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方法文章

Streptococcus mutans 中一种高分子质量蛋白的纯化

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DOI:

10.3791/59804

2019年9月14日

本文内容

摘要

本文介绍了一种用于纯化Streptococcus mutans基因产物的简单方法。该技术在蛋白质纯化中具有优势,尤其适用于膜蛋白和高分子质量蛋白的纯化,并可应用于多种其他细菌种类。

摘要

阐明一个基因的功能通常需要比较野生型菌株与目标基因被破坏的菌株之间的表型特征。在基因被破坏后,通过外源添加该基因的产物,可恢复其功能缺失的表型,从而帮助确定该基因的功能。此前已有方法描述了构建 gtfC 基因被破坏的 Streptococcus mutans 菌株。本文则介绍了一种简便的方法,用于在基因破坏后从新构建的 S. mutans 菌株中纯化 gtfC 基因的产物。该方法涉及在目标基因的 3′ 端添加一段编码多聚组氨酸的序列,从而可通过固定化金属亲和层析简便地纯化该基因产物。该遗传修饰方法除 PCR 外无需其他酶促反应。在基因破坏后通过外源添加基因产物以恢复功能,是一种高效确定基因功能的方法,且该策略也可适用于其他不同物种。

引言

分析一个基因的功能通常需要将野生型菌株的表型特征与目标基因被破坏的菌株进行比较。一旦获得基因被破坏的菌株,外源添加该基因产物即可实现功能的恢复。

获取后续修复实验所需纯化基因产物的最常用方法是在大肠杆菌(Escherichia coli)中进行异源表达1。然而,利用该系统表达膜蛋白或高分子量蛋白通常较为困难1。在这些情况下,目标蛋白通常需从天然合成该蛋白的细胞中分离,这一过程涉及一系列复杂的步骤,可能导致基因产物的损失。为克服这些问题,已建立一种简便的基因产物纯化流程,该流程结合了基因敲除方法2、基于PCR的DNA拼接方法3 (称为两步融合PCR)以及在变形链球菌(Streptococcus mutans)中进行电穿孔介导的遗传转化。在基因产物的C末端添加多组氨酸标签(His标签)可使其通过固定化金属亲和色谱法(IMAC)实现高效纯化。

为了分离表达His标签的菌株,需将目的基因(在此表达His标签的基因敲除菌株中)的全部基因组DNA替换为抗生素抗性标记基因。构建表达His标签菌株的流程与此前所述的基因敲除菌株构建方法几乎完全相同4

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方案

注意:在进行这些实验方案之前,必须完成S. mutansgtfC菌株的构建,其中gtfC基因的全部编码区已被spcr取代。有关构建方法的详细信息,请参阅已发表的文章5

1. 引物设计

  1. 准备用于构建的引物 S. mutans His-gtfC.
    注意: 本方案中使用的引物序列如下所示 表1两步融合PCR法用于生成 S. mutans His-gtfC 在示意图中示出 图2.
    1. 设计引物(gtfC-逆转和 spcr-正向)用于连接编码His标签的序列,位于两者之间 gtfC 基因和 spcr (图2A).
      1. 在两者中均加入GS连接子及编码His标签的序列 gtfC-逆转和 spc....

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结果

图3 显示了第一次PCR(图3A)和第二次PCR(图3B)各扩增片段的大小。各扩增片段的大小均与表1中所述的预测大小一致。图4A 显示了用第二次PCR产物转化的S. mutans菌落在含链霉素的BHI琼脂平板上的菌落。对菌落进行PCR扩增后,在琼脂糖凝胶上电泳分析(图4B)。各扩增片段的大小均与表1中所述的预测大小一致。图5 显示了SDS-PAGE和蛋白质印迹(western blot)的结果。通过IMAC纯化的蛋白质在SDS-PAGE中表现为单一蛋白条带(图5A)。使用抗多.......

