该方法提供了测试不同聚己内酯纤维形态和拓扑结构以用于组织工程的方法。小纤维和大纤维采用随机取向、对齐取向以及多孔低温静电纺丝结构制成,并用作细胞培养平台。
方法文章
该方法提供了测试不同聚己内酯纤维形态和拓扑结构以用于组织工程的方法。小纤维和大纤维采用随机取向、对齐取向以及多孔低温静电纺丝结构制成,并用作细胞培养平台。
静电纺丝为研究人员提供了制造可重复的微米到纳米级聚合物纤维的机会。静电纺丝聚合物的 3D 纤维结构被认为是细胞外基质 (ECM) 的结构模拟。因此,组织工程研究人员已广泛研究了由生物相容性聚合物制成的静电纺丝纤维作为人工 ECM 在体外和体内指导组织生长的潜在作用。所有细胞都对其机械环境高度敏感。通过与细胞骨架肌动蛋白丝内在相连的多个机械转导途径的发现证明了这一点。细胞骨架充当机械传感器,可以根据其基质的刚度和形态指导宿主细胞的功能和分化。静电纺丝纤维可以在纤维尺寸和形态方面进行调整,以轻松调节纤维聚合物支架内的机械环境。本文介绍了在两种不同纤维直径下针对三种不同形态的静电纺丝聚己内酯 (PCL) 的方法。形态纤维类别包括随机取向纤维、对齐纤维和多孔低温纺丝纤维,直径为 1 μm 和 5 μm。本研究中详述的方法被提议作为研究静电纺丝纤维结构对组织生成影响的平台。了解这些效应将使研究人员能够优化静电纺丝纤维的机械性能,并更彻底地展示这项技术的潜力。
近几十年来,组织工程方法已经发展起来,为细胞提供仿生环境,以促进组织成功再生,无论是体外组织模型还是体内再生技术。这些方法通常鼓励细胞自行或使用导向支架1 形成 3D 聚集体。支架可以制造成多孔或纤维状聚合物纳米/微结构,或高吸水性水凝胶 2,3,4。聚合物静电纺丝是一种常见的制造技术,可产生可以模拟天然细胞外基质 (ECM) 纤维结构的未织造纳米微米级聚合物纤维基质5。多种生物相容性聚合物适用于静电纺丝工艺;因此,静电纺丝纤维是促进组织再生的常用介质 6,7,8。静电纺丝纤维已用于一系列组织的培养,为廉价且可重复的支架平台提供了一条有前途的途径 9,10,11,12,13。
细胞对其机械环境具有极强的敏感性。以前的研究强调了这种称为机械转导的重要关系,它可以影响细胞功能、形态和分化14,15。真核细胞细胞骨架的基础由丝状肌动蛋白构成,在细胞分裂、粘附、迁移、收缩和形态学中起关键机械作用。它通过与细胞外表面蛋白的连接受到外部机械刺激的纵 16,17,18。许多研究已经证明,通过改变可附着底物的形状,形态学对干细胞分化的影响,然后能够控制细胞形状并指导分化过程19,20。此外,细胞附着的基质的刚度也会影响干细胞的命运和谱系21,22。除了干细胞,还观察到这些作用会影响不同谱系的细胞23,24。三维组织工程方法已显示出类似于水凝胶和纤维支架 25,26,27 的 2D 机械转导研究中发现的结果。此外,底物力学通过 3D 细胞聚集体通过细胞-细胞信号传导28 进行传递。材料力学在指导细胞功能方面起着至关重要的作用,因此应该是工程组织支架设计的主要因素。
该方法的目的是了解静电纺丝聚己内酯 (PCL) 纤维大小和形态对体外细胞培养物的影响。该方法改编自以前专注于肾组织工程的研究9。这里提供了更详细的分步方案,以促进支架重建并开发适用于所有细胞类型的标准化方法。用这种方法构建了六组支架:三组是 5 μm 大纤维 (LG),另外三组是 1 μm 小纤维 (SM),使用不同的 PCL 浓度。在这些 LG 和 SM 基团中,有三种不同的形态结构:无规纤维 (RA)、对齐纤维 (AL) 和多孔低温纤维 (CR)。这些支架组都具有本质上不同的结构,因此提供了细胞附着的独特局部机械环境。为了证明这对细胞的形态学影响,将 hepG2 细胞系接种到每组支架上作为代表性研究。该方法作为从干细胞到细胞系和原代细胞的所有细胞类型的静电纺丝支架设计的基线分析提供。
1. 溶液制备
2. 静电纺丝设置
注意: 在开始静电纺丝过程之前,必须设置参数。
3. 无规和排列纤维(大纤维和小纤维)的静电纺丝
4. 低温纤维静电纺丝
5. 脚手架冲孔
6. 灭菌和等离子涂层
7. 细胞的制备和接种
注:下面提供的基本细胞培养技术适用于代表性结果中用于演示目的的 hepg2 细胞。这些原则可应用于任何贴壁细胞类型;但是,不同的细胞可能需要不同的材料和不同的工艺。细胞处理必须在生物安全柜中按照无菌技术进行。
