方法文章

用于靶向质粒DNA输送的美聚氨酸功能化生物相容性块共聚物

DOI:

10.3791/58527

2019年8月6日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本作品通过可逆添加-碎片链转移(RAFT)方法介绍了蛋氨酸功能化生物相容性块共聚物(mBG)的制备。研究了获得mBG的质粒DNA复合能力及其转染效率。RAFT方法对聚合含有特殊功能组的单体非常有益。

摘要

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

可逆添加-碎片链转移(RAFT)聚合融合了基聚合和活聚合的优点。本作品介绍了通过RAFT聚合制备蛋氨酸功能化生物相容性块共聚物。首先,N,N-二乙二醇(2-羟基苯甲酸酯)甲酰胺-b-N-(3-氨基丙烯酰胺)甲酰胺(BNHEMA-b-APMA,BA)通过RAFT聚合合成,使用4,4'-亚索比(4-青黄酸)(ACVA)作为启动剂和4-氰化二苯甲酸二甲苯甲酸(CTP)作为链转移剂。随后,N,N-bis(2-羟基)甲酰胺-b-N-(3-关尼诺丙基)甲酰胺(美聚氨酸嫁接BNHEMA-b-GPMA,mBG)通过用甲胺和瓜尼丁修饰APMA中的胺组制备组。合成了三种块状聚合物,mBG1、mBG2和mBG3进行比较。使用宁西林反应来量化APMA含量;mBG1、mBG2 和 mBG3 分别占 APMA 的 21%、37% 和 52%。凝胶渗透色谱(GPC)结果表明,BA共聚物的分子量为16,200(BA1)、20,900(BA2)和27,200(BA3)克/摩尔。研究了获得块共聚物基因载体的质粒DNA(pDNA)复合能力。当pDNA分别与mBG1、mBG2、mBG3完全复合时,电荷比(N/P)为8、16和4。当mBG/pDNA多聚体N/P比高于1时,mBG的Zeta电位为正。在 16 和 32 之间的 N/P 比率下,mBG/pDNA 聚丛的平均颗粒大小在 100-200 nm 之间。总体而言,这项工作说明了块共聚载体合成的简单和方便的方案。

引言

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

近年来,基因疗法已出现以核酸的治疗性输送为治疗各种疾病的药物。包括质粒DNA(pDNA)和小干扰RNA(siRNA)在内的基因药物的开发依赖于药物输送系统(DDS)2的稳定性和效率。在所有DDS中,阳离子聚合物载体具有稳定性好、免疫原性低、易制制剂和改性等优点,使阳离子聚合物载体具有广阔的应用前景。为了在生物医学中的实际应用,研究人员必须找到一种高效、低毒性、具有良好的靶向能力的阳离子聚合物载体。在所有聚合物载体中,块共聚物是使用最广泛的药物输送系统之一。块共聚物被深入研究,因为它们的自组装特性和在药物输送中形成云母、微球和纳米粒子的能力5。块共聚物可以通过活聚合或点击化学方法合成。

1956年,Szwarc等人提出了活聚合的课题,将其定义为无链断裂反应的6,7。从那时起,已经开发出多种技术,用这种方法合成聚合物;因此,活聚合被认为是聚合物科学的一个里程碑。活聚合可分为活阴离子聚合、活阳离子聚合和可逆失活基聚合(RDRP)9。活阴离子/阳离子聚合具有有限的应用范围,由于其严格的反应条件10。受控/活基聚合(CRP)反应条件温和,处置方便,产量好,是近年来的主要研究重点。在CRP中,活性传播链可逆钝化为休眠链,以降低自由基的浓度,避免传播链基的双分子反应。只有当非活性休眠传播链可逆地动画化为链基时,添加聚合才能继续。可逆添加-裂变链转移(RAFT)聚合作为最有前途的活基聚合形式之一,是一种适用于分子量和结构可控、分子量窄的块状聚合物的屈服方法。分布,并携带功能组12。成功进行RAFT聚合的关键是链转移剂(通常是二硫酯)的作用,后者具有非常高的链传递常数。

本文设计了一种RAFT聚合法,制备BNHEMA-b-APMA块状聚合物,以4,4'-亚索比(4-青黄酸)(ACVA)作为起始剂,4-氰化二苯甲酸二硫苯甲酸(CTP)作为链转移剂。RAFT聚合被两次用于将BNHEMA引入阳离子聚合物载体。随后,用甲胺磷和甲胺酰胺试剂1-酰胺盐酸基苯甲酸酯对APMA链中的胺组进行了修饰。利用关尼酰胺试剂和甲酰胺聚合物骨架结构的正电荷,提高了所得块状聚合物载体的细胞吸收效率。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. BNHEMA聚合物(PBNHEMA)的合成

