方法文章

基于细菌筛选与培养的Dictyostelium discoideum细胞基因工程改造

DOI：

10.3791/58981

⸱

2019年1月25日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1MRC Laboratory of Molecular Biology, 2Department of Molecular and Cell Biology, University of Connecticut, 3Cancer Research UK Beatson Institute Glasgow, 4MRC Laboratory for Molecular Cell Biology, University College London, 5Department of Cell and Developmental Biology, University College London

本文内容

摘要

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Dictyostelium discoideum 是研究细胞迁移、内吞作用和发育等复杂细胞过程的常用模式生物。该生物的应用依赖于其遗传操作的可行性。本文介绍了一种转染 Dictyostelium discoideum 细胞的方法，克服了在液体培养基中培养细胞的现有局限性。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dictyostelium discoideum 是研究发育过程中细胞分化、细胞信号传导及其他重要细胞生物学问题的一种引人入胜的模式生物。目前可用于遗传操作 Dictyostelium 细胞的技术已相当成熟，可通过不同的可筛选标记及标记回收方法进行转染，包括同源重组和插入突变。这些技术得益于基因组具有良好的注释信息。然而，这些方法主要针对在液体培养基中生长的无菌细胞系进行优化，难以应用于仅以细菌为食的非无菌野生型细胞。无菌品系中存在的突变会干扰 Ras 信号通路，导致为摄食所需的巨胞饮作用过度活跃，并损害细胞迁移能力，从而影响对这些品系中信号转导和趋化性实验结果的解释。此前对非无菌细胞进行遗传操作的尝试效率低下，且需要复杂的实验流程。我们开发了一种简便的转染方案，首次克服了这些限制。这一系列对 Dictyostelium 分子遗传学的重大改进，使得野生型细胞的遗传操作变得与标准实验室品系一样简便。除了有利于研究未受干扰的信号传导和运动过程外，现在还可以方便地分离出破坏巨胞饮依赖性生长的突变体。此外，整个转染流程大大加快，重组细胞可在数天内获得，而非数周。另一优势在于，可直接对从自然环境中新近分离的野生型 Dictyostelium 样本进行分子遗传学操作。这有助于拓展这些研究领域中所采用方法的应用范围。

引言

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Dictyostelium 属是生活在土壤中的社会性变形虫，主要以细菌为食。该属属于变形虫门（Amoebozoa），已分离出大量物种，可归为四个不同的进化枝1。Dictyostelium discoideum（D. discoideum）已成为研究细胞迁移和吞噬作用等复杂细胞过程的常用模式生物。为了控制和标准化实验条件，已开发出可在无细菌条件下于复杂或定义明确的液体培养基中生长的无菌细胞系2。其中尤为重要的是 Ax2、Ax3 和 Ax4 菌株，它们均于 20 世纪 70 年代构建，最终均源自单一野生型分离株 NC43。这些无菌菌株中已建立了基因工程工具，并于 1987 年首次发表基因敲除成果4,5。相关实验方案也进一步发展并优化，适用于无菌培养条件下的操作6,7。

多个实验室已尝试将这些方案应用于无法在液体培养基中生长的野生型 D. discoideum 菌株。然而，由于转染方案本身复杂且效率低下，部分原因在于细菌可作为选择性试剂的“汇”而发挥作用，因此该尝试尚未完全成功8,9。结果导致，目前几乎所有关于 D. discoideum 的分子生物学数据均来源于单一野生型分离株的后代。我们希望克服这一局限性，开发一种不依赖细胞在液体培养基中生长能力的 D. discoideum 遗传修饰方法。该方法的必要性可通过以下观察加以说明：过去人们曾认为，允许无菌生长的突变在很大程度上是中性的，不会影响细胞生理功能。这一假设仅部分成立。通常存在两个显著差异：其一，存在于不同分离的无菌型菌株之间；其二，当这些无菌型菌株与非无菌型的野生分离株进行比较时8,9。

或许最关键的因素是最近被鉴定为RasGAP NF1的关键无菌系基因axeB。NF1作为RasGAP的主要功能是抑制Ras活性3。在所有无菌系中该酶的缺失会导致Ras活性过度增强，表现为形成较大的活性Ras斑块。这些扩大的Ras斑块导致PIP3在质膜上积累。PIP3与活性Ras共定位的斑块构成了环形皱褶的形成模板，最终环形皱褶闭合，形成巨胞饮体10。其结果是巨胞饮活性显著增强。巨胞饮是一种由肌动蛋白驱动的过程。细胞骨架组分在巨胞饮体或伪足形成之间的分配因而产生竞争。这种竞争对细胞行为的影响表现为营养期细胞向叶酸趋化几乎完全被抑制11。这些显著增大的PIP3斑块具有很强的持续性。即使在饥饿状态的细胞中，PIP3斑块仍然存在，并可能被误认为是伪足，这会给cAMP趋化研究的解读带来困难。

在某些情况下，NF1 基因突变具有实验上的实用性。这促使我们提出开发一种用于细菌培养的 D. discoideum 细胞转染方法的第二个动机，因为巨胞饮速率的提高使得无菌培养细胞在研究该过程基本机制方面具有重要价值12。然而，巨胞饮相关基因（如 Ras 和 PI3-激酶）的突变几乎完全阻断了无菌生长，因此有必要通过在细菌上培养的方式来操作这些细胞10。另一个使基于细菌的转染方法具有价值的原因是，近年来越来越多地利用盘基网柄菌类（Dictyostelids）来研究多细胞生物进化13,14、亲缘识别15,16以及细胞利他行为等科学问题，而这些研究主要依赖于新近分离的野生型菌株17。上述所有研究领域均可得益于高效的野生型分离株遗传操作方法，而这些菌株通常非无菌生长，且不能在液体培养基中生长。

