方法文章

防治咖啡果小蠹 Hypothenemus hampei 的控制药剂与杀虫剂测试方法

1.8K 次观看

DOI:

10.3791/63694

2022年3月23日

本文内容

摘要

建立了一种利用绿色咖啡果实(GFs)检测杀虫剂对咖啡果小蠹(CBB)毒性的方法。在CBB侵染前或侵染后,将杀虫剂或有毒物质施用于已消毒的GFs上。评估了昆虫死亡率、驱避性、繁殖能力以及其他相关参数。

摘要

在推荐使用杀虫剂防治咖啡果小蠹(CBB)Hypothenemus hampei之前,了解这些杀虫剂对成虫的致死作用和驱避效应,或其对繁殖能力的影响具有重要意义。然而,目前可用的方法仅评估成虫死亡率,这限制了具有不同作用机制的新型杀虫剂的筛选。本研究通过考察多种实验方法,旨在鉴定在实验室条件下对CBB产生的多种影响。为此,采集青咖啡果实(GFs),通过浸泡于次氯酸钠溶液并辅以紫外光照射进行消毒。同时,来自种群的CBB成虫也通过浸泡于次氯酸钠溶液进行消毒。为评估果实保护效果(预防侵染),将果实置于塑料盒中,并施用杀虫剂,随后以每颗青咖啡果实释放2只CBB成虫的比例放入成虫。将青咖啡果实置于受控环境下培养,并在1、7、15和21天后评估CBB的侵染情况和存活率。为评估CBB侵染后果实上杀虫剂的防治效果(后侵染处理),将CBB成虫以2:1的比例释放至青咖啡果实中,在21 °C下持续3小时。选择侵染后CBB成虫腹部部分外露的果实,将其置于96孔板架中,并对正在钻入果实的CBB个体进行直接处理。20天后解剖果实,记录每颗果实内CBB各生物学阶段的情况。青咖啡果实作为基质,可模拟自然条件,用于评估对CBB具有毒性、化学性和生物性的杀虫剂效果。

引言

咖啡果小蠹(CBB),Hypothenemus hampei,于1988年首次在哥伦比亚被发现,现已成为咖啡作物最重要的害虫种类。雌性CBB在已受精的状态下离开其出生的果实,依靠果实释放的挥发性化学物质寻找新的果实1,2。在25 °C温度条件下,其完整生活周期为23天3。该周期始于“奠基雌虫”钻入种子并在果实质体中产卵。孵化出的幼虫以种子为食。若在此阶段解剖果实,可同时观察到奠基雌虫及其后代。14 天后,幼虫化蛹,通常蛹期持续5天。成虫阶段,雌虫与兄弟交配,新受精的雌虫随后飞离受害果实,寻找新的咖啡果实以开启下一个生活周期4

幼虫的侵入过程及其取食活动均会损害咖啡种子,降低咖啡饮品的品质,并显著减少经济收益;咖啡种植园中虫害发生率超过5%通常被视为经济阈值。

玉米根叶甲(CBB)的防治基于综合害虫管理(IPM)策略,包括农业生态控制和农艺措施、天然生物防治因子,以及在安全条件下及时使用化学杀虫剂4

为了评估新型杀虫剂对咖啡果小蠹(CBB)的防治效果,需要采用低成本的方法以快速获得结果。目前使用的实验室和田间方法包括:含有咖啡的人工饲料,其中掺入杀虫剂5,6, ,或在干燥的咖啡羊皮层上喷洒杀虫剂7,8,9。此外,已有研究报道在田间利用包裹昆虫学套袋的咖啡树枝条开展实验10,11;然而,这些方法需要大量人力投入且评估周期较长。

一种类似于自然田间条件且快速、低成本的方法是使用绿色或成熟的咖啡果实。然而,这些果实必须在适合咖啡果小蠹(CBB)发育的条件下保存,同时避免微生物引起的改变和污染,以维持其品质和特性。为此,已采用多种消毒剂以及涉及热处理和辐射的处理方法7,9,12,13,14,15,16

此外,针对咖啡果小蠹(CBB)的杀虫剂评估方法需要模拟成年雌虫寻找果实或侵入果实的过程17,18。为此,已在田间开展人工果实侵染实验8,11,19,但该过程劳动强度大,且受环境条件影响。

