本方案描述了一种基于网状模具的方法,用于构建具有满意结构完整性和同步搏动行为的三维无支架心肌组织。
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本方案描述了一种基于网状模具的方法,用于构建具有满意结构完整性和同步搏动行为的三维无支架心肌组织。
本方案描述了一种基于新型简易网状模具的三维(3-D)心肌组织构建方法,无需额外的支架材料。分离人诱导多能干细胞来源的心肌细胞(iPSC-CMs)、人心脏成纤维细胞(HCFs)和人脐静脉内皮细胞(HUVECs),并制备成细胞悬液,其中含70% iPSC-CMs、15% HCFs和15% HUVECs。将细胞悬液置于超低吸附性的“悬滴”培养系统中进行共培养,该系统含有微孔结构,可同时浓缩数百个球形聚集体。细胞在共培养3天后自发聚集并形成具有搏动功能的球状体。收集球状体后接种至新型模具腔内,并在培养箱中置于摇床上继续培养。接种约7天后,球状体发育为成熟的、具有功能性的组织。所获得的多层组织由融合的球状体构成,具备良好的结构完整性和同步搏动特性。该新方法具有良好的可重复性和成本效益,未来有望成为治疗心力衰竭的工程化组织构建策略。
目前心脏组织工程的目标是开发出能够替代或修复受损心肌组织结构与功能的治疗方法1。构建具有天然心脏组织重要收缩性和电生理特性的三维心脏组织模型的方法正在迅速发展2,3。已有多种策略被探索并应用于相关研究4,5,这些方法包括使用特定的合成与天然生物活性水凝胶(如明胶、胶原蛋白、纤维蛋白和多肽)6,以及生物墨水沉积技术2和生物打印技术7。
已有研究表明,无支架方法能够产生与基于生物材料的方法相当的组织,同时避免了引入外源性支架材料所带来的缺点8。Oren Caspi et al. 证明,通过整合多种类型的细胞,可生成高度血管化的人工工程化心肌组织9。Chin et al. 开发了一种利用球状体进行心脏补片3D打印的方法,所获得的补片由心肌细胞、成纤维细胞和内皮细胞按70:15:15的比例组成10。研究表明,球状体作为无支架心肌组织构建的“基本单元”具有显著效果,因其对缺氧具有较强耐受性,并具备足够的机械完整性以满足植入需求11,12。先前的研究已报道了多种球状体的制备方法,包括悬滴法、旋转瓶培养13、微流控系统14,以及使用未包被或包被琼脂糖微模具的非黏附性培养表面15。在本实验方案中,我们采用悬滴装置,该装置含有微孔结构,可同时浓缩数百个球状体。
本研究提出了一种新颖且高效的无支架心肌组织构建方法,该方法包括将球状体手动接种至方形模具腔内,并在摇床中孵育以促进组织成熟。在常规静态培养条件下,氧气扩散仅限于组织结构的外层区域,导致中心部位发生坏死。然而,使用网状模具后,接种于模具内的所有球状体均浸没在培养基中,并处于持续的流体运动状态,从而增强了营养物质和氧气的扩散。此外,这种基于模具的方法能够以最少的人工操作同时制备不同尺寸的组织片,且所得组织可轻松从模具中取出。该创新方法实现了无支架、多层心肌补片的高效且可重复的构建。
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1. 心肌细胞的制备
2. 成纤维细胞的制备
3. 内皮细胞的制备
4. 悬滴球状体的制备
5. 使用新型网状模具制备三维细胞贴片
6. 从新型网状模具上移除贴片
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在我们的实验中,我们使用了含有70% iPSC-CMs、15% HCFs和15% HUVECs的细胞悬液,培养基为RPMI/B-27,细胞浓度为每毫升2,475,000个细胞。制备细胞悬液后,按照方案第4.3步所述,将4 mL细胞悬液加入超低吸附悬挂液滴系统的每个孔中。在37 °C、5% CO2和95%湿度条件下培养3天后,悬挂液滴系统可自发形成数百个跳动的球状体。培养72小时后,在4倍和10倍光学显微镜下可轻松观察到球状体的搏动,其平均直径为350 µm(图1)。
在实验方案第6.5步结束时,收集类球体后,可通过简单的移液方法轻松将类球体接种至模具中。培养过程中类球体在模具内发生融合;随后移除模具,即可获得具有机械完整性的完整心肌组织片。从模具中取出并继续培养24小时后,可观察到心肌组织出现功能性且同步的搏动,证实了类球体之间的机械整合(
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该方法的重要性在于其可重复性以及所获得的多层心肌组织的有效性。在心肌组织工程领域,当前目标之一是找到一种构建能够搏动、具有多层结构且功能完整的三维心肌补片的方法。我们报道了一种高效且可重复的多层心肌组织构建方法,即通过将由心肌细胞、内皮细胞和成纤维细胞组成的球状体直接手动接种到一种新型网状模具中来实现。本方法所使用的网状模具具有多种不同尺寸,可用于制备大小从 2 × 2 × 1 mm 到 6 × 6 × 1 mm 不等的组织。我们所描述的技术也可根据所需组织几何形状的不同,调整用于其他形状或系统的模具。文中所述的细胞浓度和比例此前已针对人诱导多能干细胞来源的心肌细胞(hiPSC-CMs)进行了优化,若更换为其他细胞类型,则需进一步评估和调整。
的 体外 利用生物打印技术构建三维心脏组织的研究已开展,旨在开发治疗和诊断模型。然而,现有的生物打印方法较为繁琐,需要耗费大量时间,并依赖针头或支架材料等辅助支撑结构。这些辅助支撑结构的存在会降低营养物质和氧气的扩散效率18因此,由于缺乏为组织供氧和营养的毛细血管,中心坏死是当...
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作者无任何利益冲突需要披露。
作者们感谢以下资助来源:心血管研究魔法基金(Magic That Matters Fund for Cardiovascular Research)。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 人源心脏成纤维细胞(HCF) | Sciencell | 6310 | |
| FM-2 含基础培养基 | Sciencell | 2331 | HCF 培养基 |
| 人脐静脉内皮细胞(HUVEC) | Lonza | CC-2935 | |
| EGM+Bullet Kit | Lonza | CC5035 | HUVEC 培养基 |
| E8 培养基 | Invitrogen | A1517001 | HiPSC 培养基 |
| Geltrex | Invitrogen | A1413202 | |
| TrypLE Express 酶(1X) | Thermo Fisher | 12604013 | 胰蛋白酶及细胞解离试剂 |
| RPMI 培养基 | Invitrogen | 11875093 | 添加 B-27 补充剂的 RPMI 培养基为 hiPSC-CM 培养基 |
| B-27 补充剂(50x) | Thermo Fisher | 17504044 | 添加 B-27 补充剂的 RPMI 培养基为 hiPSC-CM 培养基 |
| 台盼蓝溶液,0.4% | Thermo Fisher | 15250061 | |
| 新型网状模具 | TissueByNet Co.,Ltd | NM25-1 | |
| 悬滴培养板 | Kuraray Co.,Ltd | MPc350 | |
| 6 孔板 | Sigma-Aldrich | CLS-3516 |
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