本文旨在介绍一种基于超声成像的方法,该方法能够 体内 小鼠脑动脉血流成像。我们展示了该技术在蛛网膜下腔出血(SAH)小鼠模型中用于测定与血管痉挛相关的血流速度变化的应用。
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本文旨在介绍一种基于超声成像的方法,该方法能够 体内 小鼠脑动脉血流成像。我们展示了该技术在蛛网膜下腔出血(SAH)小鼠模型中用于测定与血管痉挛相关的血流速度变化的应用。
蛛网膜下腔出血(一种出血性卒中)后数周内发生的脑血管痉挛,可导致迟发性脑缺血。在采用小鼠蛛网膜下腔出血模型进行实验研究时,面临的一个问题是现有方法在 体内 监测小鼠脑血管痉挛的方法尚不完善。本文展示了应用高频超声对小鼠进行经颅双功能多普勒超声检查的技术。利用该方法可识别出颈内动脉(ICA)。蛛网膜下腔出血(SAH)诱导后,颅内段ICA的血流速度显著增快,而颅外段ICA血流速度保持较低水平,提示发生脑血管痉挛。综上所述,本研究所展示的方法可实现功能性的、非侵入性 体内 监测小鼠蛛网膜下腔出血模型中的脑血管痉挛
自发性蛛网膜下腔出血(SAH)是一种出血性卒中,主要由颅内动脉瘤破裂引起1。其神经功能预后主要受两个因素影响:早期脑损伤(EBI),由出血本身及其引起的短暂性全脑缺血所致;以及迟发性脑缺血(DCI),发生在出血后的数周内2,3。据报道,高达30%的SAH患者会出现DCI2。DCI的病理生理机制包括血管造影可见的脑血管痉挛、由微血管痉挛和微血栓形成导致的微循环障碍、皮质扩散性抑制以及炎症反应所引发的一系列效应4。遗憾的是,目前DCI的确切病理生理机制尚不明确,且尚无有效预防DCI的治疗方法3。因此,DCI已成为众多临床和实验研究的重点对象。
目前,大多数关于蛛网膜下腔出血(SAH)的实验研究均采用小型动物模型,尤其是小鼠5,6,7,8,9,<....
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动物实验经负责的动物护理委员会(Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz)批准,并依照德国《动物福利法》(TierSchG)进行。本研究遵循所有适用的国际、国家和机构关于动物护理与使用的指南。在本研究中,我们对11至12周龄、体重在19至21 g之间的雌性C57BL/6N小鼠的颅内和颅外动脉血流速度进行了测量。小鼠接受了SAH诱导或假手术处理,相关操作已在其他文献中详细描述10,12,13。
1. 材料准备
2. 麻醉
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在6只小鼠中,其中3只通过血管内丝线穿孔法诱导蛛网膜下腔出血(SAH),另外3只接受假手术,分别于术前1天以及术后1、3和7天测定颅内颈内动脉(ICA)和颅外颈内动脉的血流速度。测量作为另一项研究中经胸超声心动图检查的一部分,在异氟烷麻醉下进行,同时将体温维持在37 °C19。
术前,SAH 动物与假手术动物的颅外和颅内血流速度以及颅内与颅外血流的比值相似。SAH 诱导后的第一天,颅内和颅外血流速度或颅内与颅外血流的比值均无显著变化。
在第3天和第7天,2只蛛网膜下腔出血(SAH)动物的颈内动脉(ICA)颅内血流速度明显升高,提示SAH后出现脑血管痉挛。由于颅外血流速度基本保持不变,SAH动物在第7天的颅内/颅外血流速度比值也显著升高,提示存在脑血管痉挛。
颅内和颅外ICA的代表性双功能超声多普勒记录如图所示 图1血流速度的变化过程如图所示
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据我们所知,本研究首次提出了一种利用高频经颅彩色多普勒超声在小鼠蛛网膜下腔出血(SAH)模型中监测脑血管痉挛的实验方案。我们证实,该方法能够检测到小鼠在诱导SAH后颅内血流速度的升高。在人类医学中,这一现象已被广泛认知3,15。多项临床研究显示,颅内大动脉的血流速度升高以及颅内与颅外血流速度比值的增加,是血管狭窄的功能性表现,并与血管造影所见的血管痉挛相关(详见综述15)。因此,在临床实践中,通常采用经颅多普勒超声(TCD)或经颅彩色多普勒超声(TCCD)对SAH后脑血管痉挛进行无创性床旁监测3,15。
DCI 是影响非创伤性蛛网膜下腔出血(SAH)后神经功能预后的重要因素2,3。由于 .......
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作者声明无竞争利益。
作者谨此感谢Stefan Kindel为视频中插图的准备工作。PW、MM和SHK的研究得到了德国联邦教育与研究部(BMBF 01EO1503)的支持。本工作还获得了德国研究基金会大型仪器资助项目(DFG INST 371/47-1 FUGG)的支持。MM还获得了Else Kröner-Fresenius基金会资助(2020_EKEA.144)的支持。
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