本文介绍了一种标准化方法,用于在模拟田间条件的受控环境条件下,评估对中枢神经系统(CBB)具有不同影响的产品。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

注意:本方案介绍了在实验室条件下识别对CBB产生不同影响的多种方法。

1. 果实采集

  1. 清晨时分,在咖啡种植园中选择开花后发育年龄约为120至150天的绿果。

2. 果实消毒20

  1. 将约300个火龙果带入实验室。选择大小均匀且健康的火龙果,并切除果柄。
  2. 将火龙果浸入肥皂液(2 mL 液体洗洁精溶于998 mL 自来水中),随后轻轻揉搓清洗。然后用清水冲洗果实,每次更换清水,共冲洗三次。
  3. 将火龙果浸入0.5%次氯酸钠溶液(100 mL 次氯酸钠加入900 mL 自来水中),在摇床中以110 rpm振荡处理15分钟。随后在摇床中用清水搅拌冲洗,每隔10分钟更换一次水,共更换三次。
  4. 用无菌纸巾将火龙果表面擦干。
  5. 将火龙果放置于托盘(33 cm × 25 cm × 2 cm)中,在具备紫外功能的水平层流洁净台内,使果实与紫外光源保持55 cm距离,照射15分钟。
  6. 在照射期间,每隔5分钟翻动一次火龙果,以确保整个果实表面均得到充分照射。

3. 昆虫消毒21

  1. 使用当天羽化的咖啡果小蠹(CBB)昆虫进行生物测定实验。
  2. 将咖啡果小蠹(CBB)浸入0.5%次氯酸钠溶液中,用刷子缓慢搅动10分钟。
  3. 用棉布过滤咖啡果小蠹(CBB),并用无菌蒸馏水洗涤三次。
  4. 用无菌纸巾吸去多余的水分。

4. 对具有果实保护作用的产品进行评价(接种前处理)图1

  1. 每个实验单元使用一组咖啡果蛀虫(GFs)。通常,每个实验单元使用30只GFs。
  2. 将GFs放入塑料盒中(实验单元)。
  3. 施用不同浓度的待测产品进行评估。使用便携式喷雾装置进行施药。本实验中测试了5%和6%的生物碱乳剂。
  4. 作为对照,用清水喷洒一组GFs。
  5. 每种处理至少设置三个重复(实验单元),依次进行喷雾处理。
  6. 在无菌操作台内,向每只GFs释放两只咖啡果小蠹(CBB)成虫(共向塑料盒中引入60只CBB)。30分钟后,盖上盒盖。
  7. 将装有感染GFs的塑料盒置于室内或培养箱中,在受控条件下(黑暗环境,25 ± 2 °C,相对湿度71% ± 5%)培养。
  8. 在接种后第1、7、15和21天,统计每个盒中被蛀果实的数量以及果实外的活虫和死虫数量。
  9. 接种后20天,使用体视显微镜(放大倍数10倍)解剖每一颗GFs。
  10. 统计每颗果实中健康种子或被昆虫破坏的种子数量。
  11. 统计观察到的CBB不同生物学阶段22,并记录每粒种子中死虫的数量,以确定每个实验单元的昆虫死亡率。

5. 产品在CBB侵害后(侵害后)的效果评估 (图3)

  1. 每种处理使用200个果实作为一组。
  2. 在无菌操作台中,将咖啡果小蠹成虫(咖啡果小蠹成虫与绿果的比例为2:1)释放到预先消毒的绿果中,在21 °C条件下让其侵染3小时。
  3. 检查绿果;3小时后,大多数绿果应已被侵染,咖啡果小蠹的腹部仍外露(位置A20),如图2所示。
  4. 选取46个已被侵染的绿果(处于位置A),放入96孔塑料架中(作为实验单位)。果实应保持该位置,以便将处理药剂直接喷洒到正在钻入果实的咖啡果小蠹上。
  5. 每种处理至少重复三次(三个架子),依次进行喷洒,并在30分钟后覆盖架子。
  6. 将带有被侵染绿果的架子置于环境可控的房间或培养箱中(黑暗条件,25 ± 2 °C,相对湿度71% ± 5%)。
  7. 20天后,在体视显微镜下以10倍放大倍数解剖绿果。
  8. 统计每个果实中健康种子的数量以及被昆虫破坏的种子数量。
  9. 统计每个种子中咖啡果小蠹的不同生物学阶段22及死亡昆虫数量,以确定每个实验单位的昆虫死亡率。

