本方案详细介绍了如何实施和进行多光纤光度记录,如何校正钙离子非依赖性伪影,以及双色光度成像的重要注意事项。
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本方案详细介绍了如何实施和进行多光纤光度记录,如何校正钙离子非依赖性伪影,以及双色光度成像的重要注意事项。
在自由活动的动物体内记录一群神经元的活动是一项具有挑战性的任务。此外,随着大脑被划分为越来越小的功能亚区,对神经元投射和/或遗传学定义的神经元亚群进行记录变得至关重要。光纤光度法是一种简便而强大的方法,能够克服这些挑战。通过结合光学与遗传学技术,可在深部脑区表达基因编码的钙指示剂,将神经元活动转化为易于检测的光学信号,从而实现对神经活动的测量。本实验方案详细介绍了多光纤光度系统的组成、如何进入深部脑区以递送和收集光信号、校正运动伪影的方法,以及荧光信号的处理与分析流程。本方案还阐述了在单根或多根植入式光纤上进行单色或双色成像时的实验注意事项。
将神经反应与动物行为的特定方面进行关联的能力,对于理解特定神经元群体在引导或响应某种行为或刺激中所起的作用至关重要。鉴于动物行为的复杂性,即使是看似最简单的动作,也可能受到多种内部状态和外部刺激的影响,因此以单次试验分辨率记录信号的技术为研究人员提供了克服这些局限性的必要工具。
光纤光度测定技术因其相较于其他体内记录技术具有相对简便的操作、较高的信噪比,以及能够在多种行为范式中进行记录等优势,已成为系统神经科学领域众多研究人员的首选技术1,2,3,4,5,6,7,8。与传统的电生理学方法不同,光度测定是一种光学方法,通常与基因编码的钙离子指示剂(GECIs,如GCaMP系列)联合使用9。GECIs在结合钙离子与否的情况下,其荧光能力会发生变化。由于神经元内钙离子浓度受到严格调控,且在神经元产生动作电位时电压门控钙通道会打开,因此细胞内钙离子浓度的瞬时升高会导致GECIs荧光能力的瞬时增强,这种变化可作为神经元放电活动的良好替代指标9。
利用光纤光度法,激发光被引导通过一根细小的多模光纤进入大脑,并通过同一根光纤收集发射信号。由于这些光纤重量轻且可弯曲,动物可以几乎不受限制地活动,使该技术能够与多种行为学测试和实验条件相兼容。某些情况,例如快速运动或光纤连接线弯曲超过其能维持全内反射的半径,可能会引入信号伪影。为了区分真实信号与噪声,我们可以利用GCaMP的一个特性,称为“等吸收点”。简而言之,对于GCaMP,当激发光波长向短波方向偏移时,其在钙结合状态下的发射光强度降低,而在无钙结合状态下的发射光强度略有增加。这两种发射光相对强度相等的波长点即被称为等吸收点。当在该波长点激发GCaMP时,其发射光不受细胞内钙离子浓度变化的影响,信号的波动通常主要源于光纤连接线过度弯曲导致的信号衰减,或脑组织相对于植入光纤的移动。
单细胞电生理学由于具有单细胞和单峰电位水平的分辨率,仍然是自由活动动物在体记录的金标准。然而,确定所记录细胞的分子身份可能较为困难,且事后分析过程可能相当繁琐。虽然光纤光度法不具备单细胞分辨率,但它使研究人员能够提出并解决传统技术无法涉及的问题。通过结合病毒策略与转基因动物,可将GECIs的表达定向至基因定义的神经元类型,从而记录特定神经元群体或投射定义的神经活动,该过程可通过直接监测轴突末梢的钙信号来实现10,11。此外,通过植入多个光纤套管,可在同一只动物中同时监测多个脑区和通路的神经活动12,13。
本文中,我们描述了一种单光纤和多光纤光度记录技术,介绍了如何校正与钙离子无关的伪影,并详细说明了单色和双色记录的实施方法。我们还举例说明了该技术能够回答的问题类型及其日益增加的复杂性(见图1)。本实验方案中详述的多光纤记录光度系统可通过访问 https://sites.google.com/view/multifp/hardware 获取所需材料清单进行搭建(图2)。