  1. 将1.87克N、N-二(2-羟乙酰)甲酰胺(BNHEMA)溶解在聚合瓶中1mL的蒸馏水中。
    注:聚合瓶是一个圆底烧瓶,带有橡胶塞和磁搅拌器。
  2. 在 5 mL 烧杯中溶解 0.03 g 的 4-氰化二苯甲酸二硫苯甲酸 (CTP) 和 0.02 g 的 4,4' - 亚祖酸 (4-青酸 ) (ACVA) 中 0.5 mL 的 1,4-二恶烷。然后,将 CTP 和 ACVA 溶液从步骤 1.1 添加到聚合瓶中。
  3. 通过三个冷冻泵-解冻循环,用氮气通风聚合瓶中的反应系统。
    1. 具体来说,使用冷凝水陷阱将聚合瓶中的溶液冷冻,将聚合瓶固定在铁支架上,并通过用针(#9针,内径0.65 mm)的导管将氮吸尘并注入反应混合物中,外径 0.9 mm)。密封聚合瓶并在室温下解冻溶液30分钟。
    2. 重复冷冻泵-解冻循环三次。
  4. 将聚合瓶放入70°C油浴中,让溶液在氮气下反应24小时。
  5. 在 0°C 下冷却聚合瓶并打开橡胶塞以终止聚合过程。
  6. 在-20°C冰箱中预冷却丙酮2小时,然后将其与步骤1.5的反应溶液以50:1(v/v)混合。之后,在8,200 x g的离心机10分钟,以去除丙酮并收集沉淀物。
  7. 为了纯化合成的PBNHEMA,将收集的沉淀物溶解在2 mL的纯水中,然后将其与100 mL的预冷却丙酮混合,比例为1:50(v/v)。将溶液在8,200 x g下离心10分钟,并收集沉淀物。重复此过程三次。
  8. 使用 50°C 真空干燥器干燥生产的 PBNHEMA。干燥后,用平衡量粉末。根据公式 1计算收益率。
    figure-protocol-1(1)
    注:在本实验中,所得的收益率为77.2%。

2. BNHEMA-b-APMA聚合物(BA)的合成

  1. 在10 mL烧杯中将0.96克N-(3-氨基丙基)盐酸甲酰胺(APMA)和0.93克PBNHEMA溶解在5mL蒸馏水中。
  2. 将0.01克4,4'-阿佐比斯(4-青黄酸)(ACVA)溶解在0.5 mL的1,4-二恶烷中,并与APMA-PBNHEMA溶液混合,从2.1部分。
  3. 将混合物转移到聚合瓶中,用干氮通风1小时。
  4. 将聚合瓶放入70°C油浴中,让它在氮气下反应24小时。
  5. 在 0°C 下冷却聚合瓶并打开橡胶塞以终止聚合过程。
  6. 将溶液从步骤1.6转移到冷却丙酮,然后在8,200 x g下离心溶液10分钟,以沉淀BA。
  7. 将BA溶解在2 mL的蒸馏水中,并将聚合物沉淀在冰镇丙酮中。重复三次。
  8. 在 50°C 真空干燥器中干燥生产的 BA,并称重获得的粉末。根据公式 2计算收益率。
    figure-protocol-2
    注:在本实验中,产量计算为82.0%。

