已知胶囊大小¹⁸。两种染色方法均表明, 临床菌株, B52, 有三株最大胶囊直径的检测。然而, 荧光测量的结果能够辨别出两株小胶囊大小的差异, 而印度的墨量测量则不同。这两种染色方法的结果是一致的, 这表明两者都是有效的, 但使用荧光染色的C. 隐球菌的图像可...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
胶囊诱导
新型隐球菌细胞			临床实验室菌株 H99S 是杜克大学 John Perfect 博士的一份好意礼物。临床菌株 B18 和 B52 是宾夕法尼亚大学 Greg Bisson 博士的好意礼物。
酵母蛋白胨葡萄糖肉汤 （YPD）	Fisher Scientific	DF0428-17-5
磷酸盐缓冲盐水 （PBS）			这是在实验室中使用标准配方（137 mM NaCl、2.7 mM KCl、10 mM Na2HPO4O、2 mM Kh2PO4O）
DMEM/含 L-谷氨酰胺的高葡萄糖，不含丙酮酸钠	生命科学	SH30022.01
6 孔板	Falcon	CL5335-5EA
振荡培养箱	Thermo Scientific		MaxQ6000
CO2 培养箱	Fisher Scientific		Isotemp
离心机	Thermo Scientific		Legend
XTR染色
微量离心机	Thermo Scientific		Legend Micro 21R
印度墨水	Fisher Scientific	14-910-56
Calcofluor 白色	Sigma-Aldrich	18909-100ML-F
18B7 小鼠抗 GXM 抗体与 Alexafluor 488			来自 Arturo Casadevall 博士（约翰霍普金斯大学）的善意礼物
含 1% 牛血清白蛋白 （BSA）			的 PBS 与上面列出的配方相同（第 4 行），添加了 1% BSA 并进行了过滤灭菌。
牛血清白蛋白	Sigma-Aldrich	A9418
Superfrost 显微镜载玻片	Fisher Scientific	12-550-143
玻璃盖玻片	康宁	2855-18	#1.5 厚度
透明指甲油或其他无毒密封剂
图像采集
浸油	Cargille	16484
带浸油物镜的光学显微镜	蔡		蔡司Axio A1带平面图 - NEOFLUAR 100x油浸NA 1.30物镜
光学显微镜相机	蔡司		蔡司Axiocam ErCD相机
带油浸物镜的共聚焦显微镜	蔡司		LSM 700激光扫描共聚焦，配备Plan-Apochromat 63X NA 1.4油浸DIC M27物镜。nbsp;
共聚焦显微镜软件	Zen 2009
共聚焦显微镜相机	尼		Nikon Ti-Eclipse，配备 Intensilight 落射荧光照明器（尼康）、CoolSNAP MYO 显微镜相机（光度学）、Plan Apo 60x NA 1.40 油浸物镜（尼康）和 1.5 倍放大倍率转换器。
宽场成像软件	尼康元件 （尼康）
胶囊测量
图像编辑软件	Photoshop（Adobe）
用于手动测量的显微镜软件	Axiovision （Carl Zeiss）
用于自动测量的图像分析软件	Aivia （DRVision技术）
电子表格软件	Excel （Microsoft）