6. 对具有玉米根叶甲驱避效果的产品进行评价

  1. 按照第4.1-4.6步操作,评估对果实具有保护作用的产品。
  2. 将咖啡果小蠹成虫释放到塑料盒中后,统计从盒子中飞走的咖啡果小蠹数量以及侵染绿色果实(GF)的数量,然后执行第4.7-4.11步。
  3. 按照第5.1-5.5步操作,评估产品在咖啡果小蠹侵染后的效果。
  4. 对A位置昆虫喷施每种处理后,统计从绿色果实(GF)中移出和/或从绿色果实(GF)飞走的咖啡果小蠹数量,然后执行第5.6-5.9步。

7. 统计学分析

注意:响应变量为随时间变化的死亡率百分比以及健康无虫害咖啡种子的百分比。

  1. 计算每个处理组各响应变量的平均值和标准差。
  2. 对每个响应变量采用完全随机设计模型进行方差分析。
    注意:采用邓内特(Dunnett)5%比较检验,将各处理组与绝对对照(水对照)进行比较。
  3. 当处理组与绝对对照之间差异显著时,采用5%最小显著差异(LSD)检验对处理组进行相互比较。
  4. 评估检验的统计功效;若大于85%,则满足正态性和方差齐性的假设条件。

figure-protocol-1
图1:杀虫剂对咖啡果小蠹(CBB)产前侵害效果的评估流程。利用绿色果实(GFs)评估杀虫剂对Hypothenemus hampei(CBB)产前侵害效果的操作步骤。 (A)果实选择。(B)在咖啡果实上喷施杀虫剂。(C)以每粒绿色果实2:1的比例接种CBB。(D)已接种的果实。(E)在受控条件下培养果实。(F)果实解剖。(G)统计种子内部的CBB种群数量。请点击此处查看该图的高清版本。

figure-protocol-2
图2:咖啡果受咖啡果小蠹(CBB)侵染的过程。 被侵染的果实中可见咖啡果小蠹成虫,其腹部部分外露(位置A)。请点击此处查看该图的放大版本。

figure-protocol-3
图3:评估杀虫剂对咖啡果小蠹(CBB)侵染后效果的操作流程。利用咖啡果(GF)评估杀虫剂对咖啡果小蠹(CBB)侵染后效果的步骤。(A)果实选择。(B)以每粒咖啡果2:1的比例接种CBB。(C)选择已被侵染的果实。(D)对果实喷施杀虫剂。(E)果实培养。(F)果实解剖。(G)统计CBB种群数量。请点击此处查看该图的高清版本。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

结果表明,咖啡果小蠹雌虫能够识别果实,并根据果实表面的特征及释放的气味,在21 °C条件下于3小时内开始侵入或钻入果实。

杀虫剂在咖啡果实上施用(侵染前处理)对咖啡果小蠹(CBB)的影响 24小时后及随时间变化的情况如图所示 图4两种杀虫剂(5% 和 6% 的生物碱乳剂)在第 20 天导致昆虫死亡率显著升高表1)与水的绝对对照组相比显示出显著差异(P < 0.001),根据LSD检验。关于未受侵染的健康种子百分比(表1),根据邓nett检验(5%水平),对照组与杀虫剂组之间也存在差异(P < 0.001)。在对照组中,37%的种子未受虫害,而施用杀虫剂可保护种子,使用杀虫剂2时有94%的种子保持健康,使用杀虫剂1时有89%的种子保持健康。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

在本实验方案中,果实和昆虫的消毒是关键步骤。当从田间采集的果实用于实验室时,由于表皮存在微生物和螨类,果实常常表现出严重的污染和脱水现象7,15,16。因此,若使用未经消毒的果实或昆虫,会因细菌或真菌等微生物污染导致昆虫死亡,从而干扰生物测定结果。此前,Tapias 等人20曾评估过其他用于果实消毒的抗菌剂,如多菌灵和苯扎氯铵;然而,尽管这些化合物对果实的消毒效果良好,但对咖啡果小蠹(CBB)或环境具有高度毒性。