我们的实验方案能够克服上述局限性。综合来看，在细菌培养的 D. discoideum 细胞中进行遗传操作的可能性为所有 Dictyostelium 研究人员带来了益处，即使这种优势仅体现在由于变形虫在细菌培养基上生长速度更快（倍增时间为4小时），相较于在无菌培养基中生长（倍增时间为10小时），筛选过程得以显著加快。

方案

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1. 细胞与材料的准备

  1. SorMC 缓冲液配制
    1. 配制 100 mL 100 倍浓缩 SorMC（含 MgCl 的 Sorensen 缓冲液）2 和 CaCl2) 缓冲液，通过溶解 20.36 g KH2PO4 (15 mM) 和 5.47 g 的 Na2HPO4·7 H2O（2 mM）溶于 100 mL ddH₂O 中2O 水。在室温（RT）下搅拌溶液，并用 dH₂O 定容至 100 mL。2O.
      注意： 所得缓冲液的pH值为6，无需进一步调节。
    2. 制备1000 mL 1x工作液于ddH₂O中2O. 加入 50 µL 的 MgCl₂ 溶液2 和 CaCl2 使其终浓度均为 50 µM。使用 0.22 µm 滤器过滤除菌。
      注意： 始终添加 MgCl2 和 CaCl2 避免100倍浓缩液中的盐在1倍缓冲液中析出。
    3. 或者，制备 KK2 缓冲液（2.2 g KH2PO4 和 0.7 g 的 K2HPO4 添加 50 µM MgCl 的缓冲液（每升）2 和 50 µM CaCl2 （以下简称KK）2MC）。整个实验过程中请使用此缓冲液代替 SorMC。
  2. 制备细菌作为食物来源 D. discoideum
    1. 使用单个菌落 K. aerogenes 接种至1 L LB培养基（Lysogeny broth）中，使用2 L的锥形瓶。在37 °C、220 rpm振荡条件下过夜培养细菌。
      注意： 如果需要大量细菌，可使用更丰富的培养基，如2xTY（酵母提取物胰蛋白胨培养基）或SOB（优化型肉汤培养基），而非LB培养基。若使用 K. aerogenes 由于安全限制，不允许使用细菌BL21 E. coli 可替代使用。
    2. 第二天将细胞在两个 500 mL 离心管中以约 6,600 x g 离心收集 g 孵育20分钟。用500 mL SorMC缓冲液洗涤细菌一次。
    3. 将沉淀重悬于20 mL SorMC中。检测OD值600 （600 nm 处的光密度）使用分光光度计测定。用相同缓冲液稀释至 OD600 约100。
      注意： K. aerogenes 细菌难以沉淀，因此需要相对较高的离心速度以充分沉淀细菌，避免食物细菌的损失。所得的菌液储备液可在4 °C冰箱中保存长达4个月，并保持其作为食物来源的有效性 D. discoideum. 1 L 过夜培养物 K. aerogenes 在LB培养基中悬浮培养通常可获得20 mL的OD600 约100。
      警告： 为确保所制备的细菌为单一纯培养物 K. aerogenes在通风橱内进行所有步骤。
  3. H40电穿孔缓冲液的制备
    1. 配制 100 mL 缓冲液，将 0.952 g HEPES 溶解于 ddH₂O 中2O 水中，加入 100 µL MgCl2 从1 M的储存液中配制。使用KOH调节pH至7。通过0.22 µm滤器过滤或高压灭菌对缓冲液进行灭菌。使用无酸型HEPES，而非其钠盐。
  4. 按照制造商的说明并使用下表总结的试剂盒进行质粒制备 材料表. 使用下表总结的质粒 表1.
    注意： 用于转染的DNA质量至关重要。其选择 D. discoideum 在细菌上生长的转染子对驱动筛选和表达盒的启动子具有特定要求（见讨论部分）。
质粒名称细菌中的抗性/筛选标记盘基网柄菌中的抗性/筛选标记标签
染色体外表达质粒
pDM1203AmpicilinG418无
pDM1207AmpicilinG418N端GFP
pDM1208AmpicilinG418N端mCherry
pPI159AmpicilinG418N端mNeon
pPI437AmpicilinG418N端mScarlet
pPI54AmpicilinG418N端mTurquoise2
pDM1209AmpicilinG418C端GFP
pDM1210AmpicilinG418C端mCherry
pPI143AmpicilinG418C端mNeon
pPI459AmpicilinG418C端mScarlet
pPI142AmpicilinG418C端mTurquoise2
穿梭质粒
pDM344Ampicilin无无
pDM1019Ampicilin无N端GFP
pDM1018Ampicilin无N端mCherry
pPI152Ampicilin无N端mNeon
pPI418Ampicilin无N端mScarlet
pPI150Ampicilin无N端mTurquoise2
pDM1021Ampicilin无C端GFP
pDM1020Ampicilin无C端mCherry
pPI153Ampicilin无C端mNeon
pPI457Ampicilin无C端mScarlet
pPI151Ampicilin无C端mTurquoise2
可诱导染色体外表达质粒
pDM1038AmpicilinHygromycin无
pDM1047AmpicilinHygromycinN端GFP
pDM1046AmpicilinHygromycinN端mCherry
pPI450AmpicilinHygromycinN端mNeon
pPI452AmpicilinHygromycinN端mScarlet
pPI449AmpicilinHygromycinN端mTurquoise2
pDM1049AmpicilinHygromycinC端GFP
pDM1048AmpicilinHygromycinC端mCherry
pPI470AmpicilinHygromycinC端mNeon
pPI460AmpicilinHygromycinC端mScarlet
pPI469AmpicilinHygromycinC端mTurquoise2
act5 安全港靶向质粒
pDM1501AmpicilinHygromycin无
pDM1513AmpicilinHygromycinN端GFP
pDM1514AmpicilinHygromycinN端mCherry
pPI231AmpicilinHygromycinN端mNeon
pPI419AmpicilinHygromycinN端mScarlet
pPI228AmpicilinHygromycinN端mTurquoise2
pDM1515AmpicilinHygromycinC端GFP
pDM1516AmpicilinHygromycinC端mCherry
pPI230AmpicilinHygromycinC端mNeon
pPI458AmpicilinHygromycinC端mScarlet
pPI229AmpicilinHygromycinC端mTurquoise2
REMI表达质粒
pDM1220AmpicilinHygromycin无
pDM1351AmpicilinHygromycinN端GFP
pDM1259AmpicilinHygromycinN端mCherry
pPI465AmpicilinHygromycinN端mNeon
pPI468AmpicilinHygromycinN端mScarlet
pPI466AmpicilinHygromycinN端mTurquoise2
pDM1352AmpicilinHygromycinC端GFP
pDM1305AmpicilinHygromycinC端mCherry
pPI471AmpicilinHygromycinC端mNeon
pPI467AmpicilinHygromycinC端mScarlet
pPI472AmpicilinHygromycinC端mTurquoise2
靶向框内插入质粒
pDM1355AmpicilinHygromycinC端GFP
pPI461AmpicilinHygromycinC端mCherry
pPI462AmpicilinHygromycinC端mNeon
pPI464AmpicilinHygromycinC端mScarlet
pPI463AmpicilinHygromycinC端mTurquoise2
敲除质粒
pDM1079AmpicilinBlasticidin无
pDM1080AmpicilinNourseothricin无
pDM1081AmpicilinHygromycin无
pDM1082AmpicilinG418无
CRE表达质粒
pDM1483AmpicilinNourseothricin无
pDM1489AmpicilinHygromycin无
pDM1488AmpicilinG418无

