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方法文章

通过胆管TNBS灌注建立小鼠慢性胰腺炎模型

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DOI:

10.3791/62080

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2021年2月28日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

慢性胰腺炎(CP)是一种以胰腺炎症和纤维化为特征的疾病,常伴有难以缓解的腹痛。本文重点优化通过胆管输注2,4,6-三硝基苯磺酸(TNBS)建立小鼠CP模型的技术。

摘要

慢性胰腺炎(CP)是一种复杂的疾病,涉及胰腺炎症和纤维化、腺体萎缩、腹痛及其他症状。已有多种啮齿类动物模型被用于研究CP,其中胆管内输注2,4,6-三硝基苯磺酸(TNBS)的模型可模拟CP中出现的神经病理性疼痛特征。然而,在小鼠中进行胆管给药在技术上具有挑战性。本方案展示了通过胆管输注TNBS建立CP小鼠模型的操作步骤。TNBS通过十二指肠乳头(Vater壶腹)注入胰腺。本方案对药物体积、手术技术以及操作过程中的药物处理进行了优化。经TNBS处理的小鼠表现出CP的典型特征,包括体重和胰腺重量下降、与疼痛相关的行为改变以及胰腺形态异常。通过这些改进,TNBS注射相关的死亡率极低。该操作不仅对于构建胰腺疾病模型至关重要,也适用于胰腺局部药物递送。

引言

慢性胰腺炎(CP)是一种慢性炎症性疾病,其特征为胰腺萎缩、纤维化、腹痛以及外分泌和内分泌功能的最终丧失1。目前的药物和外科治疗手段均无法根治该病,仅用于缓解由疾病引起的症状,如难治性腹痛、内分泌和外分泌功能障碍。因此,迫切需要更有效的治疗方法2。动物模型是深入理解该疾病机制并探索潜在治疗策略的重要工具3。目前已建立多种小鼠CP模型,其中胆囊收缩素(cerulein)模型和/或酒精模型应用较为广泛。胆囊收缩素是一种可刺激胰腺分泌的寡肽,已被证实能够稳定诱导出具有胰腺萎缩、纤维化等特征的CP模型4。另一种常用模型是连续注射L-精氨酸,可导致类似于人类患者所见的外分泌功能不全5。此外,通过完全或部分结扎胰管以及诱发胰管高压也可诱导CP的发生6,7。尽管已有多种可用于研究CP的动物模型,但目前尚无一种模型能有效模拟CP患者所经历的腹痛症状8。

既往研究表明,局部胰腺注射2,4,6-三硝基苯磺酸(TNBS)可复制慢性胰腺炎(CP)患者所经历的持续性疼痛9,10,11。经TNBS处理的小鼠表现出腹部痛觉过敏、疼痛相关行为增加,以及对疼痛刺激的"广泛性高敏感性",这一现象在CP患者中亦有观察到10。除了能准确模拟CP相关的疼痛外,TNBS模型还能复制人类疾病中的其他病理特征,如纤维化、单核细胞浸润以及腺泡细胞被脂肪组织替代10,12。然而,通过胆管输注TNBS在小鼠中是一项技术上具有挑战性的操作,可能引起动物死亡。据我们所知,目前尚无可视化操作流程展示胆管输注的具体实施方法。本文中,我们演示了通过胆管输注TNBS以建立CP小鼠模型的操作步骤。该技术将有助于生成用于研究CP及其他胰腺疾病的重要动物模型,并可用于向胰腺输注其他物质(如病毒、细胞)13。

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方案

所有实验程序均经南卡罗来纳医科大学和拉尔夫·H·约翰逊医疗中心的机构动物护理与使用委员会批准。本研究使用8至10周龄的C57BL/6J雄性小鼠。小鼠饲养于标准的12小时光照/12小时黑暗循环环境中,可自由获取食物和水。

1. 注射用TNBS溶液的制备

  1. 配制含10%乙醇的0.9%生理盐水。将TNBS储备液(见材料表)溶于10%乙醇中,终浓度为7.5 mM,方法是将7.5 µL TNBS加入1 mL 10%乙醇中。
    注意:TNBS具有化学危害性。应在通风橱内配制该溶液,并使用个人防护装备(如手套、护目镜和实验服),避免直接接触TNBS。
  2. 用31号针头的胰岛素注射器吸取50 µL 0.75% TNBS溶液。另取相同规格的注射器,吸取50 µL含10%乙醇的生理盐水作为溶剂对照。将注射器置于冰上,并避光保存,直至使用。

