我们介绍一种使用低温冷冻研磨机从酵母或其他细胞制备全细胞提取物的可靠方法,该方法可最大程度地减少蛋白质的降解和变性。所获得的细胞提取物适用于功能性蛋白复合物的纯化、蛋白质组学分析、共免疫沉淀实验以及不稳定蛋白质修饰的检测。
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我们介绍一种使用低温冷冻研磨机从酵母或其他细胞制备全细胞提取物的可靠方法,该方法可最大程度地减少蛋白质的降解和变性。所获得的细胞提取物适用于功能性蛋白复合物的纯化、蛋白质组学分析、共免疫沉淀实验以及不稳定蛋白质修饰的检测。
芽殖酵母中遗传操作的简便性及其真核细胞机制的高度进化保守性 酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae) 使其成为一种重要的遗传学模式生物。然而,由于高效的蛋白质分离依赖于细胞的充分破碎,而酵母的细胞壁给其细胞蛋白的生化分析带来了困难:酶解法(使用溶壁酶或zymolyase)成本较高,机械破碎法(使用传统的玻璃珠震荡器、法国压或咖啡研磨机)则难以避免样品升温,进而导致蛋白质变性与降解。尽管在液氮(LN₂)中手动研磨酵母细胞2) 使用研钵和研杵进行研磨虽可避免样品过热,但劳动强度大,且不同操作者之间的细胞裂解效果存在差异。多年来,我们一直通过在自动冷冻研磨仪中进行低温研磨来成功制备高质量的酵母提取物。使用液氮(LN₂)可达到 -196 °C 的低温环境,2 可保护生物材料免受蛋白酶和核酸酶的降解,从而能够回收完整的蛋白质、核酸及其他大分子。本文详细描述了适用于出芽酵母细胞的该技术,包括将细胞悬浮液在裂解缓冲液中逐滴加入液氮中进行冷冻的过程2 生成被称为“爆米花”的细胞冻滴,然后在液氮(LN)中将这种“爆米花”研磨成粉末2 使用冷冻研磨机将样品研磨成冷冻的“粉末状”提取物,随后缓慢融化,并通过离心澄清以去除不溶性残渣。所得提取物可直接用于后续实验,如蛋白质或核酸纯化、蛋白质组学分析或共免疫沉淀研究。该方法广泛适用于多种微生物、动植物组织、海洋样本(包括珊瑚)的细胞提取物制备,以及法医学和永久冻土化石样本中DNA/RNA的分离。
酵母是蛋白质研究中常用的一种模式生物,作为一种结构简单的真核生物,研究人员可利用丰富的遗传学和生物化学工具对其进行研究1。由于酵母具有坚固的细胞壁,研究人员面临的一个挑战是如何在不破坏细胞内含物的前提下高效裂解细胞。目前已有多种方法可用于通过裂解酵母细胞来获得蛋白质提取物,包括酶解法(如zymolyase)2,3、化学裂解法4、冻融法等物理裂解法5、基于压力的方法(如French press)6,7、机械法(如玻璃珠、咖啡研磨机)8,9、超声处理法10以及低温研磨法2,11。细胞裂解效率和蛋白质得率会因所采用技术的不同而存在显著差异,从而影响裂解液的最终结果或其在后续实验应用中的适用性。在研究那些不稳定的蛋白质、具有短暂翻译后修饰的蛋白质或对温度敏感的蛋白质时,尤其需要采用一种能够在样品制备过程中最大限度减少样品损失或降解的方法。
| 提取物制备技术 | 细节 | 优势 | 缺点 | 下游分析 | 参考文献 |
| French press:使用Zymolyase进行酶预处理的高压均质器(又称Microfluidizer) | Zymolyase-20T,一种Microfluidizer高压均质器。该破碎仪由气动高压泵(比例1:250;所需气压0.6–1 MPa)和带有附加背压装置的专用破碎室组成。处理样品时最小体积需20 mL。 | 采用联合方案在95 MPa压力下经过4次处理,最终总破碎率接近100%,而仅使用均质化处理(不加Zymolyase)在相同条件下4次处理的破碎率仅为32%。 | 不适用于小规模实验。大规模制备时酶的成本可能较高。 | 蛋白质纯化 | 6 |
