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方法文章

用于抗疟疾伯氨喹紫外-可见光及肉眼检测的优化格里斯反应

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DOI:

10.3791/60136

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2019年10月11日

 ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本方案描述了一种用于在合成尿液和人血清中检测抗疟药物伯氨喹(PMQ)的新型比色法。

摘要

伯氨喹(Primaquine,PMQ)是一种重要的抗疟药物,已被世界卫生组织(WHO)推荐用于治疗由疟原虫引起的危及生命的感染 P. vivax 和 卵形然而,PMQ 具有导致不良反应的副作用 可导致葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PD)缺乏症患者发生急性溶血。因此,亟需开发简单且可靠的伯氨喹(PMQ)检测方法,以实现剂量监测。2019年初,我们报道了一种基于紫外-可见光谱(UV-Vis)和肉眼观察的PMQ比色定量方法。该检测基于PMQ与苯胺类化合物之间的类似格里斯(Griess)反应,生成有色偶氮产物。该方法在合成尿液中直接检测PMQ的检出限可达纳摩尔(nanomolar)级。此外,该方法在临床相关浓度范围内对人血清样本中的PMQ定量已显示出巨大潜力。在本实验方案中,我们将详细描述有色偶氮产物的合成与表征、试剂制备以及PMQ测定的具体操作步骤。

引言

PMQ 是最重要的抗疟药物之一,它 不仅可作为组织裂殖体杀灭剂以防止复发,还可作为配子体杀灭剂以阻断疾病传播1,2,3,4血管内溶血是伯氨喹(PMQ)令人担忧的副作用之一,在葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PD)缺乏的个体中尤为严重。已知G6PD遗传性缺陷在全球范围内分布,在疟疾流行地区的基因频率为3%–30%。PMQ所致溶血的严重程度取决于G6PD缺乏的程度,以及PMQ的剂量和暴露持续时间。5,6为降低风险,世界卫生组织(WHO)推荐使用单次低剂量(0.25 mg 碱基/kg)的哌喹(PMQ)治疗疟疾。然而,该方案仍面临患者药物敏感性差异的挑战。5,7剂量监测对于评估PMQ给药后的药代动力学至关重要,有助于在保证疗效的同时通过剂量调整将毒性降至最低。

高效液相色谱法(HPLC)是目前用于PMQ临床检测最广泛使用的技术。Endoh等人报道了一种采用C-18聚合物凝胶柱并配备紫外检测器的HPLC系统,用于血清中PMQ的定量分析8。在其系统中,首先使用乙腈沉淀血清蛋白,然后对上清液中的PMQ进行HPLC分离。该方法的校准曲线在0.01–1.0 μg/mL浓度范围内呈线性8。另一种基于反相HPLC并在254 nm处进行紫外检测的方法也被报道用于PMQ及其主要代谢物的定量分析9。该方法中PMQ的校准曲线在0.025–100 μg/mL范围内呈线性。该方法还采用了以正己烷和乙酸乙酯混合液为有机相的液-液萃取步骤进行PMQ分离,回收率可达89%9。最近,Miranda等人开发了一种在260 nm处进行紫外检测的超高效液相色谱(UPLC)方法,用于片剂制剂中PMQ的分析,检测限为3 μg/mL10。

尽管高效液相色谱(HPLC)方法在药物测定中表现出良好的灵敏度,且若配备质谱仪可进一步提高灵敏度,但仍存在一些缺点。由于许多生物分子会显著干扰分析过程,通常无法直接使用HPLC测定生物流体中的药物。在进行HPLC分析前,需要额外的提取步骤以去除内源性分子11,12。此外,通常在PMQ最大吸收波长(260 nm)下使用HPLC-UV检测器进行检测;然而,生物流体中存在许多在260 nm处具有强吸收的内源性分子(如氨基酸、维生素、核酸和尿色素),从而干扰PMQ的紫外检测。因此,亟需开发简便、经济且具有合理灵敏度和选择性的PMQ测定方法。