表1：非无菌转染所用质粒列表。

  1. 设置 盘基网柄菌 用于转染的细胞
    1. 培养 K. aerogenes 在SM培养基（营养丰富的培养基）中于室温过夜培养至汇合。培养物可在4 °C保存长达2周。
    2. 将约 400 µL 该细菌悬液加入 SM 琼脂平板中（蛋白胨 10 g/L；酵母提取物 1 g/L；葡萄糖 10 g/L；KH2PO4 1.9 g/L；K2HPO4 x 3 H2O，1.3 g/L；MgSO₄4 无水 0.49 g/L；1.7% 琼脂），均匀铺展。取无菌接种环，接种 盘基网柄菌 细胞。将细胞铺在培养板的一侧边缘。
    3. 在22 °C下孵育平板2天，以确保获得足够大的生长区域用于转染。
      注意： 对于 盘基网柄菌 不产生明显生长圈的菌株（例如， Ax3、DH1 或 JH10），或针对实验经验不足的研究人员，可改用澄清平板。具体操作请参照步骤 1.5.4 至 1.5.6 的说明。
    4. 取无菌接种环接种 盘基网柄菌 细胞（约 2-4 x 105 细胞）。将细胞转移至800 µL高密度 K. aerogenes 在SM中重悬细胞，用移液器吹打混匀。
    5. 转移 400 µL、200 µL、100 µL 和 50 µL 至新的 SM 琼脂平板上。向每个平板中额外加入 400 µL SM K. aerogenes 悬浮，均匀铺开，然后干燥。
    6. 将培养皿置于 22 °C 培养约 2 天，直至培养皿变得半透明。
      注意： 由于细菌生长速度较快，最初会形成致密的菌苔，随后阿米巴逐渐将培养皿中的细菌清除。该过程所需时间可能因菌株背景以及突变细胞在细菌上生长能力的不同而有所差异。

2. 基于细菌筛选的Dictyostelium细胞转染

DNA转化过程；电穿孔和质粒筛选示意图；基因编辑实验。
图1：细菌培养的Dictyostelium细胞转染流程图。 转染步骤如下：在接种了K. aerogenes细菌（红色）的SM平板上培养D. discoideum细胞。仅从取食前沿（绿色）收集细胞，避免收集已经开始发育的细胞（深绿色）。用H40缓冲液洗涤细胞。将细胞重悬至终浓度为2–4 × 107 个细胞/mL。将细胞悬液与1–2 µg DNA混合。将混合物转移至电穿孔比色皿中并进行电击。电穿孔后立即将细胞转移至含有SorMC和细菌的培养皿中。让细胞恢复约5小时后，再加入筛选标记。对于附加体质粒，可直接将筛选剂加入培养皿中。通常在约2天后可观察到转染成功的细胞。对于旨在单次整合到基因组中的线性化载体，按所示设置三个梯度稀释，并加入筛选剂。细菌来自OD600 = 100的储备液。充分混匀各管后，将细胞转移至96孔平底组织培养板中。每个稀释度使用两块板。每孔加入150 µL细胞悬液。大约5天后可见致密的克隆形成。红色孔位显示了通常获得的成功转化细胞数量的示例（上图经修改自先前发表的研究22）。请点击此处查看该图的放大版本。