| 珠磨破碎仪:经zymolyase处理的细胞在FastPrep仪器中使用玻璃珠进行裂解 | 向一定体积的裂解缓冲液中的细胞沉淀中加入大致等体积的冰冷、干燥、酸洗过的0.5 mm玻璃珠,通过剧烈的手动振荡破碎细胞。 | 当需要制备多种不同小型酵母培养物的提取物用于检测分析而非蛋白质纯化时,该方法尤为适用。 | 在玻璃珠法操作过程中,蛋白质会受到剧烈处理,导致严重起泡,进而引起蛋白质变性。细胞破碎程度不一,同时由于提取物温度超过4 °C可能导致蛋白质发生蛋白水解及修饰。°C,在机械破碎过程中。 | 主要是 DNA & RNA 分析,以及通过变性凝胶电泳进行的蛋白质分析(无论是否结合蛋白质印迹法)。 | 8 |
| Zymolyase 处理 随后通过渗透压休克与Dounce匀浆相结合的方法进行裂解 | 经酶消化细胞壁后,使用贴壁紧密的研杵(间隙1至3)研磨15至20次以裂解原生质球 µm) 在Dounce匀浆器中进行匀浆。 | 使用蛋白酶缺陷型菌株(如BJ926或EJ101)具有优势。这是破碎酵母细胞最温和的方法,因此最适合制备能够执行复杂酶促功能(如翻译、转录、DNA复制)的提取物,同时可维持大分子结构(如核糖体、剪接体)的完整性。该方法也适用于分离完整的细胞核,可用于染色质研究(Bloom和Carbon,1982)或制备核蛋白提取物(Lue和Kornberg,1987)。 | 原生质球裂解法的主要缺点是操作相对繁琐且成本较高,尤其对于大规模制备而言(>10 升),且长时间的孵育可能导致蛋白质降解或蛋白质修饰。 对于染色质制备,其质量似乎参差不齐或低于差速离心法所获得的结果(基于核小体梯状条带的完整性)。 | 分离完整的细胞核用于染色质研究,获取能够执行复杂酶促功能的提取物,以及需要保持完整性的提取物 大分子结构,核蛋白提取物 | 2 |
| 使用研钵/研杵或匀浆器在液氮中研磨速冻细胞以实现细胞破碎 | 细胞立即在液氮中冷冻,然后在液氮存在下通过研钵和研杵手动研磨,或使用Waring搅拌器进行裂解。 | 该方案快速简便,可处理不同量的酵母细胞,包括大量培养物。其主要优势在于可将处于活跃生长状态的细胞立即投入液氮(−196 °C)中,从而迅速冷冻,有效防止蛋白质降解和核酸酶活性,确保获得完整且具有生物活性的蛋白质、核酸及其他大分子。°C),可降低蛋白酶、核酸酶以及修饰蛋白质的酶类(如磷酸酶和激酶)的活性。该方法特别适用于从单个酵母培养物制备全细胞提取物,用于大规模蛋白质纯化。 | 对粗心的研究人员而言,该方法可能较为混乱且存在潜在危险。小样本(即10至100毫升酵母培养物)难以有效处理,因为冻结的细胞团质量不足,无法在搅拌器中有效破碎。逐个处理样本耗时较长,且每次使用后设备清洗繁琐。 | 用于大规模蛋白质纯化的单次酵母培养物全细胞提取物 | 2 |
| 自溶,珠磨机 | pH 5.0,50 °24小时,200转/分钟,4°C Ø 0.5 毫米,5 × 3 分钟/3 分钟 | 快速高效的裂解,尤其适用于小规模提取物的制备 | 热量产生会导致大分子变性与降解。需要使用珠磨破碎设备。 | 小规模分析。 | 10 |
| 自溶,超声处理 | pH 5.0,50 °℃,24 小时,200 转/分钟,4 × 5分钟/2分钟,脉冲80%,功率80% | 超声波破碎仪通常在大多数机构中都有配备。 | 产热会导致大分子变性与降解。需要使用超声破碎设备。缓慢裂解可能耗时超过24小时。 | 酵母细胞壁制备 | |