3. 通过宁海林法测定BA共聚物中APMA的摩尔百分比

注:分光光度测定用于确定多组分氨基酸的含量。其原理是宁海碱和氨基酸的颜色反应,其中吸收度与氨基酸含量有一定的相关性13,14。

  1. 在125 mL的沸腾蒸馏水中溶解5克尼西林。此外,在250mL的温蒸水中溶解5克维生素C。在磁性搅拌下,将250 mL的维生素C溶液滴滴加入宁海林溶液中。继续搅拌15分钟,然后在4°C冰箱中冷却反应溶液。
  2. 使用布赫纳漏斗将溶液从冰箱中拿出来,通过吸滤,以获得减少的尼希德林。收集沉淀物并将其保存在五氧化二磷脱水机中。
  3. 在10 mL的乙二醇单甲基醚中溶解85毫克的宁海丁和15毫克的减少的宁海丁,以制备宁海碱着色溶液。
    注:宁黄碱着色溶液可与APMA中的β-氨基反应,形成具有结构的紫罗兰化合物,如先前研究15所述。
  4. 稀释1 mL的0,1,10,100,100,1000mg/mL APMA单体溶液与1 mL的醋酸缓冲液(2 M,pH 5.4),然后分别加入1mL的宁水林着色溶液。
  5. 在沸水中加热混合物15分钟,然后用自来水冷却。让溶液坐5-10分钟,用3 mL的60%乙醇稀释,并彻底混合。使用分光光度计测量 570 nm 处的吸收率,并绘制标准曲线(公式 3)。
    figure-protocol-3
    注: 公式 3 源自 570 nm 时吸收的线性拟合与 APMA 浓度的线性拟合。
  6. 在1mL蒸馏水中溶解0.01克BA;加入1 mL的醋酸缓冲液(2 M,pH 5.4)和1 mL的宁海碱着色溶液。根据 570 nm 处的吸光度计算 APMA 的摩尔含量。
    figure-protocol-4
    figure-protocol-5(5)
    figure-protocol-6
    注:计算公式如下(公式3-6)。

4. 合成蛋氨酸嫁接BA聚合物(mBA)

  1. 在回收瓶中将8.9毫克的Fomc-Methionine溶解在5mL的DMSO中。
  2. 在回收瓶中加入6.92毫克的1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)盐酸甲二酰甲酰甲酸酯(EDCl)和4.86毫克1-羟基苯甲酸酯(HOBT),并在0°C下反应0.5小时。
  3. 将2.59克的BA溶解在5mL的DMSO溶液中,然后加入50μL的三甲基胺;将溶液滴滴添加到回收瓶中(步骤 4.2),让溶液在室温下反应 0.5 小时。
  4. 在步骤 4.3 中使用透析袋 (MWCO 10 kDa) 在 2 L 烧杯中去除 DMSO 和三甲基胺,在步骤 4.3 中去除 DMSO 和三甲基胺,为期 24 小时;每 6 小时更换一次去离子水。
  5. 根据公式7,冻结干燥获得的mBA并称重以计算收益率。
    figure-protocol-7
    注:在这种情况下,收益率确定为 71%。
  6. 通过测量570 nm 的吸收度来量化含有 mBA 的 NH 2,以计算嫁接的蛋氨酸量。根据公式8计算蛋氨酸的摩尔含量。
    figure-protocol-8

5. 合成瓜尼丁宁和蛋氨酸结合BNHEMA-b-APMA聚合物(mBG)

注:合成了三种不同的mBA1、mBA2和mBA3共聚物。在以下步骤中,mBA3 共聚物用作示例。

  1. 将含有60μmol的氨基组溶解在5 mL的纯水中。
    注: Amino 组内容使用步骤 3.5 中所述的宁海德鲁林方法进行量化。
  2. 在mBA溶液中溶解40.6毫克(300μmol)的关尼酰胺试剂1-酰胺盐酸。
  3. 使用碳酸钠的饱和溶液将pHH调节至9.0,并在室温下稳定24小时。
  4. 使用烧杯中的透析袋(MWCO 10 kDa,2 L)用去离子水对 mBG 产品进行透析,并将其以冷冻干燥粉末的形式保存。
    通过公式8计算,收益率为85%。
    figure-protocol-9(8)
  5. 在NMR管中溶解D2O中的mBG粉末,并使用1H核磁共振光谱(1H NMR)16进行表征。

6. mBG/pDNA聚丛的制备和表征

  1. 将50μg的pDNA溶解在50μL的RNase/无DNase水中。
  2. 在1mL无RNase/DNase水中溶解1毫克mBG共聚物。
  3. 根据不同的进给比,即不同的N/P比率(1:1、4:1、8:1、16:1和32:1),将mBG共聚物溶液直接添加到pDNA溶液中。
    注:N/P比定义为聚合物中瓜尼丁组和pDNA中磷酸盐组的摩尔比,即聚合物中GPMA链的摩尔比和pDNA中的单核苷酸。N/P比是根据mBG中氨氮(N)和pDNA中磷酸基(P)的分子量计算的。
  4. 将溶液与涡旋混合器混合,使其在室温下站立 30 分钟。之后,在磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4)中分散混合物,并在4°C保存获得的mBG/pDNA聚丛体,用于后续实验。
    注:使用动态光散射(DLS)17检测mBG和复合物的平均颗粒大小和Zeta电位。
  5. 在DLS和Zeta电位样品细胞中用1mL的PBS(pH 7.4)稀释10μL的mBG/pDNA多聚体溶液。
    注:粒子大小和Zeta电位检测进行了三次,并平均采集了三个值。