2. 小鼠准备与手术

  1. 剃除腹部手术区域的毛发。
  2. 术前注射一次镇痛剂(例如,腹腔注射布托啡诺 0.1 mg/kg)。
  3. 使用 1.5–2% 异氟烷和 1 L/min 氧气诱导并维持小鼠全身麻醉。通过轻捏脚趾并观察动物是否无反射反应来确认麻醉效果。
  4. 手术期间将小鼠置于加热的手术垫上。当小鼠处于麻醉状态时,在每只眼睛上涂抹兽用眼膏。
  5. 用 2% 碘伏擦拭手术区域 3 次,再用 70% 酒精脱碘,对手术部位进行消毒(材料表)。
  6. 使用显微剪刀行剖腹手术,制作 0.5–1 cm 的切口。
  7. 轻柔地暴露十二指肠,并使用棉签定位胆总管(材料表)。
  8. 在近端胆总管上方放置一个直型显微止血夹(材料表),以防止 TNBS 或溶剂溶液流入肝脏和胆囊(图 1A、B)。
  9. 轻柔地暴露十二指肠,并通过乏特氏壶腹将针头插入胰管。
  10. 当针头进入导管后,在针头周围的十二指肠部位放置一个弯型显微止血夹(材料表)(图 1A),以固定针头位置,并防止注射液进入十二指肠。
  11. 在 1 分钟内缓慢将溶液(TNBS 或溶剂)注入胰管。
    注意:TNBS 需在 1 分钟内缓慢注入,使用带有 5/16 英寸、31G 针头的胰岛素注射器灌注胰腺时,较易控制注射速度。操作时尽量保持手部稳定,避免刺破胆管。若 TNBS 注射成功,可在胰腺内观察到黄色着色。
  12. 注射完成后,先小心移除靠近肝脏侧的微型夹子,再移除固定针头和十二指肠的微型夹子。
  13. 小心地将十二指肠复位至原始解剖位置。
  14. 在关闭腹腔前,向腹腔内留置 0.5 mL 温热的无菌生理盐水(36–37 °C),以帮助十二指肠复位并促进蠕动功能恢复。
  15. 使用 5-0 缝线连续缝合肌肉层,再使用 4-0 缝线间断缝合皮肤。
  16. 将装有小鼠的笼子放置在加热垫上,以便其从麻醉中恢复。
  17. 确认小鼠体温正常且能够自主活动后,再将其送回饲养室。
  18. 术后 48 小时内每 12 小时给予一次镇痛剂(例如,腹腔注射布托啡诺 0.1 mg/kg),并持续提供辅助加热。

3. 监测小鼠行为

  1. 术后第7天拆除缝线。
  2. 术后第一周内每天监测小鼠的健康状况和行为,观察是否存在痛苦迹象,如发声、弓背姿势或活动减少。每隔一天测量一次体重。
  3. 使用Von Frey单丝纤维(VFFs)在术前以及术后2周和3周检测腹部机械性痛觉过敏,方法如下9,14。
    1. 按照施加力由小到大的顺序,将不同强度的VFFs以1–2秒间隔在上腹部区域各刺激10次。若出现腹部抬起、回缩或舔舐(缩腹反应),则视为阳性反应。
    2. 若未观察到阳性反应,则改用更强的刺激;若观察到阳性反应,则改用更弱的刺激。缩腹阈值定义为小鼠在50%的刺激次数中产生反应时所对应的力值。

4. 胰腺组织的采集与组织学分析

  1. 在麻醉条件下通过颈椎脱位处死小鼠,并小心地从肠道及其他器官中分离胰腺。
  2. 将胰腺置于10%多聚甲醛中固定24小时,经石蜡包埋后切成5 µm厚的组织切片,并置于载玻片上用于染色。
  3. 采用已有文献报道的标准方法进行苏木精-伊红染色和马松三色染色4。