| 煮沸与冻融过程 | 除了标准冷冻机以及加热块或热水浴外,无需其他特殊设备。 | 高效、可重复、简便且经济。 | 热量的产生会导致大分子的变性与降解。 | 通过PCR进行DNA分析。 | 5 |
表1: 酵母提取物制备方法的比较。
低温研磨(又称冷冻研磨/冷冻粉碎)是一种常用方法,可可靠地从温度敏感样品中提取核酸、蛋白质或化学物质,用于定量或定性分析。该方法已成功应用于生物技术、毒理学、法医学等多个领域的多种研究。12,13环境科学,植物生物学14 以及食品科学。完整生物大分子的分离通常高度依赖于温度。极低的温度可确保蛋白酶和核酸酶保持非活性状态,从而可靠地分离出完整的蛋白质、核酸及其他大分子,用于后续分析。事实上,冷冻研磨仪通常将样品温度维持在 -196 °C °C(LN₂的沸点)2从而最大限度地减少DNA/RNA或蛋白质的变性与降解。
冷冻研磨机采用电磁研磨室,通过电磁场快速往复移动研磨罐内的实心金属杆或圆柱体,使样品在不锈钢端塞之间被粉碎。该仪器在研磨室内产生并快速反转磁场。随着磁场来回切换,磁力驱动金属杆将样品反复撞击端塞,从而实现“冷冻研磨”,将细胞“爆米花”粉碎成粉末。冷冻研磨机取代了传统的研钵和研杵,可依次处理多个样品(或同时处理最多4个较小样品),具有高度可重复性,并避免了人工研磨带来的操作者间差异。样品处理完成后,所得细胞提取物可用于多种下游实验应用。
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1. 酵母爆米花的制备

图1酵母爆米花制备。(A) 酵母“爆米花”是通过将细胞悬液逐滴加入液氮(LN)中冷冻制备的2. 我们使用一个至三个用橡皮筋固定在一起的50 mL离心管,置于装有干冰的冰桶中。将离心管中装满液氮(LN)2 直至液面接近罐口边缘,并需频繁补充液氮以保持液面接近满溢状态,直至所有细胞悬液均形成爆米花状颗粒B) 爆米花的尺寸是决定最佳研磨效率的重要因素。爆米花的直径应在0.3至0.5 cm之间。 请点击此处以查看此图的放大版本。
2. 冷冻研磨

图2:离心管中的提取物分层。 显示了细胞在16,000 g条件下离心20分钟后,离心管中全细胞提取物的主要可见特征。各组分的相对丰度取决于样本类型、细胞生长阶段(对数期 versus 稳定期)、用于重悬细胞的裂解缓冲液体积以及裂解效率。请点击此处查看此图的放大版本。
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我们比较了两种不同的酵母细胞裂解方法,即在 4 °C 下进行玻璃珠研磨和在 -196 °C 下进行自动冷冻研磨,以评估两种方法制备的细胞提取物中蛋白质回收率的差异。本研究选用芽殖酵母菌株 YAG 1177 (MAT a lys2-810 leu2-3,-112 ura3-52 his3-Δ200 trp1-1[am] ubi1-Δ1::TRP1 ubi2-Δ2::ura3 ubi3-Δub-2 ubi4-Δ2::LEU2 [pUB39] [pUB221])16,该菌株携带一个高拷贝质粒,可表达串联的 HIS-MYC 标记泛素(HIS-MYC-Ub),以便通过亲和纯化后评估提取物中带标签泛素化蛋白的回收效率。
我们测试了一种快速方案,该方案采用玻璃珠研磨法在 4 °C 下裂解酵母细胞9,以及使用冷冻酵母细胞(酵母爆米花)在液氮(LN2)中...