7. mBG/pDNA聚体电泳缓速实验

注:进行了电泳减速实验,以确定最小充注比。

  1. 以五组具有不同 N/P 比率(1:1、4:1、8:1、16:1 和 32:1)的 mBG/pDNA 聚丛体为例,其中包含 50 μg 的 pDNA 。
  2. 将 6 倍加载缓冲液添加到 mBG/pDNA 多丛样品中,最终浓度为 1 倍。
  3. 将溶液加入1.5%的甘蔗糖凝胶中,在90mV下运行15分钟,使用pDNA作为对照。
  4. 使用凝胶成像仪拍摄凝胶照片。

8. mBG/pDNA多丛细胞毒性

  1. 种子MCF-7细胞以每孔104

  2. figure-protocol-10


访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

根据表1所示的聚合目标程度喂食BNHEMA;mBG的合成过程如图1所示。 首先,利用四环烷酸二硫二甲苯二甲酸作为链转移剂,在水二恶烷系统中采用可逆添加-碎片链转移(RAFT)方法制备BNHEMA同质聚酯。其次,PBNHEMA作为链转移剂,制备BNHEMA-b-APMA块聚合物。APMA单体根据表1所示的聚合目标程度进行喂食。进行了凝胶渗透色谱(GPC),以检测不同进给比的BA分子量(表1)。通过宁西林法(表1)检测出不同进给率的BAAPMA链的实际摩尔含量。根据我们早先的研究5,我们在本研究中使用了mBG3,因为它的APMA含量最高。最后,将蛋氨酸移植到APMA链中,将残留胺组完全隔离,以制备mBG。图 2是 mBG 的1H NMR 数据。mBG/pDNA聚丛的平均颗粒大小和Zeta电位分别为124...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本研究介绍了一系列BNHEMA-b-APMA块状聚合物阳离子基因载体。这些块状聚合物是通过可逆的添加-碎片链转移(RAFT)方法合成的。引入亲水段BNHEMA以提高溶解度。对美氨酸和瓜尼丁组进行了改造,以提高靶能力和转染效率5.MBG共聚物中的APMA链含量增加,核化减少了mBG/pDNA聚体颗粒尺寸。颗粒大小和表面电位使复合物易于穿过细胞膜,适用于转染。实验的关键在于严格控制BNHEMA单体和CTP的摩尔比为45:1,CTP和ACVA的摩尔比为2:1,温度控制在70°C。在净化过程中,预冷却丙酮和聚合物溶液的体积比必须高于50:1。

相同的 N/P 值,随着 APMA 链比例的增加,mBG/pDNA 聚体粒径减小。这些结果表明,APMA链含量增加,结节能减小颗粒大小。颗粒大小和表面电位使复合物易于在细胞膜中传输,适用于转染。利用凝胶电泳来研究复合与N/P比的关系,结果表明最小N/P为4。本研究将为阳离子基因载体的进一步研究提供有价值的基础数据。然而,BNHEMA-b-APMA不易降解,其体内代谢过程不够清晰。因此,...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者证明,对于本文中讨论的材料,与任何财务组织没有利益冲突。

致谢

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

这项研究得到了国家重点研究发展计划(2016YFC0905900号)、国家自然科学基金(第81801827号、81872365号)、江苏省基础研究计划(自然科学基金,No.BK20181086)和江苏省肿瘤医院科研基金(No.ZK201605)。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1-羟基苯并三唑Macklin Biochemical Co., Ltd,中国H810970≥97.0%
1,4-二氧六环药集团化学试剂有限公司,中国10008918AR
1-氨基吡唑盐有限公司A10793598%
1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺盐阿拉丁有限公司,中国E106172AR
4,4'-偶氮二(4-氰氰基)阿拉丁有限公司,中国A106307分析试剂(AR)
4-氰基-4-(苯碳硫基硫代)戊酸阿拉丁有限公司C132316>97%(HPLC)
乙酸盐国药集团化学试剂有限公司81014818AR
丙酮国药集团化学试剂有限公司10000418AR
琼脂糖阿拉丁有限公司A118881高分辨率
抗坏血酸阿拉丁有限公司,中国A103533AR
DMSOAladdin Co., Ltd.,中国D103272AR
乙二醇阿拉丁有限公司,中国E103319AR
N-(3-氨基丙基)甲基丙烯酰胺盐阿拉丁有限公司,中国N129096≥98.0%(HPLC)
N,N-双(2-羟乙基)甲基丙烯酰胺ZaiQi Bio-Tech Co.,Ltd, 中国CF259748≥98.0%(HPLC)
茚三酮阿拉丁有限公司,中国N105629
AR PBS 缓冲液阿拉丁有限公司,中国P196986pH 7.4
质粒 DNABIOGOT 有限公司,中国pDNA-EGFPpDNA-EGFP
质粒DNA BIOGOT 有限公司,中国PdnapDNA
碳酸钠十水合Aladdin Co., Ltd.,中国S112589AR
三甲胺阿拉丁有限公司,中国T103285AR
国酸盐阿拉丁酸盐酸盐物

