方法文章

使用分体路西酶测定系统识别 HBx-DDB1 相互作用的抑制剂

DOI:

10.3791/60652

2019年12月21日

本文内容

摘要

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在这里,我们提出了一种使用裂解荧光素酶检测系统来抑制HBx-DDB1相互作用的抗乙型肝炎病毒药物的方法。该系统易于检测蛋白质-蛋白质相互作用,适用于识别此类相互作用的抑制剂。

摘要

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迫切需要新的治疗乙型肝炎病毒(HBV)感染的治疗方法。虽然目前可用的核细胞(t)ide类比能有效抑制病毒复制,但它们对从病毒共价闭环DNA(cccDNA)转录的病毒蛋白的表达没有直接影响。由于高病毒抗原负荷可能在这个慢性和HBV相关的致癌作用,HBV治疗的目标是根除病毒蛋白。HBV调节蛋白X(HBx)与宿主DNA损伤结合蛋白1(DDB1)蛋白结合,降解染色体5/6(Smc5/6)的结构维持,导致从cccDNA激活病毒转录。在这里,使用裂化荧光素酶补充测定系统,我们提出了一个全面的化合物筛选系统,以识别HBx-DDB1相互作用的抑制剂。我们的协议能够轻松检测活细胞内的相互作用动力学。这项技术可能成为发现治疗HBV感染的新治疗剂的关键测定方法。

引言

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乙型肝炎病毒(HBV)感染是全世界一个重大的公共卫生问题,每年估计有2.4亿人长期感染乙肝病毒,9万人死于感染并发症,包括肝硬化和肝细胞癌(HCC)1。虽然目前抗HBV治疗剂,核细胞(t)类比,足以抑制病毒逆转录,但它们很少实现病毒蛋白的消除,这是长期的临床目标。它们对病毒蛋白消除的不良影响是因为他们对肝细胞核2中表皮病毒共价闭合环DNA(cccDNA)小染色体的病毒转录缺乏直接影响。

HBV转录由HBV调节X(HBx)蛋白3激活。最近的研究表明,HBx通过劫持DDB1-CUL4-ROC1 E3泛素结合酶复合4,5,6,降解染色体5/6(Smc5/6)的结构维持,这是阻止HBV转录从cccDNA的宿主限制因子。因此,促进来自cccDNA的病毒转录的关键步骤被认为是HBx-DDB1相互作用。能够抑制HBx和DDB1之间结合的化合物可以阻断病毒转录,事实上,硝基氧烷通过实验室7开发的筛选系统被确定为HBx-DDB1相互作用的抑制剂。

在这里,我们介绍....

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方案

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:图1A显示了裂解荧光素酶测定的示意图表示,如图1B所示。图1B概述了测定过程。 相互作用动力学可以实时测量,无需细胞分变。

1. 细胞制备

  1. 在Dulbeco的改性Eagle培养基(DMEM)中保持培养的HEK293T细胞,辅以10%v/v胎儿牛血清(FBS),1x青霉素/链霉素在37°C,在20%O2和5%CO2中。
  2. 种子 5 x 106细胞放入 100 mm 的培养皿中,其 DMEM 为 10 mL,并在 37°C 下孵育过夜。
  3. 根据以下方法,用裂化荧光素酶将HBx和DDB1的瞬时转染1μg进入细胞。
    :质粒DNA转染的量可能取决于所使用的转染。与靶蛋白融合的裂性荧光素酶的最佳位置必须事先确定。在这种情况下,HBx 在 HBx (HBx-LgBit) 的 C 端与 LgBit 融合,DDB1 在 DDB1 的 N 端(SmBit-DDB1)与 SmBit 融合,提供了最佳结果(即最亮的荧光素酶信号)。此过程之前已详细报告7

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结果

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使用该协议后的代表性结果如图2A,B所示。信背景比大于80,Z'因子9(高通量筛选的黄金标准质量指数)大于0.5,表明该检测系统对于高通量筛选是可以接受的。与对照组(仅限DMSO)相比,阈值设置为>40%抑制,我们确定硝基氧烷为候选药物7。使用这个系统,通过筛选其他更大的化合物库可以找到更好的候选药物。

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图1:HBx-DDB1相互作用的分路素酶分析的原理表示。A) 使用裂分荧光素酶互补测定系统对HBx-DDB1结合进行基础检测.......

