本文介绍了在Diamond光源I24线站进行序列同步辐射晶体学实验的固定靶样品制备、数据收集和数据处理的综合指南。
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本文介绍了在Diamond光源I24线站进行序列同步辐射晶体学实验的固定靶样品制备、数据收集和数据处理的综合指南。
序列数据收集是同步辐射用户相对较新的技术。本文提供了在Diamond Light Source的I24线站进行固定靶标数据收集的用户手册,包含详细的分步操作说明、图示和视频,以确保数据收集过程顺利进行。
同步辐射序列晶体学(serial synchrotron crystallography, SSX)是一种新兴的数据收集方法,其灵感来源于X射线自由电子激光(XFEL)1,2,3。在XFEL中,通常从一个非常微小的 蛋白质晶体上记录单张衍射图样,随后晶体即被极强的X射线脉冲摧毁。这意味着,通常需要将新的晶体不断引入X射线束中,以获取下一张衍射图样4。这种持续补充晶体的需求推动了多种序列样品递送技术的发展5。
在同步辐射装置中,经典的(非序列式)旋转晶体学方法被广泛应用,该方法利用单个大尺寸晶体,通过测角仪将其在X射线束中旋转,从而收集完整的数据集以解析结构6。为了延长晶体的寿命,使其能够收集完整的数据集7,8,并便于运输和自动化样品转移,通常在约100 K的低温下对晶体进行冷冻处理以用于数据收集。在高强度微聚焦光束线上,由于辐射损伤可能阻碍从单个晶体获得完整数据集,因此经常采用多晶体策略9,10,11。尽管辐射损伤带来了限制,所使用的晶体数量仍然相对较少,且所采用的方法本质上与单晶实验相同。
另一方面,SSX 采用连续样品递送方式,从数千个随机取向的晶体中获取单张静态衍射图样,从而生成完整的数据集。需要注意的是,结合晶体旋转的连续技术正在开发中12,13 ,但本文重点讨论静态、无旋转的方法。目前存在多种样品递送系统,各有优缺点14,包括通过聚焦流动/高黏度喷流递送晶体流15,16,17、微流控芯片18,19,或使用固定靶(如刻蚀硅芯片)承载晶体20,21。通常情况下,晶体在室温下保存,这有助于观察更广泛的构象多样性,并提供更接近生理状态的环境22。SSX 能够采集极低剂量的数据集23,因为整个数据集的总辐射剂量相当于对单个晶体进行一次短暂的X射线曝光。SSX 的另一大优势在于可通过时间分辨方法研究蛋白质动力学,反应可通过激光照射24,25,26,27或晶体与配体/底物混合来触发28,29。使用更小的晶体意味着激光能够完全穿透晶体,均匀地启动反应,避免多光子吸收,从而在不同时间点采集到定义明确的反应中间体的衍射数据27。相比之下,使用较大晶体和基于旋转的数据采集方法受限于激光穿透深度有限、激活不均匀或多光子效应、辐射损伤以及数据扫描过程中的机械延迟时间,导致反应中间体混合,难以甚至无法在较快反应速度下进行解析。在混合实验中,较小的晶体同样具有优势,因为配体可以更快且更均匀地扩散至整个晶体,从而在不同时间延迟下记录到明确的反应中间体30,31,32。
在 Diamond 同步辐射光源的微聚焦光束线 I24 上,既可以进行常规旋转晶体学实验,也可以开展串行晶体学(SSX)实验。本文提供了在 I24 光束线上使用固定靶进行 SSX 样品制备和数据收集的全面实验方案,以及 Diamond 光源处串行数据处理的分析流程。尽管本文及配套视频可帮助用户在 I24 成功实施 SSX 实验,但需注意该领域发展迅速,相关方法正在持续演进。此外,串行方法也可在其他同步辐射光源上实现,包括但不限于 Petra III(P14-TREXX)、MAX IV(BioMAX)33、SLS(PXI 和 PXII)34 以及 NSLS(FMX)35。尽管不同光源在串行数据收集与处理的具体细节上会有所差异, 其核心原理保持一致。以下所述方案应被视为开展工作的起点,是通往可能成就的“大本营”之路,而非最终顶峰。
本方案假设使用者已具备蛋白质或小分子晶体体系,并已制备出体积约为0.5–2.0 mL的微晶悬液,且每毫升悬液中含有较高密度的微晶。获取晶体悬液的方案已有报道。 如前所述 36有多种不同类型的固定靶可供使用,I24线站最常用的是精确定义的硅芯片。为了区别于其他芯片布局,下文及光束线界面中将其称为“牛津芯片”。如前所述,牛津芯片布局包含8×8个“街区”,每个街区含有20×20个孔径,总计25,600个孔径。20,21.