通过将果实分别浸入0.5%次氯酸钠溶液中30分钟和15分钟,评估了该溶液的使用效果。在两种处理时间下,微生物均受到抑制,但由于该溶液具有较强的氧化性,浸渍30分钟后,CBB也受到不利影响23。紫外线可破坏微生物的DNA24,从而减少污染。然而,在...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

所有作者均无任何利益冲突需要声明。

致谢

作者感谢哥伦比亚咖啡种植者国家联合会、昆虫学系助理(Diana Marcela Giraldo、Gloria Patricia Naranjo)、Naranjal实验站以及Jhon Félix Trejos。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
500 mL 低型带嘴烧杯BRAND PPBR87826
台式摇床New Brunswick Scientific Innova 4000 恒温振荡培养箱
洗洁精-AXIONColgate-PalmoliveAXION
罩;水平层流工作台Terra Universal 粉末涂层钢,1930 mm 宽 × 1118 mm 深 × 1619 mm 高,120 V (https://www.terrauniversal.com/hood-horizontal-laminar-flow-station-9620-64a.html)
昆虫 咖啡果小蠹BIOCAFE(http://avispitas.blogspot.com/p/biocafe.html)
多折白色纸巾73551
Preval 喷雾装置 普雷瓦尔·默克Z365556-1KThttps://www.sigmaaldrich.com/CO/es/product/sigma/z365556?gclid=Cj0KCQiAweaNBhDEARIsAJ
5hwbfZOy1TWGj6huatFtRQt
AzOyHe5-oBiKnOUK2T1exuuk
WwJLdvxkvsaAjoYEALw_wcB
可逆式96孔架heathrowscientificHEA2345Ahttps://www.heathrowscientific.com/reversible-racks-96-well-i-hea2345a
11号手术刀片默克S2771-100EA
N3 型手术刀柄默克S2896-1EA
次氯酸钠科洛克斯公司Clorox
体视显微镜蔡司Stemi 508https://www.zeiss.com/microscopy/int/products/stereo-zoom-microscopes/stemi-508.html