  1. 准备含有 K. aerogenes 菌悬液的平板：将 10 mL SorMC 缓冲液（其中加入 K. aerogenes 细菌至 OD600 = 2 的浓度，即向缓冲液中加入 200 µL 已制备的 OD600 = 100 的 K. aerogenes 储存液以达到所需细菌浓度）加入一个 10 cm 经组织培养处理的培养皿中。
    注意：该平板后续用于培养转染后的 D. discoideum 细胞。也可使用 6 孔组织培养板。在转染附加体质粒时，使用 6 孔组织培养板更为节省资源。每孔加入 2 mL 的 K. aerogenes SorMC（OD600 = 2）悬液。
  2. Dictyostelium 细胞的制备
    1. 使用 10 µL 一次性接种环，从培养板的生长区域（约 3 cm，即透明区域边缘）或清斑板上刮取细胞，并转移至含有 1 mL 冰冷 H40 缓冲液的 1.5 mL 离心管中。
      注意：从清斑板上收获细胞的时间至关重要。收获过早会导致细胞量不足，而收获过晚则可能获得部分已开始发育的细胞。
    2. 通过在 1,000 × g 条件下离心 2 分钟，或在 10,000 × g 条件下瞬时离心 2 秒，洗涤细胞。弃去上清液，并将细胞重悬于 H40 缓冲液中，最终细胞密度为 2–4 × 107 个/mL。在整个转染过程中保持细胞低温，使用冰水混合物确保离心管与冰直接接触。
  3. 电穿孔
    1. 将 100 µL 细胞加入含有 1–2 µg DNA 的离心管中，通过上下吹打轻轻混匀。
    2. 将细胞与 DNA 的混合物转移至预冷的电穿孔比色皿（2 mm 间隙）中。
    3. 采用以下方波参数对细胞进行电击：350 V，8 ms，2 次脉冲，脉冲间隔 1 s。
      注意：DNA 加入量不得超过 2 µg。过量 DNA 对细胞具有毒性，并会降低转染效率。加入的总 DNA 体积不应超过 5 µL。
    4. 立即将细胞转移至先前准备好的含 K. aerogenes SorMC 的 10 cm 培养皿中，让细胞恢复 5 小时。
      注意：在倒置显微镜下观察培养皿中的细胞。电穿孔后细胞呈圆形，但在约 30 分钟后，当细胞充分贴附于表面时，将恢复其变形虫样形态。
  4. 转染子的筛选：根据转染目的为构建基因敲除、基因敲入或 act5 敲入，或在附加体质粒中表达荧光报告蛋白，选择以下所述方法之一进行筛选。
    注意：与无菌培养的细胞不同，细菌培养的细胞对杀稻瘟菌素具有高度抗性。因此，筛选始终使用 G418 或潮霉素进行（见讨论部分）。
    1. 基因敲除、基因敲入和 act5 基因敲入
      1. 通过反复用移液器将液体冲击培养皿表面，小心地使细胞脱离。
      2. 在 SorMC K. aerogenes 悬液（OD600 = 2）中设置三个稀释梯度，并根据所用抗性加入相应的筛选试剂（见 图 1）。
      3. 低稀释度：将 9 mL 细胞悬液与 20.4 mL SorMC 及 600 µL K. aerogenes 储存液混合。
      4. 中稀释度：将 900 µL 细胞悬液与 28.5 mL SorMC 及 600 µL K. aerogenes 储存液混合。
      5. 高稀释度：将 90 µL 细胞悬液与 29.3 mL SorMC 及 600 µL K. aerogenes 储存液混合。
      6. 加入 30 µL 筛选标记物（100 倍储存液）。
      7. 用移液器将制备好的各稀释液分别取 150 µL 加入 96 孔平底组织培养板的每个孔中。
        注意：该步骤旨在筛选单克隆而非群体。筛选过程约需 5–7 天，具体时间取决于所用构建体。
    2. 附加体质粒
      1. 直接将筛选标记物加入 10 mL 培养皿中（见 图 1）。
        注意：由于无需获得单克隆群体，因此无需进行稀释。附加体质粒的筛选过程更快，因其在 D. discoideum 细胞中拷贝数较高。转染子通常在 32 小时至 2 天内出现。
        警告：所用作为筛选标记的抗生素具有毒性，操作时应佩戴手套。
  5. 对获得的克隆进行阳性转染子筛选。对于基因敲除或基因敲入实验，请遵循步骤 2.5.1 的说明；对于附加体质粒的转染，请使用步骤 2.5.2 的方法检测转染效果。
    1. 对于基因敲除、基因敲入和 act5 基因敲入，首先通过 PCR 筛选，确认构建体已整合至正确的基因组位点。
      注意：为最大程度确保获得单克隆群体，应使用在筛选后能获得转染子的最高稀释度。目标为筛选后平板中最多有三分之一的孔被占据。
      1. 为扩增单克隆群体，将筛选后在 96 孔组织培养板中生长出的克隆转移至 12 孔组织培养板，以培养足够数量的细胞用于基因组 DNA 提取。每孔加入 1 mL SorMC K. aerogenes（OD600 = 2）及新鲜筛选标记物。
        注意：通常 1 天即可获得适合 DNA 提取的汇合单层细胞。
      2. 进行小量基因组 DNA 提取时，收集汇合单层细胞，并按照试剂盒说明书使用小量 DNA 提取试剂盒提取基因组 DNA。
      3. 将提取的基因组 DNA 与合适的引物及 Taq-聚合酶（见 材料表）一起用于 PCR 筛选阳性整合子。
        注意：在确认构建体已正确整合至目标基因组位点后，应进行 Southern 印迹分析。这可进一步确保未在非特异性基因组区域发生额外插入事件。
    2. 对于荧光报告蛋白，通过肉眼识别阳性荧光细胞，并使用荧光显微镜进行验证。也可使用特异性抗体进行 Western 印迹分析以进行生化鉴定。
PCR 程序
步骤温度时间
初始变性94 °C30 s
30 个循环94 °C15–30 s
42 °C15–60 s
68 °C1 min/kb
最终延伸68 °C5 min
保存4–10 °C
反应体系组成
组分25 μL 反应体系终浓度
10 µM 正向引物0.5 µL0.2 µM
10 µM 反向引物0.5 µL0.2 µM
模板 DNA可变（约 5 µL）< 1,000 ng
含标准缓冲液和聚合酶的 2x 预混液（参见材料表）12.5 µL1x
无核酸酶水加至 25 µL< 1,000 ng