Griess 反应最早于1879年提出,作为一种用于检测亚硝酸盐的比色方法13,14,15,16。近年来,该反应已被广泛研究,不仅用于亚硝酸盐的检测,还可用于检测其他具有生物学意义的分子17,18,19,20。我们此前报道了PMQ与Griess反应之间意外反应的首次系统性研究(图1)。在该体系中,PMQ在酸性条件下与取代苯胺及亚硝酸根离子偶联,能够生成有色的偶氮化合物。我们进一步发现,随着苯胺取代基给电子效应的增强,偶氮化合物的颜色从黄色逐渐变为蓝色21。基于4-甲氧基苯胺与PMQ之间的优化反应,已建立了一种基于紫外-可见吸收的比色法用于PMQ的定量分析。该方法在生物相关液体中对PMQ的灵敏且选择性检测方面展现出巨大潜力。本文旨在详细描述基于该比色策略的PMQ测定步骤。 

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方案

1. 有色偶氮化合物的合成

  1. 在25 mL圆底烧瓶中,将苯胺(0.1 mmol)和伯氨喹二磷酸盐(45.5 mg,0.1 mmol)溶于10 mL H3PO4 溶液(5% v/v)。将圆底烧瓶置于冰浴中,向溶液中加入适当大小的搅拌子,然后将圆底烧瓶放在搅拌器上。
    注意: 用于偶氮化合物的合成 3g (图2),使用0.2 mmol的磷酸伯氨喹。
  2. 将 NaNO 溶解2 (6.9 mg,0.1 mmol)溶于1 mL冷却的水中,然后逐滴加入反应混合物中。撤去冰浴,继续在室温下搅拌反应混合物。
  3. 使用硅胶薄层色谱板(TLC)监测反应进程。以二氯甲烷(DCM)/甲醇(MeOH)混合溶剂(体积比 = 5:1)作为TLC展开剂。偶氮产物在TLC板上呈现有色斑点,肉眼易于分辨。当TLC板上PMQ斑点消失时,停止反应。
  4. 调节反应混合物的 pH 值 >在冰浴中用 2 M NaOH 调节至 pH 10。使用 50 mL 分液漏斗,每次用 20 mL 乙酸乙酯萃取混合物,共萃取 3 次,合并有机相,并在减压条件下用旋转蒸发仪浓缩。
    注意: 在提取前,将反应溶液的pH值调节至10以上,以保持伯胺处于非离子化形式,从而促进提取。
  5. 使用 MeOH/H,采用常压反相硅胶快速柱色谱纯化残余物2以O作为洗脱液。将产物溶液通过冷冻干燥干燥,得到目标偶氮产物。
    注意: 相同的反应也可以在稀释的 HCl 溶液(0.2 M)中进行。

2. 紫外-可见光谱测量与理论计算

  1. 分别将纯偶氮化合物(50 μM)溶解于蒸馏水中或5% H3PO4溶液(pH 1.1)中。在室温(25 °C)下使用紫外-可见分光光度计记录其吸收光谱(250–700 nm)。将数据导出为 .xls/.xlsx 文件以供进一步分析。
  2. 使用 Gaussian 16 程序对 PMQ 本身及其偶氮产物进行所有理论计算。采用含6-31G基组的含时密度泛函理论(TD-DFT),并通过极化连续介质模型(PCM)考虑水溶剂效应。
    1. 使用软件(例如 ChemDraw Office)绘制分子结构,并将其保存为 Gaussian 输入文件(.gif 格式)。
    2. 在 Gauss View 中打开该 gif 文件,点击 Calculate 按钮。选择 Gaussian Calculation Setup、Opt+Freq 以及 ground state-DFT-B3LYP-6-31G,然后点击 Submit。几何优化将生成一个 .log 文件。
    3. 按照上述步骤,在 Gauss View 中打开该 .log 文件。点击 Calculate-Gaussian Calculation Setup,选择 energy 和 TD-SCF-DFT-B3LYP-6-31G-Singlet only,然后点击 Submit。能量计算将生成另一个 .log 文件和一个 cube 文件。
    4. 使用 Gauss View 打开能量计算所得的 .log 文件,点击 Results-UV/Vis 查看预测的吸收光谱。
    5. 使用 Gauss View 打开 cube 文件,点击 Results,选择 surface and contours-surface actions 和 new surface 以查看分子轨道。
  3. 比较实验测量结果与 Gaussian 计算结果。根据以下公式计算理论值与实测值之间的百分误差。
                  误差 = | (Wmax 计算值 - Wmax 实验值) / Wmax 实验值 | × 100%
    其中 Wmax 计算值 表示理论计算得到的最大吸收波长,Wmax 实验值 表示实验测得的吸收波长。