1. 芯片的准备与加载
注意:该过程需在湿度可控的环境中进行(图1),通常相对湿度保持在80%至90%或更高,以防止蛋白质晶体干燥。一旦装载并密封,晶体可存活24小时以上。然而,不同晶体系统之间可能存在显著差异。在样品腔内,需要配备连接至装载台的低功率真空泵以固定硅芯片(图1)、硅芯片、带聚酯薄膜的芯片架(图2)、P200移液器、200 µL移液器吸头、镊子、滤纸以及蛋白质晶体悬液。
2. 光束线处的图形用户界面与设置
3. 芯片的对准
4. 设置数据采集
注意:数据采集设置将取决于所研究的系统及拟进行的实验。这可能包括从最简单的SSX实验(收集低剂量结构)到使用激光或快速混合技术启动反应的时间分辨实验(需要在不同时间延迟下采集多个完整的数据集)。为设置数据采集,需定义以下参数。
5. 常见的数据收集方法
注意:以下是定义所进行实验类型的几个关键参数。本节假设已设定协议 3 "设置数据采集" 中的其他参数。
6. 数据处理
注意:从广义上讲,数据处理可根据反馈所需的紧迫性分为三类。第一类需要快速反馈,以判断晶体是否存在及其衍射情况,以及衍射晶体的数量,此类处理应能跟上数据采集的速度。第二类包括数据指标化(indexing)和积分(integration),速度可稍慢,但仍需在与数据采集相当的时间尺度内完成。第三类是将衍射强度合并和标度,生成用于结构解析的 mtz 文件以及电子密度图,属于最后一步,允许更慢的处理速度。本文仅讨论 I24 线站前两个阶段的初始处理流程,因为它们对于提供实时反馈以指导实验至关重要。但需注意,诸如命中率(hit-rates)和标度统计(scaling statistics)等指标并不能替代对电子密度图的直接观察,后者可能是确认配体结合或原位(in crystallo)反应发生的唯一依据。
低剂量数据采集与系列实验
在 I24 线站上对亚硝酸盐还原酶微晶进行了低剂量(步骤 5.1:情景 1)和剂量系列(步骤 5.2:情景 2)数据采集,相关数据此前已发表42。所有样品均按照步骤 1 所述方法制备,数据采集依照步骤 3、4 和 5 进行,并采用步骤 6 中的方法进行处理。本研究中,在每个光阑位置快速采集一系列剂量数据,每个位置采集 20 张衍射图像(即上述数据采集图形用户界面中的 n=20),然后转移至新的样品区域。根据这些数据,发现空间群为 P213 的晶胞呈现双峰分布(a = b = c = 97.25 Å,以及 a = b = c = 96.38 Å)。在数据处理过程中识别并分离这两种晶胞多态形式后,数据质量指标显著提升,并揭示了残基 189–193 之间一个柔性环的两种不同构象,而若将所有数据合并处理则仅观察到混合状态。此类多态形式的识别在精细的时间分辨结构研究中可能至关重要,因为在这些研究中仅预期存在微小的结构变化。此外,剂量系列实验还揭示了晶体中晶胞参数随辐射剂量增加而发生依赖性变化,较高剂量下较大晶胞的占比逐渐升高。
Ebrahim 等(2019)47 也开展了类似工作,其中从天蓝色链霉菌(Streptomyces lividans)的一种染料型血红素过氧化物酶(DtpAa)采集了剂量系列数据(步骤 5.2:情景 2),以将来自 SSX(步骤 5.1:情景 1)的低剂量结构与在同一固定靶系统中使用 SFX 测量的结构进行比较。SFX 数据在 SACLA 光束线 BL2 EH3 上采集,脉冲长度为 10 飞秒,重复频率为 30 Hz。10 飞秒的脉冲持续时间确保了 SFX 数据中不存在剂量依赖性效应。SFX 数据与在光束线 I24 上采集的 SSX 数据进行了比较,其中在每个样品位置测量了 10 次连续的 10 毫秒曝光(即 n=10)。在 SSX 剂量系列中观察到血红素铁配位水分子从铁原子迁移的剂量依赖性现象,以及血红素丙酸盐基团之一的构象变化。尽管该结构不像 SFX 结构那样无损伤,但通过剂量系列可外推出零剂量数据集(高铁血红素)的 Fe-O 键长,该值在实验误差范围内与 SFX 获得的结果一致。
