我们介绍一种利用比色普鲁士蓝法测定植物组织中铁含量的简单且可靠的实验方案。
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我们介绍一种利用比色普鲁士蓝法测定植物组织中铁含量的简单且可靠的实验方案。
铁是生物体中最重要的微量元素之一,参与呼吸作用和光合作用等基本生理过程。所有生物体内的铁含量均较低,在植物中约占干重的0.009%。迄今为止,测定植物组织中铁浓度最准确的方法之一是火焰吸收原子光谱法。然而,该方法耗时较长、成本较高,且需要特定设备,而这些设备在大多数植物学实验室中并不常见。因此,亟需一种更简便且准确的方法,可用于常规检测。普鲁士蓝比色法通常用于动物和植物组织切片中铁的定性染色。在本研究中,我们对普鲁士蓝法进行了改进,使其适用于烟草叶片中铁含量的定量测定。我们通过原子光谱法和普鲁士蓝染色法对同一样品中的铁含量进行测定,以验证该方法的准确性,结果表明两种方法之间具有良好的线性回归关系(R2 = 0.988)。我们得出结论:普鲁士蓝法用于植物组织中铁的定量测定具有精确、简便和低成本的优点。然而,由于样品与试剂之间可能存在物种特异性的相互作用,本文建立的线性回归关系可能不适用于其他植物种类。因此,针对不同植物物种需分别建立相应的回归曲线。
铁(Fe)是所有生物体中一种重要的微量元素。在植物中,由于铁参与呼吸作用、光合作用和叶绿素生物合成等基本生理过程,因此是一种必需的微量元素1。游离铁离子的过度积累会对植物细胞造成伤害,因其可引发产生自由基的反应,导致氧化应激。为维持植物细胞内的铁稳态,铁离子被储存于液泡中,并被隔离在铁蛋白(ferritin)内;铁蛋白是一种直接参与铁稳态调控的蛋白质笼状结构,也是所有生物体中铁的主要储存形式2。与此同时,缺铁性贫血影响着全球大量人口,导致人们对植物铁生物强化的需求日益增加。由于植物铁蛋白具有独特的性质,利用铁蛋白结合铁进行食品强化,为解决这一营养不良问题提供了有前景的策略3。
铁离子主要以两种氧化态存在,即亚铁(二价 Fe2+ 或铁(II))和高铁(三价 Fe3+ 或铁(III))形式。细胞中还存在其他一些铁的形式,例如铁簇4。在生理条件下,铁以氧化铁的形式储存在细胞内,自然形成赤铁矿(Fe2O3)和针铁矿((Fe3+)2O3•0.5H2O)5。这些反应生成的氢氧化物,尤其是三价铁形式,溶解度极低。因此,铁的保留受溶液pH值的影响,在pH高于5时主要呈固态6。
鉴于铁(Fe)的溶解度较低且反应活性较高,其在植物组织和器官间的转运必须依赖合适的螯合分子。此外,还需调控其亚铁(ferrous)与高铁(ferric)形态之间的氧化还原状态1。在叶片中,约80%的铁存在于光合细胞中,因其在电子传递系统、细胞色素、叶绿素及其他血红素分子的生物合成,以及Fe-S簇的形成过程中发挥着关键作用7。当细胞内铁含量过高时,多余的铁会被转运至液泡中,并储存在铁蛋白(ferritin)分子内8。
植物组织中的铁含量可通过多种方法测定,包括火焰原子吸收光谱法9(FAAS)或比色分析法10,其中前者的精确度远高于后者。火焰原子吸收光谱法是一种高度准确的技术,可根据样品中各元素的电磁辐射来确定其元素组成。FAAS通过火焰加热将样品中的金属离子转化为原子态,使离子激发,当特定离子回到基态时会发射出特定波长的光。不同离子的发射光经单色器分离后,由吸收传感器检测11。因此,FAAS可用于直接定量铁的浓度。然而,也存在其他用于生物组织中铁可视化的方法。电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS)12是一种测定铁及其他微量元素的高精度技术,但FAAS和ICP-MS设备的缺乏是常见问题。另一方面,硫氰酸盐比色法13测定铁的精确度较低,难以检测样品间微小的差异。普鲁士蓝染色法14,15,16,17是一种间接方法,基于亚铁氰化钾(K4Fe(CN)6)与Fe阳离子反应生成强烈的蓝色物质,常用于动物和植物组织切片中铁的定性检测。
在岩石圈中,金属态(零价)铁极为罕见。环境中游离态铁离子的主要存在形式主要取决于周围环境中的氧气含量:在缺氧环境中,亚铁离子(Fe²⁺)相对更丰富;而在有氧环境中,则以高铁离子(Fe³⁺)为主。在强酸性环境中,高铁离子同样占主导地位,尽管在缺氧和酸性条件下促使亚铁氧化的成因因素通常有所不同18。当铁在有氧环境下溶于4% HCl(pH 0)时,稀释后的铁主要以高铁形式(Fe3+)存在19,20。
Fe离子与K4Fe(CN)6之间的反应如下:
Fe3+:FeCl3 + K4Fe(CN)6 = KFe(III)Fe(II)(CN)6¯ + 3KCl
Fe2+:4 FeCl2 + 2 K4Fe(CN)6 = Fe4(Fe(CN)6)2 + 8 KCl
在本研究中,我们探讨了普鲁士蓝染色法是否可用于测定溶液中的铁含量。
首先,我们验证了水溶液中Fe浓度与普鲁士蓝染色之间的相关性。通过原子光谱法以及加入普鲁士蓝后测定吸光度(OD),分别测量了水溶液中Fe(以FeCl2、FeCl3或两者1:1混合物形式)的浓度。图1展示了每种方法所获得测量值的线性回归曲线。我们得出结论:普鲁士蓝法可用于溶液中铁浓度的定量分析。