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研究酵母天然蛋白的一个局限性是由于酵母细胞裂解效率低下所致 其坚固的细胞壁。尽管已开发出多种方法,但在我们实践中最稳定且高效的方法是将酵母细胞快速冷冻成爆米花状后进行冷冻研磨。与其它裂解方法相比,该方法能够可靠地制备出高质量的芽殖酵母全细胞提取物。代表性结果表明,冷冻研磨在裂解酵母细胞方面优于一种常用的机械法——珠磨法(4 °C 下进行)图3A 和 3B)。在液氮(LN)中于 -196 °C 条件下处理样品时,冷冻研磨可高效裂解酵母细胞2 因此,通过极大限度地减少其他多种提取方法中常见的热诱导蛋白质变性和降解,该方法可有效维持蛋白质的完整性。这使得样品中高度不稳定的生物大分子得以分析,并可实现功能性蛋白质复合物的纯化。此外,冷冻研磨机的使用取代了传统上耗时费力的 mortar 手工研磨酵母“爆米花”的方法,使样品处理更加快速高效。最后,该方法无需使用任何昂贵的酶即可实现酵母细胞裂解,从而在长期应用中显著节约成本。
冷冻研磨机的主要缺点是购买设备的初始成本较高...
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作者无任何利益冲突需要披露。
Gunjan 实验室的研究工作得到了美国国立卫生研究院、国家科学基金会以及佛罗里达州卫生部的资助。我们感谢本科生 John Parker 提供的技术协助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 50 mL 聚碳酸酯螺口管 | 贝克曼 | 357002 | 离心管 |
| BD Bacto 蛋白胨 | BD生物科学 | 211677 | 酵母 YPD 培养基组分 |
| BD Bacto 酵母提取物 | BD生物科学 | 212750 | 酵母 YPD 培养基组分 |
| Beckman Avanti 离心机 | 贝克曼 | B38624 | 高速离心机 |
| Beckman JLA-9.1000 | 贝克曼 | 366754 | 转子 |
| D-(+)-无水葡萄糖 | MP Biomedicals | 901521 | 酵母 YPD 培养基组分 |
| Eppendorf A-4-44 | Eppendorf | 22637461 | 水平转子 |
| Eppendorf 冷冻离心机 5810 R | Eppendorf | 22625101 | 冷藏离心机 |
| 甘油 | SIGMA-ALDRICH | G5150-1GA | 排阻剂与冷冻保护剂 |
| HEPES | FisherBiotech | BP310-100 | 缓冲液 |
| HIS6 抗体 | Novagen | 70796 | HIS标签抗体 |
| KCl | SIGMA-ALDRICH | P9541-1KG | 用于维持离子强度的盐 |
| MG-132 | CALBIOCHEM | 474790 | 蛋白酶体抑制剂 |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | 赛默飞世尔科技 | A32957 | 磷酸酶抑制剂混合物 |
| Ponceau S | SIGMA | P7170-1L | 蛋白质染色 |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | 赛默飞世尔科技 | A32963 | 蛋白酶抑制剂混合物 |
| 转子 JLA 25.500 | 贝克曼 | JLA 25.500 | 转子 |
| 丁酸钠 | EM Science | BX2165-1 | 组蛋白去乙酰化酶抑制剂 |
| 氟化钠 | Sigma-Aldrich | S6521 | 磷酸酶抑制剂 |
| 钒酸钠 | MP Biomedicals | 159664 | 磷酸酶抑制剂 |
| 钠 β-甘油磷酸盐 | Alfa Aesar | 13408-09-8 | 磷酸酶抑制剂 |
| Spex Certiprep 6850 冷冻研磨机 | SPEX样品制备 | 6850 | 冷冻研磨机 |
| TALON金属亲和树脂 | BD生物科学 | 635502 | 用于下拉HIS标签蛋白 |
| Tween 20 | VWR International | VW1521-07 | 非离子型去污剂 |
| β-巯基乙醇 | AMRESCO | M131-250ML | 还原剂 |
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