系统必须配备能够支持410 nm和470 nm激发波长的装置,以检测GCaMP6或其变体产生的钙离子依赖性和钙离子非依赖性荧光发射。对于自行搭建的实验系统,或在缺乏可用系统控制软件的情况下,可使用免费的开源程序Bonsai(http://www.open-ephys.org/bonsai/)。此外,光纤光度测定也可通过MATLAB(例如,https://github.com/deisseroth-lab/multifiber)12或其他编程语言14实现。系统的软件和硬件应能够控制410 nm和470 nm的LED以及相机,实现图像采集(图2),并计算在图像上围绕光纤绘制的兴趣区域(ROIs)内的平均荧光强度。输出结果应为一张表格,记录每根光纤在470 nm和410 nm LED激发下测得的平均强度值。在进行多光纤实验时,400 µm的光纤束可能会限制小鼠的活动。在此类情况下,我们建议使用200 µm的光纤跳线,以提供更高的灵活性。在小鼠训练期间,也可考虑使用更小的假电缆。
在光纤光度记录过程中,能够提取感兴趣事件的时间点至关重要。如果系统未提供内置机制来整合特定事件的TTL信号,则可采用另一种策略,即为记录的各个时间点分配时间戳,以与实验期间的特定时刻和事件对齐。时间戳可利用计算机时钟来实现。
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所有实验均依照加州大学圣地亚哥分校机构动物护理和使用委员会以及《加拿大实验动物护理与使用指南》的规定进行,并已获得拉瓦尔大学动物保护委员会的批准。
1. CMOS(互补金属氧化物半导体)相机与单根或分支光纤跳线之间光路的对准
2. 围绕纤维设置感兴趣区域以测量平均荧光强度
3. 记录区域的设置
4. 体内记录
注意:用于光纤光度实验的光纤套管植入步骤与 Sparta 等人15所述的光遗传学实验步骤完全相同。我们建议使用牙科水泥(见材料表),它可将头帽牢固地固定在颅骨上。在无法使用固定螺钉的情况下,牙科水泥尤其适用。
5. 光纤光度数据的分析
注意:这是一种适用于大多数记录数据的数据分析方法。然而,也可以采用其他替代方法。数据分析的示例代码可在此处获取:https://github.com/katemartian/Photometry_data_processing。



6. 双色同步记录
7. 双色数据分析
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行为反应的神经关联可能因多种因素而异。在此示例中,我们采用体内光纤光度法测量来自外侧下丘脑区(LHA)并投射至外侧缰核(LHb)的轴突末梢的活动。将编码GCaMP6s的腺相关病毒(AAV-hSyn-GCaMP6s)注射至野生型小鼠的LHA区域,并将光纤植入LHb上方紧邻处(图4A)。GCaMP6s在LHA的胞体及其投射至LHb的轴突末梢中表达,可在该区域记录钙信号。LHA-LHb通路的激活在实时偏好测试中促进被动回避行为,提示该通路传递厌恶信号16。随后将小鼠连接至光纤光度系统,置于开放旷场中6分钟,并每隔60秒给予1秒的厌恶气流刺激。测量结果显示,荧光信号在气流刺激施加时显著升高(图4B-C)。而在表达绿色荧光蛋白(GFP)的小鼠中,气流刺激期间未检测到信号变化(图4C)。行为测试结束后,通过组织学方法确认了L...
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光纤光度法是一种简便易行的技术,可使研究人员记录自由活动动物中特定神经元群体的群体钙活动动态。该方法可与多种行为学实验相结合,包括“运动强度高”的任务,如强迫游泳实验2、恐惧条件反射18、社交互动1,4,以及其他行为范式7,8,19,20。这使得研究人员能够观察特定神经元群体的活动由哪些行为或刺激所驱动,反之亦然。
尽管其 初步的 简单性,但在实施光纤光度法时仍有一些重要事项需要考虑,本方案中详述的系统具备多项优势,可规避常见问题。首先,该系统利用了GCaMP变体在约410 nm处存在钙离子无关的等吸...
