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方法文章

一种由致癌性肝细胞诱导的原位小鼠肝细胞癌模型,发生于肝脏炎症与纤维化背景下

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DOI:

10.3791/59368

2019年9月12日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文描述了一种具有临床相关性的肝癌小鼠模型的建立,该模型可重现肝细胞癌(HCC)典型的免疫学特征。

摘要

目前尚缺乏能够反映肝细胞癌(HCC)典型免疫特征的临床相关动物模型,这严重阻碍了对其潜在机制的阐明以及创新性免疫治疗策略的开发。为了建立一种能够模拟人类HCC的理想动物模型,首先向免疫功能健全的雄性C57BL/6J小鼠注射四氯化碳(CCl4)以诱导肝纤维化,随后通过脾内(ISPL)接种的方式,将来自年轻雄性SV40 T抗原(TAg)转基因小鼠(MTD2)的组织学正常的致癌性肝细胞移植至上述小鼠体内。受体雄性小鼠在青春期产生的雄激素可激活由肝特异性启动子控制的TAg表达。结果,移植的肝细胞在肝纤维化/肝硬化背景下转化为癌细胞并形成肿瘤团块。该新型模型模拟了在肝纤维化/肝硬化背景下人类HCC的发生与进展过程,并再现了人类HCC最典型的特征,包括免疫功能障碍。

引言

肝细胞癌(HCC)是美国(US)发病率增长最快的癌症类型1,2,3。每年约有85万例新发病例被确诊4,5,约70万名患者死于这种致命疾病6,7,8,9,10,使其成为全球癌症相关死亡的第二大原因。HCC的治疗方式包括手术切除、移植、消融、化疗栓塞或系统性治疗,例如索拉非尼11。早期诊断并采用手术切除或移植治疗可获得最高的总体生存获益4。然而,大多数患者在疾病晚期才被发现,需采用消融、化疗栓塞或索拉非尼进行治疗12。索拉非尼是一种受体酪氨酸激酶抑制剂(RTKI),于2008年获得美国食品药品监督管理局(FDA)批准,是当时唯一可用于治疗不可切除HCC的系统性药物疗法。尽....

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方案

注意:所有涉及动物实验的操作均已获得密苏里大学动物护理与使用委员会(IACUC)的批准。所有小鼠的饲养与实验均按照《"实验动物护理与使用指南"》中规定的原则进行人道照护。细胞分离与接种的以下操作均应在生物安全柜中进行。所有操作人员应穿戴标准的个人防护装备,以处理小鼠及组织样本。

1. 通过腹腔注射四氯化碳(CCl4)诱导肝纤维化和肝硬化

注意:参见 图1. (CCl4 是一种高度危险的试剂,应小心操作,并佩戴耐化学腐蚀手套

  1. 取6至8周龄的雄性C57BL/6J小鼠(参见材料表)。
  2. 在离心管中用玉米油配制10% CCl4 (v/v)溶液。根据待注射小鼠数量确定总体积(见步骤1.6)。
  3. 采用适当的小鼠操作技术,选择一只小鼠进行注射。
  4. 手动固定小鼠,使其背部朝下(腹部朝上)。
  5. 用70%酒精擦拭小鼠腹壁注射部位进行消毒。
  6. 使用25号一次性注射针头,通过腹腔(IP)注射方式,向雄性C57BL/6J小鼠注射160 µL的10% CCl4 溶液。
  7. 确保针头仅穿透腹壁(约4-5 mm),针尖斜面朝上,并以15-20度角轻微倾斜。....

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结果

从TAg转基因小鼠中分离的癌性肝细胞(图2)通过脾内注射接种至野生型小鼠肝脏中(图3)。移植的肝细胞在肝脏炎症和纤维化的背景下,成功且稳定地生长出表达肿瘤特异性抗原SV40 TAg的原位肝细胞癌(HCC)肿瘤(图1图4图5)。

C57BL/6J 小鼠注射时间线;用于肝脏研究的 CCl₄ 和 ISPL,显示实验设计的示意图。
图 1:制备肝细胞癌小鼠模型的示意图。建立一种创新性小鼠肝细胞癌(HCC)模型的实验设计。首先对 C57BL/6J 小鼠每周腹腔注射 CCl

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讨论

通过本方案,我们建立了一种可靠且可重复的小鼠肝细胞癌(HCC)模型,该模型能够模拟人类HCC的发生与进展过程。临床上,多种风险因素依次引发肝损伤、肝纤维化、肝硬化,最终发展为HCC。在本方案中,首先通过腹腔注射四氯化碳(CCl4)在野生型小鼠中诱导肝纤维化,从而为后续致癌性肝细胞在肝纤维化背景下形成肿瘤创造条件。我们发现,与在其他时间点接种肝细胞的小鼠相比,在CCl4处理两周后接种肝细胞的小鼠肿瘤形成最为成功。此外,我们发现肝纤维化可在CCl4注射后持续存在长达四个月。与未接受CCl4处理的小鼠相比,采用该方法可使超过90%的小鼠发展出HCC肿瘤。在本模型中,来自MTD2品系小鼠的肝细胞被转移至C57BL/6J小鼠体内后,会归巢至肝脏,并整合为表达TAg作为组织抗原的肝细胞。从MTD2小鼠中分离肝细胞是本方案中的关键步骤。需使用溶液1和溶液2对MTD2小鼠肝脏进行充分灌注,以彻底清除肝脏内的循环红细胞。采用指定浓度和流速的胶原酶溶液对肝脏进行灌注,以实现适度的肝脏消化并释放肝细胞。我们发现,若胶原酶浓度过低,则消化不充分,导致肝细胞成团;而浓度过高则.......

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致谢

本工作由美国国立卫生研究院/国家癌症研究所资助,项目编号为 R01 CA164335-01A1(负责人:K. F. Staveley-O’Carroll)和 R01CA208396(负责人:Mark Kester、Guangfu Li、Kevin F. Staveley-O’Carroll)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
麻醉机VETEQUIPIMPAC6用于手术的麻醉机
蝶形针BD8122963用于肝脏灌注的针头
C57BL/6 小鼠Jackson Lab000664 实验方案中使用的小鼠
卡洛芬CRESCENT CHEMICAL20402用于缓解疼痛的卡洛芬
细胞筛 CORNINGREF 43175170µm 细胞筛,用于肝细胞分离
离心机Beckman CoulterAllegra X-30R用于细胞分离的离心机
夹子 Teleflex MedicalREF 523700用于脾脏的钛夹
显微镜ZeissPrimovert 用于细胞观察的显微镜
Mtd2 小鼠N/A2002年由罗斯韦尔·帕克癌症研究所 William A Held 博士惠赠,在本实验室保种
针头BDREF 305109BD PrecisionGlide 针头,27G × 1/2 (0.4mm × 13mm)
缝合线ETHICONJ303H涂层薇乔缝合线
SV40 T 抗原抗体Abcamab16879用于免疫组化检测的抗 SV40 T 抗原抗体
注射器BDREF 3096261 mL TB 注射器,用于细胞注射
台盼蓝SIGMAT 8154用于细胞活力检测的台盼蓝溶液
伤口夹Reflexreflex9, Part. No. 201-1000不锈钢伤口夹,用于伤口闭合

参考文献

  1. O'Connor, S., Ward, J. W. Hepatocellular carcinoma - United States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 59, 517-520 (2010).
  2. Petrick, J., Kelly, S., Altekruse, S., McGlynn, K., Rosenberg, P.

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重印与许可

标签

SV40 T