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讨论

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我们开发了一种方便的筛选方法,使用裂光酶测定法来发现HBx-DDB1结合抑制剂。相互作用动力学可以在活细胞中实时检测,而无需细胞变热。抑制HBx-DDB1相互作用导致Smc5/6的恢复,导致抑制病毒转录,蛋白质表达和cccDNA生产7。这种新的抗病毒作用机制可以克服目前HBV疗法的不足。

虽然有许多方法可用于研究活细胞中的蛋白质-蛋白质相互作用,但检查这些相互作用仍然很困难我们的程序很简单,只需要很短的时间来筛选一个96孔板。此外,筛选质量令人满意,Z分高,高通量筛选的黄金标准质量指数为9。我们的测定可能适用于机器人自动化11,是药物发现的有效检测。

虽然本文所述的协议使用了HEK293T细胞系,因为它的高转染效率和高增殖能力适合高通量筛选,这种筛选方法可以使用其他细胞系(例如HepG2)进行,无需修改

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披露

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作者没有什么可透露的。

致谢

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这项工作得到了教育部的助学金支持, 文化、体育、科学和技术,日本(#19H03430和#17K09405,#19J11829到K.S.),由创新领域科学研究资助(#18H05024到M.O.),由日本医学研究和发展厅肝炎研究计划,AMED(M.O.,#JP19fk021005),由创新开发和应用新药物乙型肝炎(#JP19fk0310102日本应用酶学基金会和小林癌症研究基金会(M.O.),GSK日本研究赠款2018年(K.S.),以及宫川纪念研究基金会(K.S.)的赠款。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
细胞培养微孔板,96 孔,PS,F-BOTTOMGreiner-Bio-One GmbH655098
DMEMSigma AldrichD6046
DMSOTocris Bioscience3176
Effectene 转染试剂Qiagen301425包括 DNA 缩合缓冲液、增强剂溶液和转染试剂
FBSNichirei
GloMax 96 微孔板发光仪PromegaE6521
HBx–表达 LgBit 的 DNA 质粒我们的实验室可根据要求提供
HEK293T 细胞美国类型培养物保藏中心CRL-11268
NanoBiT PPI 启动系统PromegaN2015包括 Nano-Glo 活细胞试剂
Opti-MEMThermo Fisher Scientific11058021在手稿中描述为"缓冲细胞培养基"
PBSTakaraT900
青霉素-链霉素Sigma AldrichP0781
筛选孔 FDA 批准的药物库 V2 版本 1.0Enzo Life SciencesBML-2841这里使用的化合物如下:美喹醇、巯嘌呤水合物、美司钠、美三酚、偏肾上腺素半硫酸盐、间拉米诺酒石酸盐、美他沙酮、乙酰甲胆碱氯化物、甲唑胺、乌洛托品马普酸盐、美索巴莫、甲氨蝶呤、甲氧沙林、溴化美莨菪碱、美琥胺、甲基噻嗪、氨基乙酰丙酸甲酯·HCl、马来酸甲基麦角新碱、美托拉宗、美替拉酮、美西律和middot;盐酸、米卡芬净、咪康唑、米多君和middot;HCl、米格列醇、米那普仑和middot;HCl、米氮平、米托坦、莫西普利和middot;盐酸、糠酸莫米松、莫匹罗星、纳多洛尔、萘夫西林和middot;Na, naftifine·HCl、naratriptan 和 middot;HCl、纳他霉素、奈比洛尔和 middot;盐酸、奈拉宾、奈帕芬胺、奈韦拉平、烟酸、尼古丁、尼罗替尼、尼鲁胺、硝唑尼特、尼替西农、呋喃妥因、尼扎替丁、去甲替林和middot;HCl、olsalazine·Na、奥利司他、奥沙普嗪、氧三叶碱、奥昔布宁氯化物、土霉素和middot;HCl、帕潘立酮、帕洛诺司琼·HCl、硫酸巴龙霉素、帕唑帕尼和middot;盐酸、培美曲塞二钠、培美司特钾、青霉胺、青霉素 G 钾、羟乙基磺酸喷他脒、喷司他丁、培哚普利、氯菊酯、奋乃静、硫酸苯乙肼、去氧肾上腺素、植物甲萘醌、吡美莫司、匹伐他汀钙和鬼臼
SmBit–表达 DDB1 的 DNA 质粒我们的实验室可根据要求提供
胰蛋白酶-EDTASigma AldrichT4049
175012毒素

参考文献

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  1. Tang, L. S. Y., Covert, E., Wilson, E., Kottilil, S. Chronic hepatitis B infection: a review. The Journal of the American Medical Association. 319, 1802-1813 (2018).
  2. Sekiba, K., et al. Hepatitis B virus pathogenesis: Fresh insights into....

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Compound ScreeningProtein Protein InteractionHBV Therapeutic AgentsHEK293T Cell TransfectionLuminescence MeasurementZ Prime ScoreNitazoxanide InhibitionReal Time Detection

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