图 1 显示了由 PCL 溶液制备的小纤维 (~1 μm) 和大纤维 (~5 μm) 的扫描电子显微镜 (SEM) 图像。在 SEM 成像之前,使用溅射镀膜机用金钯 (60:40) 溅射镀膜纤维 30 s。在氯仿和甲醇的 5:1 溶液中使用 19 w/v% 的高浓度 PCL 生产大纤维,以制备高粘度 PCL 溶液。然后以高流速静电纺丝这种高粘度溶液,在电场内发射一大丝聚合物溶液。因此,针头和心轴之间需要 230 mm 的大距离,以确保溶剂在沉积到心轴上之前有效蒸发。相反,在 HFIP 中使用 7 w/v% 的低浓度 PCL 生产更小的纤维,以产生低粘度的 PCL 溶液。以低流速静电纺丝低粘度 PCL 溶液可确保在电场内从针头中喷出更细的 PCL 溶液线。较细的线有助于更快地蒸发溶剂,并且针需要在 70 毫米处更靠近心轴,以确保纤维的稳定沉积。对于静电纺丝小的低温纤维,改变 PCL 溶液是获得可靠方案的必要条件。HFIP 中的 PCL 静电纺丝到低温心轴上反复导致纤维结构分解。在 3:1 氯仿甲醇中对浓度为 14 w/v% PCL 的静电纺丝解决了这个问题;然而,这在整个支架上造成了更大的纤维尺寸变化。通过 ImageJ DiameterJ 插件29 分析每个支架的纤维排列程度(纤维半径和方向),如图 2 和 图 3 所示。

图 1:显示每个支架组形态质量的 SEM 图像。 顶行显示细纤维,底行显示大纤维。形态组从左到右分别列为随机纤维、对齐纤维和低温纤维。 请单击此处查看此图的较大版本。

图 2:来自一小组纤维的 DiameterJ 插件的纤维半径(左)和纤维取向(右)数据。 形态学从上到下分别列为随机纤维、对齐纤维和低温纤维。 请单击此处查看此图的较大版本。

图 3:来自大量纤维的 DiameterJ 插件的纤维半径(左)和纤维取向(右)数据。 形态学从上到下分别列为随机纤维、对齐纤维和低温纤维。 请单击此处查看此图的较大版本。
该方法为我们提供了一组具有六种明显不同的拉伸性能的支架,这些支架使用拉伸试验机根据前面描述的方法9 确定。如 表 1 所示,宏观杨氏模量范围从大对齐纤维的 46.94 ± 3.48 MPa 到大低温纤维的 0.20 ± 0.01 MPa。生理组织刚度值范围从 100 Pa(神经组织)到 2-4 GPa(骨组织)30;此处报告的所有脚手架刚度值都在此范围内。
| 脚手架 | 应变的杨氏模量 (MPa) % | ||||
| 0–2% | 2–4% | 4–6% | 6–8% | 8–10% | |
| SM.RA 类 | 11.14 ± 2.13 | 9.31 ± 0.43 | 6.75 ± 0.64 | 4.75 ± 0.59 | 3.32 ± 0.40 |
| SM.铝 | 27,94 ± 8,63 | 28.27 ± 7.36 | 16,34 ± 4,87 | 9.10 ± 3.75 | 5.85 ± 3.11 |
| SM.铬 | 0.27 ± 0.11 | 0.31 ± 0.44 | 0.31 ± 0.65 | 0.29 ± 0.59 | 0.26 ± 0.40 |
| LG.RA 类 | 9.23 ± 0.78 | 8,22 ± 0,87 | 5.96 ± 0.68 | 3.96 ± 0.59 | 2.63 ± 0.45 |
| LG.铝 | 46,94 ± 3,48 | 38.03 ± 2.46 | 27,69 ± 1,22 | 16.10 ± 1.61 | 7.87 ± 1.32 |
| LG.铬 | 0.20 ± 0.01 | 0.16 ± 0.01 | 0.12 ± 0.01 | 0.10 ± 0.01 | 0,09 ± 0,01 |
表 1:每个支架组以 2% 应变为间隔的拉伸测试数据。 SM.RA = 小随机,SM。AL = 小对齐,SM。CR = 小低温,LG。RA = 大随机,LG。AL = 大对齐,和 LG。CR = 大低温。数据以 SD ±平均值表示,n = 5。
图 4 显示了用于可视化细胞形态的 DAPI 和鬼笔环肽染色。使用的染色方法在文献11,12 中建立。使用具有 40 倍放大倍率物镜的显微镜(材料表)获得图像。图像显示,这种方法产生的对齐纤维拉长了 hepG2 细胞形态,并沿着纤维的长度引导增殖的细胞,从而在细胞培养物中产生方向性。相比之下,随机纤维上的 hepG2 细胞没有显示出在对齐结构中观察到的定向增殖和伸长。在随机结构上,hepG2 细胞表现出更规则的形态,延长的突起附着在周围的 PCL 纤维上。