本文所述的序列晶体学数据收集方法也可轻松调整,以提供新的样品环境,例如用于在室温下研究厌氧蛋白质结构。正如 Rabe et al 202048 中所述,在厌氧环境中使用不同的密封膜对“片上叠片”样品(即无芯片的芯片)进行装载,可实现对氧气敏感样品的室温结构数据收集。
泵浦-探测
尽管以下代表性结果并非在Diamond I24线站采集,但这些方法是在iNEXT项目各设施之间密切合作下开发的,旨在推动序列晶体学方法开发中的标准化流程。I24线站目前或即将提供与下文所述相当的数据采集方法,可用于采用上述实验方案中所描述的技术开展此类实验。
泵浦-探测:快速混合
Mehrabi 等人(2019)在 PETRA III 的 T-REXX 光束线上利用压电驱动的液滴注射器在固定靶上启动反应,实现了快速混合SSX28。该研究展示了一项基于芯片混合实验的原理验证,即将 GlcNac3 结合到溶菌酶微晶上,在向样品施加75 pL液滴后50 ms内即发生结合。随后,该方法被用于木糖异构酶活性的时间分辨研究,获得了包含7个结构的时间序列,结果显示葡萄糖在15 ms内发生结合,并在60秒的时间延迟后形成葡萄糖分子的开环构象。目前,一种用于液滴注射的等效装置正在为I24线站开发中。
泵浦-探测:光激活
Schulz 等人(2018)49 报道了一项光激活的泵浦-探测序列实验。将氟乙酸脱氢酶浸泡在光笼型氟乙酸中,并用 320–360 nm 激光照射,获得了四个时间点(t = 0、30、752 和 2,052 ms)的结构。静息态结构(0 ms)显示活性位点为空,仅存在少量水分子,且两个蛋白亚基的帽状结构域之间的电子密度相当。光激活后 30 ms 和 752 ms,相对于亚基 A,亚基 B 帽状结构域中的电子密度显著降低。亚基 B 帽状结构域中电子密度的降低与 752 ms 时氟乙酸在亚基 A 活性位点的出现相吻合。在 2,052 ms 获得的最终数据集显示配体发生了进一步的结构重排,推测这有助于形成适合 SN2 攻击的正确几何构型,并可能形成了反应中的中间态。在 I24 线站,可使用便携式 Pharos 激光系统进行光激活,该系统波长可调范围为 210–2500 nm,可提供飞秒脉冲。初步实验表明,使用 308 nm 激发成功解笼了光笼分子,并观察到释放出的配体与靶标蛋白结合。撰写本文时,该系统正持续集成至光束线人员安全系统中,预计于 2021 年初可开展常规用户实验。对于需要较弱光脉冲的实验,已成功采用 TTL 控制的 LED 进行光激活。

图1:在Diamond Light Source处安装就位的样品加载设备。该装置包括一个真空泵(a)、手套箱(b)和加湿器(c)。在手套箱内,通过连接至旋塞阀(g,蓝色箭头)的压力调节器(f,黄色箭头),将真空压力作用于装载有晶体悬浮液的芯片,该芯片固定在样品块(d)中,并连接至布氏烧瓶(e,绿色箭头)。加湿空气通过连接至加湿器(h)的塑料管泵入帐篷内,并使用湿度计(i)进行测量。各组件通过铁架台(j)固定位置。请点击此处查看此图的放大版本。