参考文献

  1. Mendesil, E., et al. Semiochemicals used in host location by the coffee berry borer, Hypothenemus hampei. Journal of Chemical Ecology. 35 (8), 944-950 (2009).
  2. Jaramillo, J., et al. Coffee berry borer joins bark beetles in coffee klatch. PLoS ONE. 8 (9), 74277(2013).
  3. Giraldo-Jaramillo, M., Garcia, A. G., Parra, J. R. Biology, thermal requirements, and estimation of the number of generations of Hypothenemus hampei (Ferrari, 1867) (Coleoptera: Curculionidae) in the state of São Paulo, Brazil. Journal of Economic Entomology. 111 (5), 2192-2200 (2018).
  4. Benavides, P., Góngora, C., Bustillo, A. IPM Program to Control Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei, with Emphasis on Highly Pathogenic Mixed Strains of Beauveria bassiana, to Overcome Insecticide Resistance in Colombia. IntechOpen. , (2012).
  5. Martínez, C. P., Echeverri, C., Florez, J. C., Gaitan, A. L., Góngora, C. E. In vitro production of two chitinolytic proteins with an inhibiting effect on the insect coffee berry borer, Hypothenemus hampei (Ferrari) (Coleoptera: Curculionidae) and the fungus Hemileia vastatrix the most limiting pests of coffee crops. AMB Express. 2, 1-11 (2012).
  6. Padilla, B. E., Acuña, Z., Velásquez, C. S., Rubio, G. J. D. Inhibitors of [alpha]-amylases from the coffee berry borer Hypothenemus hampei in different plant species. Revista Colombiana de Entomología. 32 (2), 125-130 (2006).
  7. Alvarez, J. H., Cortina, H. A., Villegas, J. F. Methods to evaluate antibiosis to Hypothenemus hampei Ferrari in coffee under controlled conditions. Cenicafé. 52 (3), 205-214 (2001).
  8. Arcila, A., Duarte, A. F., Villalba, D. A., Benavides, P. New Product in the Integrated Management of the Coffee Berry Borer in Colombia. National Coffee Research Center (Cenicafé). , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/handle/10778/477 (2014).
  9. Jaramillo, J., Montoya, E., Benavides, P., Góngora, C. Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae for the control of coffee brocade in fruits on the ground. Revista Colombiana de Entomología. 41, 95-104 (2015).
  10. Bastidas, A., Velásquez, E., Benavides, P., Bustillo, A., Orozco, C. Evaluation of preformulated Beauveria bassiana (Bálsam) Vuillemin, for the control of the coffee berry borer. Agronomia. 17, 44-61 (2009).
  11. Villalba-Gault, D., Bustillo, A., Chaves Cordoba, B. Evaluation of insecticides for the control of the coffee berry borer in Colombia. Cenicafe. 46, 152-163 (1995).
  12. Bustillo, A. E., Orozco, J., Benavides, P., Portilla, M. Mass production and use of parasitoids for the control of the coffee berry borer in Colombia. Cenicafe. 47 (4), 215-230 (1996).
  13. Celestino, F. N., Pratissoli, D., Machado, L. C., Santos Junior, H. J. G. D., Mardgan, L., Ribeiro, L. V. Adaptation of breeding techniques of the coffee berry borer [Hypothenemus hampei (Ferrari). Coffee Science. 11 (2), 161-168 (2016).
  14. Domínguez, L., Parzanese, M. Ultraviolet light in food preservation. Argentine Foods. 52 (2), 70-76 (2012).
  15. Jaramillo, J., Chabi-Olaye, A., Poehling, H. M., Kamonjo, C., Borgemeister, C. Development of an improved laboratory production technique for the coffee berry borer Hypothenemus hampei, using fresh coffee berries. Entomologia Experimentalis et Applicata. 130 (3), 275-281 (2009).
  16. Pérez, J., Infante, F., Vega, F. E. Does the coffee berry borer (Coleoptera: Scolytidae) have mutualistic fungi. Annals of the Entomological Society of America. 98 (4), 483-490 (2005).
  17. Benavides, P., Gil, P., Góngora, C., Arcila, A. Integrated pest management. Cenicafe. Manual of the Colombian coffee grower: Research and technology for the sustainability of coffee growing. Manizales: FNC: Cenicafé. 3, 179-214 (2013).
  18. Bustillo, P. A review of the coffee berry borer, Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae), in Colombia. Revista Colombiana de Entomología. 32 (2), 101-116 (2006).
  19. Arcila, A., Benavides, P., Mejia, J. New Chemical Control Alternative for the Integrated Management of the Coffee Berry Borer. National Coffee Research Center (Cenicafé). , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/handle/10778/557 (2015).
  20. Tapias, L., Martinez, C., Benavides, P., Gongora, C. Laboratory method to evaluate the effect of insecticides on the coffee berry borer. Cenicafé. 68 (2), 76-89 (2017).
  21. Bustillo, A. E., Marín, P. How to reactivate the virulence of Beauveria bassiana to control the coffee berry borer. Manejo Integrado de Plagas. 63, (2002).
  22. Constantino, L. M., et al. morphological and genetic aspects of Hypothenemus obscurus and Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae). Revista Colombiana de Entomología. 37 (2), 173-182 (2011).
  23. Estrela, C., et al. Mechanism of action of sodium hypochlorite. Brazilian Dental Journal. 13 (2), 113-117 (2002).
  24. Diffey, B. L. Solar ultraviolet radiation effects on biological systems. Physics in Medicine and Biology. 36 (3), 299-328 (1991).
  25. BIOCAFE. , Available from: http://avispitas.blogspot.com/p/biocafe.html (2022).
  26. Bustillo, A. E., et al. Integrated Management of the Coffee Berry Borer: Hypothenemus hampei Ferrari in Colombia. , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/hangle/10778/848 (1998).
  27. Portilla, R. Development and evaluation of an artificial diet for the rearing of Hypothenemus hampei. Cenicafé. 50, 24-38 (1999).
  28. Portilla, R. M., Streett, D. A. New techniques for automated mass production of Hypothenemus hampei on the modified Cenibroca artificial diet. Cenicafé. 57, 37-50 (2006).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

相关文章