表2：扩增D. discoideum基因组DNA的PCR程序及样品组成。

结果

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染色体外质粒可用于报告基因研究，旨在确定特定蛋白质在细胞内的定位，或突变细胞中细胞结构的变化。对于许多研究方法而言，例如细胞周期监测，同时表达两种报告基因至关重要。现在可利用我们的双报告基因染色体外质粒系统实现这一目标。表1。第1天，在转染后5小时加入筛选标记物G418（图1）。在本示例中，NC4、DdB、Ax2 以及独立获得的野生分离株 V12M2 和 WS2162（补充表1) 转染了编码GFP-TubulinA（微管标记物）和mCherry-PCNA（用于监测细胞周期的蛋白）的质粒pPI289（图2A）。培养32小时后，在显微镜下观察细胞。大多数细胞均表达两种荧光标记的融合蛋白，这与以往报道一致：当两种报告蛋白来自同一质粒时，其表达水平相似；而若使用两个不同的质粒，则几乎无法实现这种一致性表达。18,19每种细胞系（NC4、DdB、Ax2、V12M2 和 WS2162）中表达目标双报告基因的代表性细胞如图所示。 图2B转染效率总结如下 图2CNC4 来源的细胞系表现出最佳的转染效率。然而，在 V12M2 和 WS2162 细胞系中也获得了相当高数量的转染细胞。

质粒图谱、GFP-Tubulin/mCherry-PCNA 的显微图像以及转染效率柱状图。
图 2：附加体质粒的表达。（A）附加体质粒以环状形式直接转染。例如，双报告基因质粒 pPI289 如图所示。NgoMIV 位点表示将第二个报告基因插入附加体表达质粒的位置。（B）表达 GFP-TubulinA（细胞质）和 mCherry-PCNA（主要位于细胞核）的代表性细胞的 Z 轴投影图像，共展示五种不同的野生型细胞系（NC4、DdB、Ax2、V12M2、WS2162）。（C）根据（B）中所示五种细胞系计算其转染效率。数据表示两次实验的平均值，误差线表示 ± 标准差。请点击此处查看该图的高清版本。

将靶向载体整合到特定基因组位点更具挑战性，需要对所获得的细胞系进行更细致的分析。在图3中，尝试在NC4中实现act5-mCherry基因敲入（KI）。首先，质粒必须线性化，以提高转染后同源重组事件的发生频率。为此，使用NgoMIV酶对质粒pDM1514进行酶切。在琼脂糖凝胶电泳后可观察到两条条带。其中4127 bp的条带包含所需构建片段（图3）。进行转染前，需从凝胶中回收并纯化酶切后的DNA，可使用凝胶回收试剂盒，并严格按照制造商说明书操作。

质粒图谱、NgoMIV 酶切凝胶图及基因克隆分析用线性 DNA 示意图。
图 3：用于转染的 act5 基因敲入质粒及 DNA 的制备。 以将 act5 敲入质粒 pDM1514 为例进行说明。制备步骤如下：（A）在电穿孔前，使用指定的 NgoMIV 酶切位点将质粒线性化。（B, C）将酶切后的质粒在琼脂糖凝胶上电泳，直至两条预期条带完全分离；切下包含同源重组臂、mCherry 及抗性盒的 4127 bp 条带，并从凝胶中回收 DNA。所得 DNA 即可用于转染。请点击此处查看该图的放大版本。

纯化的DNA用于转染NC4细胞。经过5-6天的筛选后，获得了克隆。多个act5基因敲入尝试的代表性转染效率及阳性克隆数量总结于表3中。随机选取NC4转染的两个克隆，通过PCR进行分析（图4A），两者均显示出预期的基因敲入条带模式，并进一步通过Southern印迹分析验证，以确认载体在基因组中为单一位点整合20。印迹结果表明，在目标act5位点存在清晰的单一位点整合（图4B）。所获得的NC4::act5-mCherry细胞系现可用于实验研究。

基因编辑示意图；act5 基因敲入、PCR 及 BclI 酶切；电泳结果展示。
图 4：NC4 中 act5-mCherry 基因敲入的验证。 (A) 用于验证 act5 位点阳性整合的示意图及对照 PCR。使用所示引物分析两个独立克隆及其亲本株。两个克隆均显示出抗性盒以及下游（P1）或上游引物（P2）的预期条带，而亲本株中无此条带。引物组合（P1/P2）证实 mCherry 和抗性盒已正确整合至 act5 位点。野生型 NC4 显示出预期的 2800 bp 条带，而两个基因敲入克隆均缺失该条带，取而代之的是约大 1400 个碱基对的 PCR 产物。(B) 所用限制性酶切及 Southern 印迹示意图。两个基因敲入克隆均显示出较小的 3400 bp 条带，这是由于构建体整合至 act5 位点所致，特别是潮霉素抗性盒中新增的 BclI 酶切位点。野生型对照显示出预期的 5.8 kb 条带，来源于下游两个 BclI 酶切位点。为便于观察，印迹图已进行裁剪和拼接。请点击此处查看该图的放大版本。

