大豆毛根转化基因功能分析

Summary

在这里，我们提出了一种高效生产转基因大豆毛根的方案。

Abstract

大豆（Glycine max）是一种有价值的农业作物，具有数千种工业用途。大豆根系是与土壤传播微生物相互作用的主要场所，这些微生物形成共生以固定氮和病原体，这使得涉及大豆根遗传学的研究对于提高其农业生产至关重要。大豆毛根（HRs）的遗传转化由根 茎农杆菌 菌株NCPPB2659（K599）介导，是研究大豆根系基因功能的有效工具，从开始到结束仅需2个月。在这里，我们提供了一个详细的协议，概述了在大豆HR中过表达和沉默目的基因的方法。该方法包括大豆种子灭菌，用K599感染子叶，以及选择和收获基因转化的HR进行RNA分离，并在必要时进行代谢物分析。该方法的通量足以同时研究多个基因或网络，并且可以在致力于长期稳定的转化方法之前确定最佳工程策略。

Introduction

大豆（Glycine max）是农业中最有价值的作物之一。它具有数以千计的商业和工业用途，例如食品，动物饲料，油，并作为制造原料的来源¹。它与固氮土壤微生物（即根瘤菌）形成共生关系的能力进一步提升了研究大豆遗传学的重要性²。例如，微调大豆根系的固氮特性可以减少碳排放，并大大降低对氮肥的需求³。因此，特别是了解控制大豆根生物学方面的遗传学在农业和工业中具有广泛的应用。考虑到这些好处，有一个可靠的方案来分析大豆基因的功能是很重要的。

根癌农杆菌可能是植物遗传转化最常用的工具，因为它具有将转移DNA（T-DNA）整合到许多植物物种的核基因组中的能力。当农杆菌感染植物时，它将肿瘤诱导（Ti）质粒转移到宿主染色体中，导致在感染部位形成肿瘤。几十年来，农杆菌介导的转化已被广泛用于基因功能分析和修改作物性状^4。尽管任何目的基因都可以通过根癌曲霉介导的转化轻松转移到宿主植物细胞中，但这种方法有几个缺点;它耗时、昂贵，并且需要对大豆等许多植物物种提供广泛的专业知识。虽然少数品种的大豆可以通过使用根癌农杆菌的子叶节点方法进行转化，但这种方法的低效率需要一种快速高效的替代遗传转化技术^4,5。即使是非专家也可以使用这种根茎农杆菌介导的毛根（HR）转化方法来克服这些缺点。

HR转化是一种相对快速的工具，不仅用于分析基因功能，还用于生物技术应用，例如生产专门的代谢物和精细化学品，以及复杂的生物活性糖蛋白⁶。大豆HR的生产不需要广泛的专业知识，因为它们可以通过伤害子叶表面，然后接种根 茎农杆菌⁷来产生。 A. rhizogenes 表达由其Ti质粒编码的毒力（Vir）基因，该质粒转移，携带并将其T-DNA片段整合到植物细胞的基因组中，同时刺激异位根生长⁸。

与其他大豆基因表达系统（例如基于生物利斯特或根癌农杆菌的组织、细胞和器官培养转化）相比，HR表达系统具有几个优点。首先，HR在遗传上是稳定的，并且在无激素培养基^上快速产生1,9,10。此外，HR可以产生相当于或大于天然根^11,12的特化代谢物。这些优点使HRs成为与根癌曲霉不相容或需要特殊组织培养条件以形成相容组织的植物物种的理想生物技术工具。HR 方法是一种使用 RNA 测序^13,14,15 分析蛋白质-蛋白质相互作用、蛋白质亚细胞定位、重组蛋白质生产、植物修复、诱变和全基因组效应的有效方法。它还可用于研究在工业中具有价值的专用代谢物的生产，包括甘氨酸，其药物可预防大豆对重要的微生物病原体疫霉，并在人类中具有令人印象深刻的抗癌和神经保护活性^16,17。

本报告展示了一种简单、高效的生产大豆 HR 的方案。 与以前的 HR 转化方法相比，该方案通过在接种大豆子叶之前预先筛选根 茎变形 体中存在 Ti 质粒的 HR 形成率，显着提高了 （33%-50%）。我们通过转换几种过表达或沉默大豆转录因子基因的二元载体来证明该协议的适用性。