3. PMQ 测定

  1. 使用96孔板进行PMQ测定(图5)
    1. 将4-甲氧基苯胺溶于0.2 M HCl中,配制成200 mM的苯胺溶液R1。将亚硝酸钠溶于蒸馏水中,配制成5 mM的溶液R2。使用前将所有溶液置于4 °C冰箱中保存。
    2. 向96孔板中加入100 µL R1,再加入50 µL含PMQ的样品与R1混合。然后向孔板中加入50 µL R2。通过反复移液混匀各溶液。
    3. 将孔板在室温下静置15分钟,随后在504 nm处测定紫外-可见吸收值。每项测试重复3次。 偶氮产物在室内光线下稳定,无需避光保存孔板。
    4. 将数据导出为.xls/.xlsx文件以供进一步分析。
  2. 尿液样品中PMQ直接测定的校准曲线
    1. 使用合成尿液配制PMQ浓度分别为0、1、2、5、10、20、50、100、200 μM的标准溶液。
    2. 向96孔板中加入100 µL R1,再加入50 µL PMQ尿液溶液与R1混合。然后向上述混合物中加入50 µL R2。通过反复移液混匀溶液。将孔板在室温下静置15分钟,随后在504 nm处测定紫外-可见吸收值。
    3. 根据吸光度 I504与PMQ浓度绘制校准曲线。以不含PMQ的孔测定值作为空白,数据处理前从所有测试值中扣除空白值。
    4. 进行线性拟合,得到线性方程Y = aX+b,其中Y为504 nm处的吸光度强度,X为PMQ浓度,a为 斜率 , b 为 线性直线的截距。
  3. 人血清样品中PMQ直接测定的校准曲线
    1. 使用人血清配制PMQ浓度分别为0、1、2、5、10、20、50、100、200 μM的标准溶液。
    2. 向96孔板中加入100 µL R1,再加入50 µL PMQ血清溶液与R1混合。向上述混合物中加入50 µL R2,并通过反复移液混匀溶液。将孔板在室温下静置15分钟,随后在504 nm处测定紫外-可见吸收值。将数据导出为.xls/.xlsx文件以供进一步分析。
    3. 根据吸光度 I504与PMQ浓度绘制校准曲线。以不含PMQ的孔测定值作为空白,数据处理前从所有测试值中扣除空白值。
    4. 进行线性拟合,得到线性方程Y = aX+b,其中Y为504 nm处的吸光度强度,X为PMQ浓度,a为 斜率 , b 为 线性直线的截距。
  4. 血清中PMQ的提取
    1. 向人血清中加入一定量PMQ,模拟含PMQ的血清样品。进行PMQ提取时,在15 mL离心管中向2 mL含PMQ的血清中加入6 mL乙酸乙酯/正己烷混合液(体积比7:1)。
    2. 向提取体系中加入100 µL氢氧化钠(2 M)溶液。使用涡旋振荡器剧烈震荡30秒。收集有机相,并在减压条件下使用旋转蒸发仪浓缩。
    3. 将残留物重新溶解于200 µL蒸馏水中,并通过孔径为220 nm的圆盘形膜过滤去除不溶性脂质成分。将所得溶液用于检测。
  5. 通过提取法测定血清中的PMQ
    1. 按照步骤3.2或3.3生成蒸馏水中PMQ的校准曲线。根据步骤3.4从含PMQ的血清中提取PMQ。
    2. 向96孔板中加入100 µL R1和50 µL PMQ溶液。向上述混合物中加入50 µL R2,并通过反复移液混匀溶液。
    3. 将孔板在室温下静置15分钟,测定504 nm处的紫外-可见吸收值。以仅含R1和R2但不含PMQ的孔作为对照。将数据导出为.xls/.xlsx文件以供进一步分析。
    4. 从每项测试的吸光度值I504中扣除对照值,然后根据校准曲线所得线性方程计算浓度。
      注意:在所有情况下,PMQ的检测限(LOD)可根据标准方法22计算。计算基于校准函数:LOD = 3.3 × SD/b,其中SD为空白样品的标准偏差,b为回归直线的斜率。