靶向整合至 act5 位点的构建体质粒名称占用孔数检测克隆数阳性克隆数正确克隆 (%)使用的盘基网柄菌株转染效率（转染子/2×10⁶/1 µg DNA）
LifeAct-mCherrypPI22677114.2AX23.5×10⁻⁶
LifeAct-GFPpPI2271212541.6AX26×10⁻⁶
GFPpDM151333266.6AX21.5×10⁻⁶
mCherrypDM151433133.3AX21.5×10⁻⁶
GFPpDM1513669555.5AX23.3×10⁻⁵
mCherrypDM1514221121083.3AX21.1×10⁻⁴
H2B-mCherrypPI42033133.3AX21.5×10⁻⁶
H2B-mCherrypPI42077685.7AX23.5×10⁻⁶
mCherrypDM15141010770DdB5×10⁻⁶
mCherrypDM1514240121191.6DdB1.2×10⁻⁴
mCherrypDM15143201212100NC41.6×10⁻⁴

表3：在不同菌株背景下生成act5基因敲入（KIs）时的转染效率及获得的阳性转染子数量22。

act5 位点可实现整合报告基因相对均一的表达21。所构建的 NC4::act5-mCherry 细胞可用于与其他使用不同荧光蛋白（如 GFP）的 act5 基因敲入细胞进行混合实验。为突出该系统的重要优势，本文展示了与 Ax2::act5-GFP 细胞的混合实验结果。由于无法对非无菌型野生型细胞进行转染，此类实验此前难以开展。混合实验是分析细胞行为的重要工具，因为它允许在完全相同的实验条件下对不同细胞系进行直接比较。NC4 细胞在细菌菌苔上的生长速度比 Ax2 细胞更快（图 5A）。这可能归因于其更强的吞噬细菌能力，或更高效的运动性及向食物源趋化的能力。通过琼脂下叶酸趋化实验，直接比较了 NC4::act5-mCherry 与 Ax2::act5-GFP 细胞群体，结果显示 NC4::act5-mCherry 细胞在叶酸感知方面效率显著更高。培养 4 小时后，成功迁移至琼脂糖下方的 NC4::act5-mCherry 细胞数量多于 Ax2::act5-GFP 细胞（图 5B）。对在琼脂糖下迁移细胞的趋化性常规指标进行分析表明，NC4::act5-mCherry 细胞的迁移速度更快，且趋化反应强度高于 Ax2::act5-GFP 细胞（图 5C-E）。

Dictyostelium cell motility and chemotaxis analysis; graphs and microscopy showing GFP/mCherry labeling.
图5：使用 活动图像化趋化混合实验的5个关键指标 (A) NC4::act5-mCherry 和 Ax2::act5-GFP 表达指定的荧光蛋白 活动5个位点被分析在细菌菌苔上的生长能力。4天后，由单个接种形成的噬菌斑直径 盘基网柄菌 细胞被测定。非无菌 act5::NC4 细胞形成的噬斑明显大于无菌培养的细胞 Ax2::act5-GFP 细胞（均值 ± 标准差，***p < 0.0001，n = 3，比例尺 5 mm。 (B用于琼脂糖下叶酸趋化性实验22 直接比较趋化能力的 NC4::act5-mCherry 和 Ax2::act5-GFP 在（A）中使用的细菌培养的两种菌株阿米巴虫以50:50的比例混合。将细胞置于琼脂糖下使其爬行。4小时后，利用共聚焦显微镜对沿叶酸梯度迁移的细胞进行成像。迁移细胞的数量 NC4::act5-mCherry 和 Ax2::act5-GFP 然后确定了细胞的数量。 NC4::act5-mCherry 细胞在感知叶酸方面效率更高，大约高出10倍 NC4::act5-mCherry 与……相比，细胞数量被发现 Ax2::act5-GFP 细胞（均值 ± 标准差，***p < 0.0001，n = 6，比例尺 100 µm）。(C，D细胞被拍摄记录60分钟，计算其迁移速度和趋化指数。在预先筛选出趋化反应最强的细胞后（仅包含在琼脂糖下方发生迁移的细胞）， Ax2::act5-GFP 细胞在迁移速度和趋化性方面均表现出较低的数值。每种细胞系分析了50个细胞。（中位数 ± 标准差，*p < 0.01，n = 3）。(E轨迹的 NC4::act5-mCherry 和 Ax2::act5-GFPact5次敲入在60分钟内的运动轨迹显示，细胞向趋化因子源的运动更具方向性 NC4::act5-mCherry 细胞（中位数 ± 标准差，***p < 0.0001，n = 6。 请点击此处以查看此图的放大版本。

act5 基因敲入细胞系也可用于流式细胞术分析。与在细菌上生长的情况类似，无菌株系与非无菌野生型之间在发育过程中存在显著差异。发育完成后，NC4 细胞形成的子实体大小约为 Ax2 细胞来源子实体的两倍。若将两种细胞混合，则形成中等大小的子实体。为了更定量地分析两种细胞系在子实体形成中的贡献比例，采用了流式细胞术。这些分析结果明确显示，中等大小的子实体是由于两种细胞系贡献水平不同所致。在检测到的孢子中，NC4::act5-mCherry 细胞约占 75%，而 Ax2::act5-GFP 细胞仅占 25%，表明非无菌株系可能具有潜在的适应性优势（图 6）。由于该分析未监测柄细胞群体，因此对于 Ax2 与 NC4 之间发育不平衡的现象存在两种可能解释：一种可能是 Ax2 细胞主要贡献于柄细胞群体，而非进入孢子细胞群体；另一种可能是更多的 NC4 细胞进入发育周期，而 Ax2 细胞相对延迟，因而无法有效参与子实体的构建。对非无菌野生型细胞进行转染的可能性进一步拓展了研究手段，并显著简化了实验流程。