Protocol

注意:建议所有后续步骤在无菌条件下进行。

1.大豆种子杀菌

1. 在生物安全柜中，将 16-20 圆形威廉姆斯 82 大豆种子置于原始状态（即无裂缝或瑕疵）中 50 mL 离心管中。
2. 加入 30 mL 的 70% 异丙醇，轻轻摇晃 30 秒，然后倒出酒精。
3. 用30mL的10%漂白剂轻轻摇动种子10秒，并使种子在室温（室温，25°C）下在溶液中静置5分钟。5分钟后，沥干漂白剂。
4. 用30mL无菌超纯H 2 O重复摇动三次，每次冲洗1分钟，并在每次冲洗之间丢弃H₂O。
5. 将灭菌的种子放在饱和有 5 mL 发芽和共培养 （GC） 培养基（高压灭菌器半强度液体 Murashige 和 Skoog [MS] 培养基，含 1% 蔗糖 [pH = 5.8] 的滤纸上，然后加入 2.5 mL/L 维生素）在无菌培养皿中。
6. 将板在室温（25°C）下在黑暗中放置3天，然后在22°C下在16小时冷白T5荧光灯（100μE ^m-2·s-1）下转移板4天以使种子发芽。
   注意:丢弃起皱或破裂的种子。最好的种子是那些大而均匀黄色的种子。消毒至少两倍于实验所需的种子数量，以选择高质量的种子，因为某些种子可能由于损坏、疾病或发芽失败而不是最佳的。

2.K599感染子叶

注意:使用pGWB系列载体，因为它们的双重选择可确保整个T-DNA盒的基因组整合。电穿孔用于将携带目的基因的二元载体转化为根 茎曲霉 菌pRi2659¹⁸。

1. 基于根茎曲霉菌pRi2659质粒¹⁸的序列，设计引物检测Ti质粒基因VirD2（VirD2前向:5'-CCCGATCGAGCTCAAGTTAT-3';VirD2 反向: 5'-TCGTCTGGCTGACTTTCGT-3';预期扩增大小:221 bp）。转化后，使用PCR试剂盒通过聚合酶链反应（PCR）测试农杆菌菌落对VirD2的保留（参见材料表）。PCR循环:94°C3分钟;35次循环（94°C1分钟，58°C30秒，72°C1分钟）;和72°C10分钟。
2. 在选择含有VirD2和目的基因（GOI）的根茎农杆菌菌落后，将一些划出一些到含有适当抗生素（50mg / L）的Luria-Bertani（LB）培养基板上，用于目标质粒，并在30°C下孵育过夜。 如果使用壮观霉素，添加浓度为100mg / L。
3. 使用 P200 移液器吸头从 LB 平板上刮下 ~1.5 cm 长的 K599 农杆菌 ，并将细胞重悬于 1 mL 磷酸盐缓冲液中 （PB; 0.01 M Na₂HPO₄， 0.15 M NaCl， pH 7.5）。
4. 在灭菌的超纯H₂O（v / v = 1:1）和乙酰丁香酮（AS;100 mM二甲基亚砜[DMSO]中的原液，v / v = 1:1000）中稀释农杆菌。使用比色皿管以600nm（OD 600）的光密度测量吸光度。预期的最佳范围介于 0.5 和 0.8 之间。
5. 在生物安全柜中，将无菌手术刀浸入K599农 杆菌 溶液中，并沿子叶的内表面（同轴，平坦侧）进行几个1毫米深的切口。在接种过程中，使用灭菌的镊子稳定子叶。
6. 将约6-8个子叶面朝下切开在含有用AS饱和GC培养基的滤纸的培养皿上。
   注意:要制备 6 块板，50 mL GC 培养基和 50 μL 100 mM AS 以达到 100 μM 的最终浓度就足够了。
7. 将板在室温（25°C）下在16小时光周期（~65μE）下孵育3天。
8. 将感染的子叶转移到毛根生长（HRG）板上（高压灭菌半强度MS与3%蔗糖[pH = 5.8]和2.6 g / L Gelzan，然后加入2.5 mL / L维生素混合物和500 mg / Ltimentin）。
   注意:一些替代供应商的timentin存在一些问题，其中K599没有被淘汰。建议使用较高的培养皿（100 mm x 25 mm）用于HRG培养基。
9. 在生长室中在22°C下孵育HRG板，参数设置为100μE光在16小时光周期上，直到观察到具有2-3cm长度的次生根（~3-4周）。