图 4:DAPI(蓝色)和鬼笔环肽(绿色)染色的 hepG2 细胞在不同的支架形态上:随机(左)、对齐(中)和低温(右)。 顶行显示细纤维,底行显示大纤维。 请单击此处查看此图的较大版本。
使用不同的溶剂、PCL 浓度和静电纺丝参数的组合来实现不同纤维尺寸的产生。聚合物的类型、分子量和溶剂对所得溶液的粘度和电荷性质有很大影响,因此对静电纺丝性能有很大影响31。该方法中显示的电压会根据静电纺丝的进行条件而变化。温度和湿度影响静电纺丝过程的行为32.因此,建议读者准备好改变电压以应对任何障碍并获得稳定的泰勒锥。建议将静电纺丝机安装在环境控制外壳内,以减少静电纺丝过程中的批次间差异。
由于 IME 静电纺丝装置的功能,实现该方法中呈现的不同形态是可能的。变速心轴对于控制光纤对准至关重要。由于聚合物射流的行为,以低转速 (<250 rpm) 旋转芯轴会产生随机取向的纤维。当带电的聚合物溶液从针中喷出时,内部电荷和空气动力会引起混沌的鞭打效应,该效应用于在芯轴上形成纤维的混沌排列33,34。这种鞭打效应可以通过将心轴转速提高到 1,800 rpm 以上来克服。沉积在如此高转速心轴上的纤维表现出对齐的结构,因为表面速度足以有效抵消鞭打纤维表现出的任何横向运动。需要注意的是,当使用高心轴速度时,它可能会破坏周围的空气,从而对稳定的泰勒锥的产生不利影响。
高度多孔的低温支架是通过在 -78.5 °C 下用干冰填充心轴来生产的。 这降低了心轴的温度,并促进了表面水滴的冷凝和冻结。形成的晶体表现出从心轴表面出现的峰,纤维沉积在整个峰中。一旦冰晶升华出来,纤维的多孔结构就会留在心轴上 35,36。晶体的重量和易碎性限制了制造多孔排列纤维的能力,因为过高的心轴速度 (>250 rpm) 会导致晶体和纤维由于过大的向心力和空气动力而从心轴上脱落。由于形成的结构的脆弱性,这种方法可能会遇到困难。在处理心轴以及之后处理脚手架时必须小心,因为从液体中取出时,结构在挤压和折叠时容易被压平。还有一种可能性是,在没有低温心轴的情况下成功静电纺丝的溶液可能会被温度变化和晶体结构致命地破坏。在低温纺丝时,心轴表面形成的冰量在很大程度上取决于湿度,从而在最终结果中产生变化。因此,强烈建议将静电纺丝过程包含在环境控制外壳内。
为了评估这些支架上的细胞性能,有必要事先对材料进行消毒。聚合物灭菌有多种选择,包括化学方法、辐射方法和热方法37,38。评估每种方法的有效性以及对材料使用和材料本身的适用性非常重要。该方案在冻干、血浆处理和浸没在 1% Anti-Anti 溶液之前在 70% 乙醇中消毒。乙醇的使用使蛋白质和微生物变性和脱水,同时不会破坏 PCL 材料37。使用更强的溶剂可能会导致 PCL 溶解。该方法中加入等离子体涂层主要是为了增加 PCL 的亲水性,而 PCL 是众所周知的疏水性,并改善细胞粘附39,40。方便的是,这也可以作为二次灭菌步骤,但必须注意在血浆处理前后将支架保持在无菌环境中。该方法已被证明适用于使用抗生素处理培养基的体外研究。然而,对于体内应用,必须考虑更稳定的选择,例如环氧乙烷 (EtO) 和 γ 暴露。完成灭菌后,可以将细胞接种到支架上,并应用标准细胞培养技术在体外形成 3D 细胞培养物。
需要注意的是,刚度值应归因于支架内形成的不同微观结构。散装材料 (PCL) 在支架之间保持不变。因此,块状材料刚度在组之间不会改变。由于纤维基体内的连接性降低,低温支架的刚度比其他组低得多,如 表 1 所示。与纤维结构内的拉伸主导变形相反,减少的连通性被认为会引起更弯曲为主的变形41。有趣的是,在随机组和低温组中,支架刚度并不高度依赖于纤维尺寸。然而,排列的纤维的纵向刚度对纤维尺寸的依赖性明显更高,在 0-2% 应变下的杨氏模量为 27.94 ± 8.63 MPa(小纤维)和 46.94 ± 3.48 MPa(大纤维)。由于拉伸试验的拉伸性质,这意味着纵向横截面内的体积 PCL 密度更高。有必要重申的是,这里提供的机械数据是纤维结构的宏观机械快照。进一步的微观力学表征将有助于充分了解对细胞规模的机械影响。