图2:样品架。 样品架利用金属O形环(a)将聚酯薄膜夹紧在上半部分(b)和下半部分(c)之间,其中下半部分配有磁性底座(d),用于将样品架固定在样品台上。所用聚酯薄膜厚度为6 µm(e)或3 µm(f),并配有橡胶O形环(白色箭头所示),可防止载有晶体的芯片在用六角螺栓(g)紧密封闭的样品架中快速干燥。芯片依次在dH2O、1 M HCl和dH2O中各清洗15分钟(h)。 请点击此处查看此图的放大版本。

图 3:I24 线站固定靶标数据采集的图形用户界面(GUI)。 (a)显示用于芯片对准及定义数据采集参数的主界面,(b)为用于定义芯片上子区域以进行数据采集的简化映射界面,(c)为定义激光照射参数的界面。请点击此处查看此图的放大版本。

图4:按照步骤3第1点所述,将芯片支架安装到载台上的过程。 请点击此处查看此图的放大版本。

图 5:芯片对准。通过点击芯片上显示的三个基准标记进行芯片对准,如(a)所示。通过光束线同轴观测系统观察基准点 0、1 和 2 的视图分别如(b)、(c)和(d)所示。请点击此处查看此图的放大版本。

图6:如步骤6.1所述启动的自动处理结果界面。 实时更新的命中率曲线图被显示(a,插图)。若点击某一“命中”点,则对应的衍射图像将在dials图像查看器中显示。当前数据收集的命中率已显示(本示例中为29.6%)。面板(b)展示了一个窗口示例,显示本次实验期间截至目前所收集数据的实时更新的指标化和积分速率。请点击此处查看该图的放大版本。

图7:更深入的数据分析。 晶胞参数的可视化可揭示多晶型的存在(a)。目前可计算平均晶胞参数,但尚不能针对不同多晶型分别计算其平均值。对一小部分数据进行可视化(图中数据为Ebrahim et al 2019年所述数据中793个亚硝酸盐还原酶铜晶体的子集)通常已足以揭示趋势。还可生成有用参数的二维图,以揭示因加样或脱水效应引起的变化,从而为后续数据采集提供优化依据(b)。取向图(极图投影)可揭示晶体是否存在择优取向,进而反馈至加样流程的改进(c)。 请点击此处查看该图的放大版本。
序列同步辐射数据采集是一种在MX光束线上相对较新的技术,它填补了目前在XFEL上进行的超快数据采集与传统的基于同步辐射的MX之间的空白。本文旨在概述如何在中国台湾光源I24光束线上成功采集固定靶序列数据,用于低剂量、剂量序列以及时间分辨实验。与标准晶体学一样,样品制备是结构解析中的主要瓶颈。序列晶体学(SSX)也不例外,制备足量且均一的晶体悬浊液尚未像大尺寸单蛋白晶体的生长那样受益于数十年的研究与优化。然而,这些悬浊液的制备不在本文讨论范围之内,已在其他文献中进行了总结36。本文所述方法的关键步骤在于,利用易于操作的图形用户界面(GUI)(步骤3)和自动化的数据处理流程(步骤6),对芯片加样(步骤1)及实验的后续进行提供指导,从而谨慎高效地使用有限的样品。
快速反馈管道是一种强大的工具,可让用户在数据收集中评估初始命中率,从而为后续芯片加样方案提供依据,以确保数据收集的成功。当命中率较低时(<5%),用户可能会因数据收集不完整和/或需要额外收集而浪费同步辐射机时。此时,可将样品合并,通过温和离心进行浓缩,和/或在步骤1.5中加载更大体积的样品。较高的命中率通常更有利,但当载样量过高时会出现收益递减现象,即导致同一孔中出现多个晶体。DIALS 能够处理多晶格衍射数据50,但相较于索引与整合,更令人担忧的是晶体聚集对晶体均匀激活所造成的不利影响,例如在需要精确时间分辨的实验中,激光照射或快速混合时晶体的激活会因此变得不均匀。需特别注意 因此,在时间分辨实验中应避免使固定靶过载。