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结果

为优化反应条件(图2),我们通过Griess反应将多种苯胺类化合物与PMQ进行偶联。成功获得了一系列具有不同颜色的偶氮产物。研究发现,带有给电子取代基的苯胺可在紫外-可见吸收光谱中引起红移。通过时间依赖密度泛函理论(TD-DFT)进行了理论计算。如图2A所示,计算结果与光学测量数据吻合良好,平均误差为3.1%。由于4-甲氧基苯胺在反应速率、产物溶解性和稳定性方面表现良好,因此被用于PMQ检测反应21。此外,4-甲氧基苯胺生成的偶氮产物呈红色,肉眼易于分辨。因此,该反应在肉眼可视化的PMQ检测方面具有应用潜力(图3)。

图4A 显示了pH对偶氮产物3d的紫外-可见吸收光谱的影响。 I504 当pH从1.0升高到6.0时,不发生变...

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讨论

我们描述了一种用于便捷定量PMQ的比色法。该方法可能是目前最简单且最具成本效益的方法。更重要的是,此方法无需使用任何仪器,即可通过肉眼进行PMQ测定。

用于检测PMQ的优化Griess反应可生成一种红色偶氮化合物,在504 nm处具有最大吸收峰。内源性生物分子在紫外-可见光区的吸收干扰有限,因此该方法有望直接用于生物流体中PMQ的测定。结果表明,在0–200 μM浓度范围内,尿液中PMQ检测呈现良好的线性关系(R2 = 0.998)(图6A)。PMQ的检测限(LOD)为0.63 μM。该方法在人血清中PMQ的直接检测方面也展现出巨大潜力。在10–200 μM浓度范围内,血清中PMQ检测同样表现出优异的线性关系(图6B)。通过提取和浓缩等前处理步骤,可进一步提高方法的灵敏度。如图7所示,采用简单的提取流程,该方法即可实现临床相关浓度范围内血清PMQ的定量检测。根据反应机理,PMQ的主要...

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披露

作者声明无任何利益冲突。

致谢

作者感谢广州中医药大学的启动基金以及广州中医药大学青年科研训练项目(2019QNPY06)的支持。我们还感谢广州中医药大学岭南医学研究中心在实验设施方面提供的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
4-甲氧基苯胺AladdinK1709027
2,4-二甲氧基苯胺Heowns10154207
3,4-二甲氧基苯胺BidepharmBD21914
4-甲基苯胺Adamas-betaP1414526
4-硝基苯胺MacklinC10191447
96孔平底板Labserv310109008
Gaussian@16 软件Gaussian, Inc版本:x86-64 SSE4_2-enabled/Linux
盐酸GCRF20180902
Marvin sketch(软件)CHEMAXON免费版本:15.6.29
磷酸MacklinC10112815
伯氨喹二磷酸盐3A ChemicalsCEBK200054
亚硝酸钠Alfa Aesar5006K18R
磺胺类化合物TCI(上海)GCPLO-BP
Varioskan LUX 酶标仪Thermo Fisher配备 SkanIt 软件 4.1