图 1:通过火焰原子吸收光谱法(FAAS)测得的铁浓度与普鲁士蓝法测得的光吸收度(OD,715 nm)之间的线性回归关系。 蓝色方块及对应直线代表 Fe2+ 溶液,红色方块及对应直线代表 Fe3+ 溶液,黑色方块及对应直线代表 Fe2+ 与 Fe3+ 的 1:1 混合溶液。获得的回归方程如下:[Fe2+] = 3 + 123 × OD,r = 0.996,R2 = 0.989;[Fe3+] = 1 + 292 × OD,r = 0.999,R2 = 0.997;以及 [Fe2+/3+] = 11 + 146 × OD,r = 0.983,R2 = 0.956。Fe2+ 来源于 FeCl2,Fe3+ 来源于 FeCl3。请点击此处查看该图的放大版本。
为了将比色普鲁士蓝法改进用于植物组织中铁含量的定量分析,通过火焰吸收原子光谱法和普鲁士蓝染色法测定了烟草叶片灰分中的铁含量。两种技术所得结果具有良好的相关性。
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1. 植物材料与生长条件
2. 准备用于铁含量测定的叶片
注意事项:所有待使用的材料必须不含铁,以降低铁污染的风险。 使用前,用4% HCl溶液将研钵和研杵清洗两次,每次用滤纸擦干。若重复使用任何材料,需用4% HCl溶液清洗两次,并用滤纸擦干。
3. 将叶片燃烧成灰烬
注意事项:使用低pH值(接近0)的HCl溶液旨在提高铁的溶解度。岩棉用于防止燃烧过程中气体从样品瓶中逸出。
4. 准备灰烬以测定铁含量
注意事项:初始样品中最终的铁浓度计算方法为,将灰化后所得灰分的重量除以加入的盐酸体积。
5. 采用火焰原子吸收光谱法测定铁浓度
6. 配制普鲁士蓝染色液
7. 使用 FAAS 结果为普鲁士蓝法生成校准曲线
注意:使用以下公式计算灰分中的铁浓度
公式 1
C:浓度,V:样品体积,W:灰分重量(g)。
8. 使用普鲁士蓝法测定同种植物其他样品中的铁含量
注意事项:由于此类植物的校准曲线已经建立,因此可直接使用线性回归公式计算同类型植物新样品中的铁浓度。
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当本实验方案正确执行时,普鲁士蓝法与原子光谱法所得结果之间应具有良好的相关性。因此,普鲁士蓝法可被简便地用于准确测定植物样品中的铁浓度,如下述实验所示。
烟草植株按所述方案培养,并用含有不同铁浓度(0、1、2、3、4、5 或 6 mM)的水灌溉,持续 7 天。随后收获植株,清洗后于 80 °C 下干燥 3 天。接下来的步骤(即, 按照方案第2.3步所述操作。由于对照管的重量与灰重差异小于1%,该数值未纳入后续计算。
采用火焰原子吸收光谱法(FAAS)测定铁浓度。表1展示了这些测量的代表性结果。根据21个样品(7个浓度,每个浓度3个重复)获得的数据绘制了标准曲线。
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测定植物组织中的铁含量对于评估灌溉或其他环境条件的影响非常重要。本文介绍了一种简便且准确的比色法,用于检测烟草叶片中的铁(Fe)含量,该方法可轻松适用于其他植物种类和组织。
在优化比色法的实验条件时,我们采用低pH环境(pH < 1.0)以确保铁的溶解性。燃烧过程的目的是释放样品中所有形态的铁,并确保样品中可能存在的任何污染物不会影响实验结果。关于铁污染问题,应注意到地壳中有6.7%由氧化铁类物质(FeOn)组成21,其在植物干重中的含量可达0.009%22。因此,必须考虑污染风险,因为灰尘中的铁含量可能高达3-7%(依地区而异)23,会对结果产生显著影响。此外,必须仔细核查实验中使用的所有设备的铁含量,并采取一切必要预防措施以避免污染。建议使用4% HCl溶液清洗所有曾暴露于空气或需重复使用的实验器材。应完全避免使用任何金属工具(如剪刀或勺子),而改用玻璃或塑料制品。例如,在步骤3.1和4.1中已特别强调了防...
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作者无任何利益冲突需要披露。
本工作由以色列科学、技术与太空部以及以色列农业部首席科学家基金(项目编号:#16-16-0003)资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 六氰合铁(II)酸钾 | Fisher Chemical | 14459-95-1 | 普鲁士蓝反应试剂 |
| 密理博注射器滤器单元,瓶口通气式,0.22 μm | Millec | SLGP033RS | 用于过滤灰分与4% HCl溶液的混合物 |
| 闪烁计数瓶 | Fisherbrand | 03-337-4 | 在燃烧过程中用于盛装干燥的植物粉末材料 |
| 一次性注射器 10 ml | Medi-Plus | 1931 | 过滤过程中使用的注射器 |
| 盐酸 | Sigma-Aldrich | 231-595-7 | 用于配制4% HCl溶液,以稀释灰分并清洗材料 |
| Tobacco, Nicotiana tabacum cv. Samsun NN | 由Simon Barak教授提供,在Zaccai实验室中常规使用 | Barak S, Nejidat A, Heimer Y, Volokita M. 烟草幼苗中乙醇酸氧化酶基因的转录及转录后调控. 植物分子生物学. 2001年3月1日;45(4):399-407. | 本实验方案中使用的烟草品种 |
| 玻璃棉(矿棉) | Sigma-Aldrich | 659997-17-3 | 用于样品在炉中燃烧的步骤 |
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