孢子形成分析；荧光显微镜图像、柱状图和散点图显示GFP与mCherry信号。
图6：Act5 KI可利用流式细胞术分析混合实验。（A）NC4::act5-mCherry 与 Ax2::act5-GFP 分别单独培养，或以50:50比例混合后在无营养琼脂平板上进行发育。NC4::act5-mCherry 细胞形成的子实体大于 Ax2::act5-GFP 细胞，而混合培养的子实体大小介于两者之间（比例尺为5 mm）。共聚焦荧光显微镜观察提示，来自混合培养的孢子头中，NC4::act5-mCherry 来源的孢子数量较多。（B）为定量该现象，通过流式细胞术分析了（A）中混合实验所收获孢子头内的孢子组成。约75%的孢子来源于 NC4::act5-mCherry 细胞，仅25%来源于 Ax2::act5-GFP 细胞。（C）流式细胞术散点图展示了两种细胞系孢子的代表性分布。约0.05%的事件同时显示mCherry和GFP阳性信号，提示可能发生过类有性融合过程，或孢子之间存在粘连现象。请点击此处查看该图的高清版本。

细胞系遗传背景参考编号先前已发表类型
AX2 (Ka)DBS0235521Bloomfield et al., 2008野生型
NC4 (S)Bloomfield et al., 2008野生型
act5::mCherry Clone 5NC4HM1912Paschke et al., 2018act5 基因敲入
act5::GFP Clone 2AX2HM1930Paschke et al., 2018act5 基因敲入
V12M2Bloomfield et al., 2008野生型
WS2162Bloomfield et al., 2008野生型

补充表1：研究的不同Dictyostelium菌株。

讨论

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

目前，非无菌型野生型Dictyostelium细胞在分子生物学研究中的应用非常有限。现有针对这些菌株的基因工程方法缺乏可靠性和效率23，从而阻碍了其广泛采用。本文所提供的材料和方案可适用于任何D. discoideum菌株，无论其是否能够在液体培养基中生长。需要指出的是，本方案已针对NC4来源的细胞系进行了优化。如我们此前观察到的，并在本文中对V12M2和WS2162菌株所示，从自然界新近分离的菌株其转染效率与NC4存在差异8,9。电穿孔条件似乎尤其显著影响转染效率，某些菌株可能需要进一步优化该条件。总体而言，在迄今为止测试的所有菌株中均观察到了足够数量的转染子，表明这些方法切实可行。使用NC4来源菌株获得的阳性转染子数量高于其他非无菌型野生型菌株，但在所有情况下，所获得的转染子数量均足以支持后续实验。加之本方案操作简便，相较于早期尝试8,9，这是主要的改进之处。

这些新的非无菌培养方案涵盖了所有标准的遗传学操作，并具有额外优势，因为转染可以快速且高效地并行进行。由于在细菌上培养使细胞分裂时间缩短一半，因此可在数天内而非数周内获得阳性克隆。新建立的质粒在无菌条件下同样有效，可常规用于两种培养条件，这是该方法的另一项进步22。如本方案所述，用于细菌上筛选的质粒具有特殊要求，这对转染成功至关重要。特别是驱动表达盒和抗性盒的启动子，对转染的成功尤为关键。常用于驱动抗性或表达盒的act6（肌动蛋白6）启动子24，在细胞于细菌上生长时效率较低。在我们的质粒系统中，所有表达盒均由高活性的act15（肌动蛋白15）启动子驱动，而抗性盒则由coA（协同肌动蛋白A）启动子控制；这两个启动子在无菌条件下以及在细菌上培养的细胞中均具有活性。由于报告基因构建体、基因敲入和基因敲除构建体的表达要求，必须使用我们这一系列的质粒，但遗憾的是，这也限制了已有的、使用低效act6启动子的载体的应用。

启动子效率对于依赖单次整合至正确基因组位点的转染尤为关键。由于我们改进了驱动抗性基因表达的启动子，单一位点整合即可产生足够的抗性蛋白。此前有报道称，在使用潮霉素或G418进行筛选时，可能会偏好基因组中的多次整合事件，这是本方法的一个主要关注点。然而，迄今为止并未观察到这种对多次整合的偏好，这与之前使用较老启动子系统进行G418筛选的结果一致25。这意味着潮霉素和G418均适合作为获得干净的基因敲除和基因敲入的可筛选标记。遗憾的是，筛选标记杀稻瘟菌素（blasticidin）在非无菌条件下无法发挥作用。这是本方法的一个主要缺点，因为在 D. discoideum 中，杀稻瘟菌素抗性盒通常被用于构建基因敲除载体。已使用杀稻瘟菌素抗性盒构建的载体需重新构建，并改用其他可行的可筛选标记。克服这一限制的另一种可能策略是将近期建立的无菌型 D. discoideum CRISPR 技术与本转染方案相结合26。设计和制备合适的单导向RNA（sgRNA）比重建完整的基因敲除载体更为简便快捷。未来的发展方向中，将CRISPR/Cas9技术与本转染方案结合以实现多重基因敲除具有吸引力，可能为黏菌（Dictyostelium）研究领域众多科研人员开辟新的路径。然而，需谨慎评估目前用于无菌培养细胞中CRISPR/Cas9的瞬时表达系统在此方案中的适用性。