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讨论

引物设计是本实验方案中最关键的步骤。gtfC-reverse 和 spcr-forward 引物的序列是根据 gtfC 基因 3′ 末端区域和 spcr 基因 5′ 末端区域的序列自动确定的。每个引物在其 5′ 端均包含 24 个互补碱基,用于编码 GS 连接肽以及 His 标签编码序列。通过在 3′ 端添加 His 标签编码序列,可避免破坏位于上游侧翼区域的天然调控序列。gtfC-reverse 引物中必须去除 DNA 终止密码子,而该终止密码子应添加至 spcr-forward 引物中。此外,gtfC-forward 和 spcr-reverse 引物应分别设计用于扩增 S. mutans 野生型基因组中同源重组目标区域上下游约 1 kb 的侧翼片段。添加较长的侧翼序列可提高同源重组效率。本方案中,嵌套引物将用于替代最外侧的一对引物(即 gtfC-forward 和 <.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由日本促进科学振兴会(JSPS)(资助编号:16K15860 和 19K10471,授予 T. M.;17K12032,授予 M. I.;18K09926,授予 N. H.)以及 SECOM 科学技术基金会(SECOM)(资助编号:2018.09.10 No. 1)提供支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
琼脂糖Nippon GeneticsNE-AG02用于琼脂糖凝胶电泳
厌氧袋三菱瓦斯化学A-03厌氧培养系统
抗His标签单克隆抗体MBLD291-7HRP-偶联的
BCA 蛋白检测试剂盒Thermo Fisher Scientific23227蛋白质浓度测定
脑心浸液肉汤贝克顿,迪金森237500细菌培养基
考马斯亮蓝 R-250和光031-17922用于生物膜染色
离心超滤装置SartoriusVS2032缓冲液置换与蛋白质浓缩
离心Kubota7780II
层析柱Bio-Rad7321010用于金属螯合亲和层析(IMAC)
透析膜夹Fisher 品牌21-153-100
透析袋作为一体2-316-06
DNA聚合酶TakaraR045A高保真DNA聚合酶
DNA测序Eurofins Genomics
ECL 底物Bio-Rad170-5060用于蛋白质印迹分析
EDTA(0.5 M,pH 8.0)和光311-90075Tris-EDTA 缓冲液的配制
电穿孔比色皿Bio-Rad16520860.2 cm 间隙
电穿孔仪Bio-Rad1652100
EtBr 溶液Nippon Gene315-90051用于琼脂糖凝胶电泳
凝胶切胶器Nippon GeneticsFG-830
凝胶回收试剂盒Nippon GeneticsFG-91202从琼脂糖凝胶中提取DNA
成像仪GE Healthcare29083461用于 SDS-PAGE 和蛋白质印迹分析
咪唑和光095-00015结合缓冲液和洗脱缓冲液的配制
培养箱日本医科大学 &与化学仪器EZ-022温度设置:4 °C
培养箱日本医科大学 &和化学仪器LH-100-RDS温度设置:37 °C
膜过滤器默克密理博JGWP047000.2 µm 直径
微型离心机Kubota3740
NaCl和光191-01665结合缓冲液和洗脱缓冲液的制备
NaH2PO4·2H2O和光192-02815结合缓冲液和洗脱缓冲液的制备
NaOH和光198-13765结合缓冲液和洗脱缓冲液的制备
(NH4)2SO4和光015-06737硫酸铵沉淀
镍离子负载树脂Bio-Rad1560133用于金属螯合亲和层析
PCR 引物Eurofins Genomics定制订购
蛋白标准品Bio-Rad161-0381用于 SDS-PAGE 和蛋白质印迹分析
溶剂过滤装置作为一体FH-1G
壮观霉素和光195-11531抗生素;使用浓度为100 μg/mL
无菌注射器滤器默克密理博SLGV004SL0.22 µ微米直径
变形链球菌 ΔgtfC实验室保藏菌株gtfC 替换为 spcr
变异链球菌 UA159实验室保藏菌株S. mutans ATCC 700610,野生型菌株
蔗糖和光196-00015用于生物膜形成
TAE(50 × )日本基因公司313-90035用于琼脂糖凝胶电泳
热循环仪Bio-RadPTC-200
Tris-HCl(1 M,pH 8.0)和光314-90065Tris-EDTA 缓冲液的配制

参考文献

  1. Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3rd Edition. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2001).
  2. Murata, T., Ishikawa, M., Shibuya, K., Hanada, N. Method for functional an....

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重印与许可

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