3. 人力资源的选择和收获

1. 使用无菌手术刀和镊子收获从愈伤组织生长并包含次生根（2-3 厘米长）的初级根（5-7 厘米长）。转移到含有适当抗生素的精选HRG板。让 HR 在选择 HRG 板上再生长 5 天。
   注意:卡那霉素（50毫克/升）、潮霉素（50毫克/升）或膦霉素（10毫克/升）通常用于选择。对于表达载体，pGWB2用于过表达，pANDA35HK用于RNAi沉默，pGWB6用于亚细胞定位，pMDC7用于诱导表达。
2. 在第5天，收获次生根长3-6厘米的转基因HR。如果观察荧光蛋白，次生根几乎没有自发荧光。如果进行诱导剂或化学处理，将次生根切成 1 厘米的碎片，并将 ~100 毫克放在 HRG 琼脂上。然后，用 80 μL 适当的处理使堆饱和，并使板在室温 （25 °C） 下孵育。
3. 在所需的处理时间后，继续进行RNA或代谢物提取。
4. 对于RNA，在无菌纸巾上快速将根部轻拍干燥，然后直接将其收获到2 mL微量离心管中。
5. 立即使用封口膜密封管的顶部，用尖头镊子打两个小孔，然后将管子浸入液氮中。冻干3天，然后将样品储存在-80°C。
   注意:必须选择白色的HR。在选择性平板上生长5天后，转基因HR将保持白色，但非转基因根将变成棕色。

Results

代表性结果来自已发表的数据^19,20。转化的K599农杆菌的菌落PCR（cPCR）结果如图1所示。如图1中的阳性菌落所示，通过cPCR检测目的基因（图1A）。然而，三分之一到一半的菌落对VirD2基因筛选呈阴性（图1B），表明Ti质粒丢失，并且无法产生愈伤组织或毛根。图2显示了大豆HR和基因表达分析的整体制备过程。图3显示了GFP-GmJAZ1-6的亚细胞定位。图4是基因表达分析，显示了威廉姆斯82毛根中甘油素转录因子GmHSF6-1的过表达和Gm...

Discussion

在过去的十年中，大豆HR方法已被开发为研究参与固氮^22,23，生物和非生物胁迫耐受性24,25以及代谢物生物合成途径^26,27的基因的有力工具。植物如何产生代谢物的知识对农业生产和制药工业有很多好处，因为它可用于研究参与介导对病原体的生化防御的基因网络²⁸。

为了优先考虑生产力和成本效率，该协议简化了程序。例如，不使用含有胶凝剂的更昂贵的固体培养基，而是使用富含液体生长培养基的工业级纸巾在无菌条件下发芽大豆种子。无菌实验室技术和保持无菌工作条件对于HR转化实验至关重要，因为真菌和酵母等多种微生物会导致 体外 培养物污染。

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
乙酰丁香酮	开曼	23224
漂白	lavo	21124
DMSO	Fisher 生物试剂	195679
Gelzan	Phytotech	HYY3251089A
潮霉素	Phytotech	HHA0397050B
异丙醇	Fisher 化学	206462
卡那霉素	Phytotech	SQS0378007G
LB 粉末	Fisher 生物试剂	200318
MS 粉末	沉箱实验室	2210001
Na2HPO4	Fisher 生物试剂	194171
NaCl	Fisher 化学	192946
培养皿	Fisherbrand	08-757-11	100 mm x 25 mm
磷孢素	雪松	P034-250MG
REDExtract-N-Amp PCR 试剂盒	Sigma	R4775
蔗糖	Bioshop	2D76475
Timentin	沉箱实验室	12222002
维生素	沉箱实验室	2211010