act5 基因敲入系统为在 D. discoideum 中建立稳定细胞系提供了一种可靠且安全的整合系统，并具有与其他生物中已建立的类似位点相兼容的优势22。该系统依赖于基因组中的单次整合事件，可为多种研究方向提供广泛的应用可能。act5 启动子具有强活性，能够在不同培养条件下实现近乎均一的基因表达27。利用设计好的靶向质粒，可将荧光报告蛋白轻松整合至这一安全位点。例如，在本文展示的混合实验中，该特性可用于细胞示踪研究。细胞间的表达变异性极低，有助于实现自动化的细胞追踪。重要的是，目标序列插入 act5 位点后表现为表型中性28,29。由于蛋白表达不依赖于筛选标记来维持，与随机整合或携带附加体质粒的细胞系不同，act5 系统也可适用于基因功能回补实验。此外，由于细胞系具有高度均一性，所有细胞均可用于分析，而使用附加体质粒进行表达时则存在显著的表达异质性，无法实现全面分析。

除了对所有菌株的这些总体改进之外，利用非无菌型野生型细胞进行分子研究的能力，使得研究人员能够评估当前实验室菌株中累积突变所带来的影响。自1970年采用Ax2菌株以来，已发现存在多次基因重排，此前发表的微阵列分析结果已证实了这一点26。由于这些突变的存在，出现了合成表型。例如，有报道指出，phg2突变体在一种实验室菌株背景下表现出黏附能力下降，而在另一种背景下则表现出黏附能力增强3。此类相互矛盾的数据现在可以通过在共同祖先菌株（本例中为DdB）中重复实验得以解决。该方法的优势最近在小GTP酶RasS的研究中已得到证实30,31。

在任何D. discoideum菌株中进行遗传实验的能力，拓展了依赖野生分离株的新研究方向的潜力，特别是涉及社会进化、亲缘识别以及有性循环的研究22。

披露

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者声明无利益冲突。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者感谢 Kay 实验室对本方法提供的建议，以及 MRC 分子生物学实验室（LMB）显微镜和流式细胞术平台提供的出色科研与技术支持。本研究由以下基金资助：医学研究理事会（MRC）资助项目 MC_U105115237（授予 R. R. Kay），生物技术和生物科学研究理事会（BBSRC）资助项目 BB/K009699/1（授予 R. R. Kay），癌症研究英国（Cancer Research UK）资助项目 A15672（授予 R. H. Insall），惠康基金会（Wellcome Trust）高级研究员项目 202867/Z/16/Z（授予 Jonathan R Chubb），以及医学研究理事会（MRC）对伦敦大学学院（UCL）MRC LMCB 大学研究单位的资助（MC_U12266B）。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
<强>仪器设备
Eppendorf 微型离心机 5424/5424R赛默飞世尔科技05-400-002
Eppendorf 5702R 离心机配备 A-4-38 型转子赛默飞世尔科技12823252
Eppendorf Mastercycler Nexus 梯度PCR仪Sigma AldrichEP6331000025
Gene Pulser X 细胞电穿孔仪（含 CE 认证） &和 PC 模块BioRad1652660
安全柜 Foruna - SCANLAFLabogene
BioPhotometer PlusEppendorf
CLSM 710Zeiss
<强>培养基 &琼脂糖
LoFlo 培养基FormediumLF0501
Seakem GTG 琼脂糖Lonza50071
低电渗琼脂糖BioGene300-200
纯化琼脂OxoidLP0028
SM 培养基福麦迪亚SMB0102
2x LB 肉汤FormediumLBD0102
<强>化学品
SYBR Safe DNA凝胶染料赛默飞世尔科技S33102
1 Kb Plus DNA Ladder赛默飞世尔科技10787018
1 Kb DNA LadderNEBN3232L
HEPES 游离酸Sigma Aldrich/Merck391340 EMD
KH2PO4VWRP/4800/53
Na2HPO4 2 H2OVWR10028-24-7
MgCl₂2 * 6 H2OSigma Aldrich/Merck5982 EMD
CaCl2 2 H2OSigma Aldrich442909
叶酸Sigma AldrichF7876
KOHVWR26668.263
<强>培养皿
96孔细胞培养板，平底，低蒸发盖，组织培养处理康宁公司3595
6孔细胞培养板，平底带盖，组织培养处理康宁公司3516
100 x 20 mm 组织培养皿，经组织培养处理康宁公司353003
50 mm 玻璃底微孔培养皿 No1.5MatTek CorporationP50G-1.5-30-F
<强>抗生素
遗传霉素G418硫酸盐Gibco（生命技术公司）11811-023
Hygromycin B GoldInvivoGenant-hg-1
<强>附加耗材
2 mm 间隙电穿孔比色皿，长电极Geneflow LimitedE6-0062
10 µL 型接种环，蓝色，10 微升赛默飞世尔科技129399
L形无菌涂布棒Greiner Bio-One730190
Combitips advanced 5 mLEppendorf BIOPUR30089669
<强>试剂盒
ZR 质粒小提经典试剂盒ZymoresearchD4016
快速DNA小提中试剂盒ZymoresearchD3025
Zymoclean DNA 回收试剂盒ZymoresearchD40002
<强>酶
限制性内切酶NEB
OneTaq 2X 标准缓冲液预混液NEBM0482L
T4 DNA连接酶NEBM0202S
PrimeSTAR Max DNA聚合酶TakaraBioR045A

参考文献

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