该方法包括随机和对齐结构,以提供各向同性和各向异性形态之间的比较。在图 2 的 SEM 图像以及图 2 和图 3 中的纤维分析中可以观察到纤维排列的程度。在身体的许多组织中都观察到各向异性。特别是,这通常在对齐的细胞结构中观察到,例如在肌肉和神经组织中发现的细胞结构。排列的聚合物纤维结构提供了在体外概括这些排列结构的能力42,43。如前所述,细胞功能对形态和机械变化很敏感,因此应对支架结合的细胞进行进一步的功能分析,以确定每种支架类型的生物学影响。
与其他现有的脚手架制造技术相比,该方法提供了一种简单的方法来生产微尺度脚手架结构,对机械性能和形态的控制相对较高。替代 PCL 支架制造,如相分离、盐浸出和气体发泡,允许在空隙空间和孔径方面进行形态控制。然而,孔隙和结构几何形状基本保持不变 44,45,46,47。因此,与静电纺丝相比,各向同性水平等质量不能像静电纺丝那样容易改变。水凝胶材料在支架生产中很受欢迎,它提供了通过改变交联聚合物链的水平来改变聚合物基材刚度的方法48。还可以通过多种方法进行 3D 打印,从而对形态49 进行出色的控制。然而,在生物相容性水凝胶材料中实现静电纺丝尺度分辨率仍然是一个实际实施的挑战50,51。在过去十年中,静电纺丝支架在组织工程研究中很常见,并且一直在探索不同电池类型的新材料和应用的引入。虽然为了静电纺丝支架的目的不断开发新材料,但对现有静电纺丝材料和方法进行进一步生物表征的机会仍然存在。所描述的方法被提议作为一种促进体外生物学研究的方法,因为它直接适用于基本的细胞培养技术。
这项工作得到了工程与物理科学研究委员会资助编号:EP/N509644/1、UKRMPII 资助编号:MR/L022974/1 和 MRC CCBN 资助编号:MR/L012766/1 的支持。作者要感谢 Alison McDonald 博士和 David Kelly 博士 (COIL) 协助和促进显微镜成像,感谢 Alistair Elfick 教授使用实验室设施(生物工程研究所)。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 10 mm 活检穿刺 | Acuderm | P1025 | |
| 15 mL Falcon 管 | Thermo-scientific | 339650 | |
| 20 mL 玻璃样品瓶 | Fisherbrand | 11513542 | |
| 48 孔细胞培养板 | Greiner Bio-one | 677180 | |
| 抗 100X | Gibco | 15240062 | |
| 氯仿 | Acros 有机物 | ||
| DAPI | Sigma-aldrich | D9542 | |
| Eagles 最低必需培养基 | Gibco | 11090081 | |
| 电纺器 | IME 技术 | EC-DIG | |
| 胎牛血清 | GE Healthcare | SH30071.03 | |
| 金钯溅射涂布机 | Emscope | SC500A | |
| HepG2 细胞 | Sigma-Aldrich | 85011430 | |
| 六氟异丙醇 (HFIP) | Manchester Organics | G26383 | |
| L-谷氨酰胺 200 mM | Gibco | 25030081 | |
| MEM 非必需氨基酸 | Gibco | 11140050 | |
| 甲醇 | Acros Organics | 11984591 | |
| 青霉素-链霉素 10,000 U/mL | Gibco | ||
| 鬼笔环肽 | Abcam | ab176754 | |
| 磷酸盐缓冲盐水 (PBS) | Sigma-aldrich | P4417-100TAB | |
| 等离子涂布机 | Harrick Plasma | PDC-002 | |
| 聚己内酯(平均分子量 80,000) | Sigma-aldrich | 440744 | |
| PTFE 注射器 | Fisherbrand | 12941031 | |
| 扫描电子显微镜 | Hitachi | S4700 | |
| T75 培养瓶 | 康宁 | CLS430641 | |
| 台盼蓝 (0.4%) | Gibco | 15250061 |
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