参考文献

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Flotte, T. R. Gene and Cell Therapy in 2018: A Look Ahead. Human Gene Therapy. 29, 1-1 (2018).
  2. Huang, W., et al. Nanomedicine-based combination anticancer therapy between nucleic acids and small-molecular drugs. Advanced Drug Delivery Reviews. 115, 82-97 (2017).
  3. Wu, Y., et al. Reversing of multidrug resistance breast cancer by co-delivery of P-gp siRNA and doxorubicin via folic acid-modified core-shell nanomicelles. Colloids & Surfaces B Biointerfaces. 138, 60-69 (2016).
  4. Quader, S., Kataoka, K. Nanomaterial-Enabled Cancer Therapy. Molecular Therapy. 25, 1501-1513 (2017).
  5. Wu, Y., et al. Multivalent methionine-functionalized biocompatible block copolymers for targeted siRNA delivery and subsequent reversal effect on adriamycin resistance in human breast cancer cell line MCF-7/ADR. Journal of Gene Medicine. 19, e2969(2017).
  6. Szwarc, M. ‘Living’ Polymers. Nature. 178, 168-169 (1956).
  7. Szwarc, M., Rembaum, A. Polymerization of methyl methacrylate initiated by an electron transfer to the monomer. Journal of Polymer Science. 22 (100), 189-191 (1956).
  8. Mukhopadhyay, R. D., Ajayaghosh, A. Living supramolecular polymerization. Science. 349, 241(2015).
  9. Ozkose, U. U., Altinkok, C., Yilmaz, O., Alpturk, O., Tasdelen, M. A. In-situ preparation of poly(2-ethyl-2-oxazoline)/clay nanocomposites via living cationic ring-opening polymerization. European Polymer Journal. 88, 586-593 (2017).
  10. Wu, W., Wang, W., Li, J. Star polymers: Advances in biomedical applications. Progress in Polymer Science. 46, 55-85 (2015).
  11. Boyer, C., et al. Copper-Mediated Living Radical Polymerization (Atom Transfer Radical Polymerization and Copper(0) Mediated Polymerization): From Fundamentals to Bioapplications. Chemical Reviews. 116, 1803-1949 (2016).
  12. Keddie, D. J. A guide to the synthesis of block copolymers using reversible-addition fragmentation chain transfer (RAFT) polymerization. Chemical Society Reviews. 43, 496-505 (2014).
  13. Wu, Y., et al. Guanidinylated 3-gluconamidopropyl methacrylamide-s-3-aminopropyl methacrylamide copolymer as siRNA carriers for inhibiting human telomerase reverse transcriptase expression. Drug Delivery. 20, 296-305 (2013).
  14. Qin, Z., Liu, W., Guo, L., Li, X. Studies on Guanidinated N-3-Aminopropyl Methacrylamide-N-2-Hydroxypropyl Methacrylamide Co-polymers as Gene Delivery Carrier. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 23, 1-4 (2012).
  15. Friedman, M. Applications of the Ninhydrin Reaction for Analysis of Amino Acids, Peptides, and Proteins to Agricultural and Biomedical Sciences. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 52, 385-406 (2004).
  16. Habuchi, S., Yamamoto, T., Tezuka, Y. Synthesis of Cyclic Polymers and Characterization of Their Diffusive Motion in the Melt State at the Single Molecule Level. Journal of Visualized Experiments. (115), 1-9 (2016).
  17. Rao, D. A., Nguyen, D. X., Mishra, G. P., Doddapaneni, B. S., Alani, A. W. Preparation and Characterization of Individual and Multi-drug Loaded Physically Entrapped Polymeric Micelles. Journal of Visualized Experiments. 102, 1-5 (2015).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

RAFT N P Zeta MTT GFP

相关文章