索引与积分处理步骤生成一幅图,其中心十字代表光束方向,每个点代表单个晶格的 hkl 001 衍射面方向,圆的外环代表距离光束轴 90° 的旋转范围。该图可显示晶体是否存在择优取向,这可能影响数据的完整性,并提示需要收集更多数据或调整上样方案。在 图7c 的左侧面板中,展示了在芯片上过量加载 HEWL 晶体所造成的影响。当孔径中填入过多晶体时,它们会附着在孔径的倾斜侧壁上,而非以随机取向楔入孔底。两个正交的椭圆是晶体位于芯片内壁上的结果,这些内壁与光束方向呈约 35° 夹角。这会减少所加载晶体的有效体积,降低命中率,并显著降低处于这些择优取向晶面的晶体比例。
需要注意的是,I24 光束线上还提供其他序列化方法,例如 LCP 挤出器和微流控芯片。这些方法使用类似的图形用户界面(GUI)和相同的处理流程,因此即使采用不同的技术,上述大部分内容仍然适用。除本文所述的固定靶方法外,针对 SSX 和 SFX 已存在多种序列化方法,每种方法在不同实验条件和所用光束线的情况下各有优势。由于序列化方法发展迅速,建议在规划机时的早期阶段,及时查阅光束线网页(https://www.diamond.ac.uk/Instruments/Mx/I24.html)以获取最新信息,并尽早与光束线工作人员沟通。I24 光束线对常规实验和序列化实验的使用均免费。对于英国和欧盟用户,部分差旅与住宿费用可通过 iNEXT Discovery 资助覆盖。
本工作由欧洲委员会“地平线2020”计划资助的iNEXT-Discovery(资助号871037)支持。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 芯片架 | 定制构建 | N/A | 自制的定制金属芯片支架,由2个磁性底板、2个金属环和一个运动学支架组成。 |
| 无芯片芯片垫片 | SWISCII | N/A | LCP模块化系列产品中的LCP粘合片 |
| Geobrick LV-IMS-II | Delta Tau | N/A | A 多轴控制器/放大器,配备定制的Diamond Light Source硬件配置 |
| 运动学支架 | ThorLabs | KB25/M | 带有三个呈三角形排列磁铁的方形底座固定在芯片支架上。 |
| KNF Laboport 真空泵 | 默克 | Z262285-1EA | 固体聚四氟乙烯真空泵,抽速为10升/分钟。 |
| Mylar 薄膜 6 µm | Fisher Scientific | 15360562 | 6 密耳厚度的 300 英尺卷装膜 µSPEX SamplePrep 生产的 1.25 微米厚聚酯 X 射线荧光薄膜 |
| Mylar 薄膜 3 µm | Fisher Scientific | 04-675-4 | 300英尺长的3号卷 µm 厚的 Mylar XRF 薄膜(由 SPEX SamplePrep 生产) |
| Pelco easiGlow 电晕放电系统 | Ted Pella, INC. | 91000 | 一种用于产生亲水性表面的紧凑型独立辉光放电系统 |
| 硅芯片 | 南安普顿大学 | N/A | 定制蚀刻硅芯片,带有256,000个孔径,提供多种尺寸选择。 |
| 翻译阶段 | Smaract | N/A | XYZ样品台是由Diamond Light Source与SmarAct合作设计,由SmarAct定制制造,采用三个线性平移行程为50 mm的运动台、精密交叉滚柱导轨以及集成传感器,分辨率高达1 nm |
| 1byOne 加湿器 (701UK-0003) | 1byOne | B01DENO0EQ | 市售1.3升超声波加湿器 |
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