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结果

为了降低与该操作相关的实验小鼠死亡率,对胆管灌注步骤进行了优化10。TNBS 首先以 35 μL 或 50 μL 的总体积给予。使用 50 μL 体积注射 TNBS 可以覆盖整个胰腺,并诱导出更为均一的疾病表型(图 1B)。此外,使用配备 31G 针头的胰岛素注射器注射 TNBS 相较于常规注射器和针头能够更精确地控制灌注速度。相较于配制超过一小时的 TNBS,新鲜配制并在冰上保存、一小时内使用的 TNBS 可获得更佳的实验效果。通过上述改进,受体小鼠的死亡率得以控制,始终低于 10%。

体重减轻是慢性胰腺炎(CP)的特征之一。对照组小鼠在术后前3天内体重减少了约6%,随后逐渐恢复(第21天时达到原始体重的104.6%)(图1C)。相比之下,接受TNBS处理的小鼠在前5天平均体重减轻约15%,之后体重逐渐回升(第21天时为原始体重的99.8%)(图1C)。此...

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讨论

经胆管灌注TNBS诱导小鼠慢性胰腺炎在技术上具有挑战性,因为药物灌注后3-4天内最多可达22.5%的小鼠死亡10本研究在先前研究的基础上优化了实验步骤,显著降低了小鼠的早期死亡率 <10%。例如,增加药物体积(从35 μL增至50 μL)可确保药物到达 整个胰腺。使用胰岛素注射器和较小的针头(31G)可减少对胰管的潜在损伤,以及胆汁泄漏至胆囊或腹腔的风险,后者极有可能导致小鼠在术后最初几天内死亡。夹闭胆管两端可防止TNBS泄漏至胆囊和肠道,从而避免可能的死亡风险。血管夹可将TNBS限制在注射的胰腺内,提高造模效率的同时减少对其他组织的损伤。此外,TNBS在高于0 °C的温度下不稳定,因此使用新鲜配制的TNBS可使慢性胰腺炎(CP)的诱导获得稳定的结果。

该方案可有效诱导8至12周龄雄性C57BL/6J小鼠产生CP 并生成一种模拟慢性胰腺炎主要症状的模型,包括体重减轻、胰腺萎缩、纤维化以及可能的腹痛。与其他慢性胰腺炎小鼠模型相比,TNBS模型除用于评估炎症外,还被广泛用于评估镇痛效果

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披露

所有作者均声明不存在利益冲突。

致谢

本研究由美国退伍军人事务部(VA-ORD BLR&D 优秀奖 I01BX004536)以及美国国立卫生研究院资助项目 # 1R01DK105183、DK120394 和 DK118529(资助予 HW)支持。我们感谢吴红菊博士分享技术经验。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10% 中性缓冲福尔马林(v/v)Fisher Scientific23426796
酒精消毒片,无菌Fisher Scientific22-363-750
动物麻醉系统VetEquip, Inc.901806
盐酸布托啡诺注射液Par Sterile Products, LLCNDC 42023-179-05
离心管,15 mLFisher Scientific0553859A
无水乙醇(200 proof),分子生物学级Fisher ScientificBP2818500
超细显微解剖剪,4” 直头尖锐Roboz Surgical Instrument Co.RS-5882
Graefe 镊子,4” 超精细尖端Roboz Surgical Instrument Co.RS-5136
加热垫AmazonB07HMKMBKM
Hegar-Baumgartner 持针器,5.25”Roboz Surgical Instrument Co.RS-7850
胰岛素注射器,带 31 号针头BD324909
碘伏消毒片Fisher Scientific19-027048
异氟烷Piramal Critical CareNDC 66794-017-25
微型夹施加镊,5.5”Roboz Surgical Instrument Co.RS-5410
微型夹,直型强弯,1×6 mmRoboz Surgical Instrument Co.RS-5433
微型夹,直型,夹宽 0.75 mmRoboz Surgical Instrument Co.RS-5420
苦味酸磺酸溶液(TNBS),H2O 中 1 MMillipore Sigma92822-1ML
聚丙烯缝线 4-0Med-Vet InternationalMV-8683
聚丙烯缝线 5-0Med-Vet InternationalMV-8661
氯化钠,0.9% 静脉注射液VWR2B1322Q
手术巾,无菌Med-Vet InternationalDR1826
组织包埋盒Fisher Scientific22-272416
von Frey 纤维丝BiosebEB2-VFF

参考文献

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