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Sage Aronson 是 Neurophotometrics Ltd. 的首席执行官兼创始人,该公司销售多光纤光度测量系统。
本研究得到了加拿大自然科学与工程研究理事会(NSERC:RGPIN-2017-06131)向 C.P. 提供的资助。C.P. 是 FRSQ 梳理研究员。我们还感谢分子工具平台(https://www.neurophotonics.ca/fr/pom)为本研究中使用的病毒载体的制备所提供的支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 1/4"-20 不锈钢帽头螺钉,1" 长 | Thorlabs | SH25S100 | |
| 1/4"-20 不锈钢帽头螺钉,1/2" 长 | Thorlabs | SH25S050 | |
| 1/4"-20 不锈钢帽头螺钉,3/8" 长 | Thorlabs | SH25S038 | |
| 1000 µm,0.50 NA,SMA-SMA 光纤跳线 | Thorlabs | M59L01 | |
| 12.7 mm 光学支杆 | Thorlabs | TR30/M | |
| 12.7 mm 底座式支杆固定器 | Thorlabs | PH20EM | |
| 15 V,2.4 A 电源单元,带用于 T-Cube 的 3.5 mm 插孔连接器 | Thorlabs | KPS101 | |
| 20倍物镜 | Thorlabs | RMS20X | 图2中标记为#10,图5中标记为#11 |
| 30 mm 笼式立方体,带二向色滤光片支架 | Thorlabs | CM1-DCH/M | 图2中标记为#8-9,图5中标记为#8-10 |
| 405 nm LED | Doric Lenses | CLED_405 | 图2中标记为#2 |
| 410 nm 带通滤光片 | Thorlabs | FB410-10 | 图2中标记为#5,图5中标记为#7 |
| 465 nm LED | Doric Lenses | CLED_465 | 图2中标记为#1 |
| 470 nm 带通滤光片 | Thorlabs | FB470-10 | 图2中标记为#4,图5中标记为#6 |
| 560 nm 带通滤光片 | Semrock | FF01-560/14-25 | 图5中标记为#5 |
| 560 nm LED | Doric Lenses | CLED_560 | 图3中标记为#1 |
| 五轴运动学安装座 | Thorlabs | K5X1 | 图2中标记为#11,图5中标记为#12 |
| 消色差双合透镜 | Thorlabs | AC254-035-A-ML | 图2中标记为#7 |
| 405 nm 准直器适配器 | Thorlabs | AD11F | 图2中标记为#3,图5中标记为#4 |
| 可调准直器适配器 | Thorlabs | AD127-F | 图2中标记为#3,图5中标记为#4 |
| 铝制光学平台板 | Thorlabs | MB1824 | |
| 夹紧叉 | Thorlabs | CF125 | |
| 立方体连接器 | Thorlabs | CM1-CC | |
| 双通道 493/574 二向色镜 | Semrock | FF493/574-Di01-25x36 | 图5中标记为#10 |
| GCaMP6 发射滤光片 | Semrock | FF01-535/22-25 | 图2中标记为#6 |
| 带黑色硬质纤维板的外壳 | Thorlabs | XE25C9 | |
| 外置 SM1 螺纹加工用端盖 | Thorlabs | SM1CP2M | |
| 快速更换 SM1 镜筒滤光片支架 | Thorlabs | SM1QP | 图2中标记为#4-6,图5中标记为#5-7 |
| 405 nm 光固定准直器 | Thorlabs | F671SMA-405 | 图2中标记为#3,图5中标记为#4 |
| 470 nm 和 560 nm 光固定准直器 | Thorlabs | F240SMA-532 | 图2中标记为#3,图5中标记为#4 |
| 绿色发射滤光片 | Semrock | FF01-520/35-25 | 位于光束分光器内 |
| 高分辨率 USB 3.0 CMOS 相机 | Thorlabs | DCC3260M | 图2中标记为#13,图5中标记为#15 |
| 光束分光器 | Neurophotometrics | SPLIT | 图5中标记为#14 |
| 长通二向色镜,425 nm 截止 | Thorlabs | DMLP425R | 图2中标记为#8,图5中标记为#9 |
| 长通二向色镜,495 nm 截止 | Semrock | FF495-Di03 | 图2中标记为#9,图5中标记为#8 |
| Metabond 牙科水泥 | C&B | ||
| M8 - M8 电缆 | Doric Lenses | Cable_M8-M8 | |
| 光纤套管 | Doric Lenses | 需注明这些将用于需要低自发荧光的光度测量实验 | |
| 光纤跳线 | Doric Lenses | 需注明这些将用于需要低自发荧光的光度测量实验 | |
| 红色发射滤光片 | Semrock | FF01-600/37-25 | 位于光束分光器内 |
| T7 LabJack | LabJack | ||
| T-cube LED 驱动器 | Thorlabs | LEDD1B | |
| USB 3.0 I/O 电缆,Hirose 25,用于 DCC3240 | Thorlabs | CAB-DCU-T3 |
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