参考文献

  1. Fernando, D., Rodrigo, C., Rajapakse, S. Primaquine in vivax malaria: an update and review on management issues. Malar Journal. 10, 351(2011).
  2. Deng, C., et al. Large-scale Artemisinin-Piperaquine Mass Drug Administration With or Without Primaquine Dramatically Reduces Malaria in a Highly Endemic Region of Africa. Clinical Infectious Diseases. 67 (11), 1670-1676 (2018).
  3. Pavic, K., et al. Primaquine hybrids as promising antimycobacterial and antimalarial agents. European Journal of Medical Chemistry. 143, 769-779 (2018).
  4. McQueen, A., et al. Synthesis, characterization, and cellular localization of a fluorescent probe of the antimalarial 8-aminoquinoline primaquine. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 27 (20), 4597-4600 (2017).
  5. Ashley, E. A., Recht, J., White, N. J. Primaquine: the risks and the benefits. Malaria Journal. 13 (1), 418(2014).
  6. Watson, J., Taylor, W. R., Menard, D., Kheng, S., White, N. J. Modelling primaquine-induced haemolysis in G6PD deficiency. Elife. 6, (2017).
  7. Beutler, E. Glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency: a historical perspective. Blood. 111 (1), 16-24 (2008).
  8. Endoh, Y. S., et al. High-performance liquid chromatographic determination of pamaquine, primaquine and carboxy primaquine in calf plasma using electrochemical detection. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications. 579 (1), 123-129 (1992).
  9. Dua, V. K., Kar, P. K., Sarin, R., Sharma, V. P. High-performance liquid chromatographic determination of primaquine and carboxyprimaquine concentrations in plasma and blood cells in Plasmodium vivax malaria cases following chronic dosage with primaquine. Journal of Chromatography B: Biomedical Applications. 675 (1), 93-98 (1996).
  10. Miranda, T. A., Silva, P. H. R., Pianetti, G. A., César, I. C. Simultaneous quantitation of chloroquine and primaquine by UPLC-DAD and comparison with a HPLC-DAD method. Malaria Journal. 14, 29(2015).
  11. Tatsuno, M., Nishikawa, M., Katagi, M., Tsuchihashi, H. Simultaneous determination of illicit drugs in human urine by liquid chromatography-mass spectrometry. Journal of Analytical Toxicology. 20 (5), 281-286 (1996).
  12. Erni, F. Use of high-performance liquid chromatography in the pharmaceutical industry. Journal of Chromatography A. 507, 141-149 (1990).
  13. Tsikas, D. Analysis of nitrite and nitrate in biological fluids by assays based on the Griess reaction: Appraisal of the Griess reaction in the l-arginine/nitric oxide area of research. Journal of Chromatography B. 851 (1), 51-70 (2007).
  14. Zurcher, D. M., Adhia, Y. J., Romero, J. D., McNeil, A. J. Modifying a known gelator scaffold for nitrite detection. Chemical Communications. 50 (58), 7813-7816 (2014).
  15. Kunduru, K. R., Basu, A., Tsah, T., Domb, A. J. Polymer with pendant diazo-coupling functionality for colorimetric detection of nitrates. Sensors and Actuators B: Chemical. 251, 21-26 (2017).
  16. Li, D., Ma, Y., Duan, H., Deng, W., Li, D. Griess reaction-based paper strip for colorimetric/fluorescent/SERS triple sensing of nitrite. Biosensors and Bioelectronics. 99, 389-398 (2018).
  17. Deng, T., et al. A novel strategy for colorimetric detection of hydroxyl radicals based on a modified Griess test. Talanta. 195, 152-157 (2019).
  18. Pang, H., et al. A photo-responsive macroscopic switch constructed using a chiral azo-calix[4]arene functionalized silicon surface. Chemical Communications (Camb). 54 (24), 2978-2981 (2018).
  19. Kaur, N., Dhaka, G., Singh, J. Simple naked-eye ratiometric and colorimetric receptor for anions based on azo dye featuring with benzimidazole unit. Tetrahedron Letters. 56 (9), 1162-1165 (2015).
  20. Liu, F., Lou, J., Hristov, D. X-Ray responsive nanoparticles with triggered release of nitrite, a precursor of reactive nitrogen species, for enhanced cancer radiosensitization. Nanoscale. 9 (38), 14627-14634 (2017).
  21. Deng, T., et al. An unexpected Griess reaction on the important anti-malarial drug primaquine and its application for drug determination. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 171, 8-14 (2019).
  22. Shrivastava, A., Gupta, V. Methods for the determination of limit of detection and limit of quantitation of the analytical methods. Chronicles of Young Scientists. 2 (1), 21-25 (2011).

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