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酿酒酵母中单倍体交配效率的测定

DOI:

10.3791/64596

2022年12月2日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

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在这项工作中,描述了一种定量酿 酵母交配效率的稳健方法。该方法对于物种形成研究中合子前屏障的定量特别有用。

摘要

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酿酒酵母 是遗传学、进化和分子生物学中广泛使用的模式生物。近年来,它也成为研究物种形成相关问题的流行模式生物。酵母的生命周期涉及无性和有性生殖阶段。易于进行进化实验和生物体的短生成时间允许研究生殖屏障的进化。两种配接类型(a α)配合形成 a/α 二倍体的效率称为配接效率。单倍体之间交配效率的任何降低都表明存在合子前屏障。因此,为了量化两个单倍体之间的生殖隔离程度,需要一种可靠的方法来量化交配效率。为此,这里提出了一个简单且高度可重复的协议。该方案涉及四个主要步骤,包括修补YPD板上的单倍体,将等数量的单倍体混合,稀释和接种单个菌落,最后,根据脱落板上的菌落数量计算效率。使用营养标记来清楚地区分单倍体和二倍体。

引言

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酿酒酵母,通常称为出芽酵母,是一种单细胞真核生物。它有两种交配类型, aα, 并表现出无性和有性生殖周期。 aα 交配类型是单倍体,可以在周围环境中没有其他交配类型的情况下进行有丝分裂,这代表了酵母的无性循环。当两种交配类型非常接近时,它们停止有丝分裂并融合形成二倍体细胞。二倍体酵母可以在营养物质存在时有丝分裂,也可以在存在不可发酵的不良碳源(例如乙酸盐1)的情况下在氮饥饿的条件下进行减数分裂。这导致孢子的形成,孢子保持休眠状态,直到有有利的生长条件。当这些孢子萌发并且两种单倍体类型被释放回单倍体池23 时,生命周期就完成了(图1)。

酵母细胞的交配包括几个步骤,例如凝集,形成交配投影或"shmoo",然后是细胞和核融合45。两种配接类型 a 和 α分别产生 a<....

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方案

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注意:该协议广泛涉及以下步骤:(1)在YPD板上修补交配效率网格中的单倍体,(2)孵育24小时后将等数量的单倍体混合,并给混合单倍体几个小时的交配时间(本研究中为7小时),(3)将混合细胞接种在YPD上,以便在30°C下7小时后分离单个菌落, 最后,(4)确定使用营养不足标记物形成的二倍体的数量。下面将详细讨论这些步骤(另请参阅 图 2)。

1. 拼接效率网格中的单倍体

  1. 通过在YPD琼脂平板(2%琼脂,2%葡萄糖,1%蛋白胨,0.5%酵母提取物)上划线,从冷冻储液中恢复单倍体 aα ,并让它们在30°C下生长48小时以获得分离的单菌落。
  2. 将YPD板中的单个菌落接种在5mL YPD培养基(2%葡萄糖,1%蛋白胨,0.5%酵母提取物)中,并在30°C下以250rpm振荡孵育48小时。在此孵育期之后,细胞处于生长的固定阶段。
  3. 在新鲜的YPD板上绘制配接效率网格。将网格绘制为一个 1 cm x 1.5 cm 的矩形,分为三个框,每个框的尺寸为 1 cm x 0.5 cm,如图 2A 所示。
  4. 最左侧和最右侧矩形上两种配对类型的 YPD 培养物的补丁 5 μL(

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结果

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两种插拔类型配接效率的量化
此处描述的方案用于量化两种酵母菌株之间的交配效率 - SK1AM a 和 SK1AMα 之间以及 ScAMa 和 ScAMα 之间的交配效率图 3A)。在这些实验中,两个单倍体之间的交配重复至少12次。在实验的每个重复中,至少有100个菌落在双脱落培养基上划线。该方案的稳健性使得SK1AM和ScAM两种菌株之间的交配效率变得容易。虽然SK1菌株以非常高的效率配接,但ScAM菌株的配接效率相对较低(图3A)。这也许并不奇怪,因为ScAM菌株起源于酿酒酵母S. carlsbergensis菌株之间的杂交交配35

除了区分菌株之间的交配效率外,该方法还可用于量化不同环境下菌株交配效.......

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讨论

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酿酒酵母交配效率的量化对于开展与交配途径相关基因相关的研究或研究外部环境对交配行为的影响至关重要。在过去的二十年中,酿酒酵母也已成为解决与物种形成14363738相关的问题的流行模型。两种交配类型的存在以及在实验室环境中易于进行遗传操作和维护,使其成为实时研究生殖屏障进化的合适生物体。交配效率的量化至关重要,因为它可以衡量合子前生殖屏障。因此,需要一种具有高重现性的便捷方案。

使用上述协议,量化了表现出完全不同的交配行为的两种不同菌株的交配效率。因此,该方案可以应用于任何菌株,因为大多数实验室酵母菌株都带有可用于选择39的营养。但是,使用此协议时有一些重要的注意事项。初始YPD培养物到达固定相所需的时间取决于菌株。生长缓慢的菌株可能需要在3.......

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披露

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作者声明他们在这项工作中没有竞争利益。作者很高兴分享SK1衍生的菌株,用于所有非营利用途。

致谢

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这项工作由DBT/威康信托基金会(印度联盟)赠款(IA/S/19/2/504632)资助,由DBT/威康信托基金会(印度联盟)资助(IA/S/19/2/504632)资助。A.M.作为高级研究员(09/087(0873)/2017-EMR-I)得到了印度政府科学与工业研究委员会(CSIR)的支持。作者感谢Paike Jayadeva Bhat的讨论。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
腺嘌呤Sigma Life ScienceA8626
琼脂粉 常规级细菌学SRL19661 (0140186)硫酸
铵,Hi-ARHiMediaGRM1273
D-(+)-葡萄糖Sigma Life ScienceG8270
玻璃培养皿HiMediaPW008 尺寸为 90 mm x 15 mm
的 L-精氨酸Sigma 生命科学A8094
L-天冬氨酸Sigma 生命科学A7219
L-一氯化组氨酸Sigma 生命科学H5659
L-异亮氨酸Sigma AldrichI2752
L-亮氨酸Sigma 生命科学L8912
L-赖氨酸Aldrich62840
L-蛋氨酸Sigma 生命科学M5308
L-苯丙氨酸Sigma 生命科学P5482
L-苏氨酸Sigma AldrichT8625
L-酪氨酸Sigma 生命科学T8566
L-缬氨酸Sigma 生命科学V0513
交配效率网格1 cm x 1.5 cm 在培养皿板上绘制的矩形网格
微量离心管Tarsons500010
蛋白胨HiMediaRM001
尿嘧啶Sigma 生命科学U0750
酵母提取物粉末HiMediaRM027
酵母氮基,不含氨基酸和硫酸铵BD 迪夫科233520

参考文献

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  1. Neiman, A. M. Sporulation in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 189 (3), 737-765 (2011).
  2. Duina, A. A., Miller, M. E., Keeney, J. B. Budding yeast for budding geneticists: A primer on the Saccharomyces cerevisiae model system. Genetics.

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Mating EfficiencySaccharomyces CerevisiaeHaploid MatingYeast SpeciationAuxotrophic MarkersYPD AgarDiploid IdentificationOptical DensityGene FlowReproductive Isolation

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