用于结构和生化研究的人溶质载体的高通量表达和纯化

摘要

人膜转运蛋白的结构和生化研究需要毫克量的稳定、完整和均匀的蛋白质。在这里，我们描述了使用密码子优化基因筛选、表达和纯化人类溶质载体转运蛋白的可扩展方法。

摘要

溶质载体 （SLC） 是膜转运蛋白，可导入和输出一系列内源性和外源性底物，包括离子、营养物质、代谢物、神经递质和药物。尽管这组蛋白质已成为有吸引力的治疗靶点和疾病标志物，但目前的药物仍然相对不足。这些转运蛋白的药物发现项目受到有限的结构、功能和生理知识的阻碍，最终是由于这类膜包埋蛋白的表达和纯化困难。在这里，我们展示了使用密码子优化基因序列获得高纯度、毫克量的人SLC转运蛋白的方法。结合对构建体设计和高通量表达的系统探索，这些方案确保了靶蛋白的结构完整性和生化活性的保存。我们还重点介绍了这些蛋白质的真核细胞表达、亲和纯化和尺寸排阻色谱的关键步骤。最终，该工作流程可产生纯净、功能活性和稳定的蛋白质制剂，适用于高分辨率结构测定、转运研究、小分子结合测定和高通量 体外 筛选。

引言

长期以来，膜蛋白一直是研究人员和制药行业的目标。其中，溶质载体 （SLC） 是一个由人类基因组中编码的 400 多个次级转运蛋白基因组成的家族¹。这些转运蛋白参与许多分子的进出口，包括离子²、神经递质³、脂质⁴、⁵、⁶、⁷、氨基酸⁸、营养素⁹、10^、11 和药物 ¹²。由于底物如此广泛，这些蛋白质还通过毒素 13 的转运、滥用药物^14、15 的转运和抑制或有害突变¹⁶ 与一系列病理生理学有关。细菌同源物已成为几个SLC家族17,18,19,20,21,22,23,24,25的基本运输机制的原型。与人类蛋白质相比，原核直系同源物通常在众所周知的大肠杆菌表达系统^26,27 中表达得更好，并且在较小的去污剂中更稳定^，这些去污剂产生用于 X 射线晶体学的有序晶体²⁸。然而，序列和功能差异使这些远缘相关蛋白质用于药物发现变得复杂^29,30。因此，通常需要对人类蛋白质进行直接研究，以破译靶向 SLC³¹、32、³³、^34、35 的药物的作用机制。虽然冷冻电子显微镜 （Cryo-EM） 的最新进展使得在更天然的类似条件下对 SLC 进行结构表征^36,37，但表达和纯化这些蛋白质的困难仍然是开发靶向治疗和诊断的挑战。

为了缓解这一挑战，RESOLUTE联盟（re-solute.eu）开发了用于大规模表达和纯化人SLC家族蛋白的资源和方案³⁸。从密码子优化基因开始，我们开发了用于SLC构建体的高通量克隆和筛选方法。这些方法被系统地应用于整个SLC家族，将基因克隆到BacMam病毒表达系统中，并基于先前描述的高通量克隆和表达测试^方法40，在人类细胞系³⁹中测试蛋白质表达。总之，SLC 基因从 pDONR221 质粒克隆到 pHTBV1.1 载体中。该构建体随后用于将目的基因转置到用于转染昆虫细胞的杆粒载体中，其中包括用于在哺乳动物细胞中表达的巨细胞病毒启动子和增强子元件。所得杆状病毒可用于转导哺乳动物细胞以表达靶标SLC蛋白。

我们进一步开发了用于大规模表达和稳定纯化选定SLC的标准化方法（图1）。该协议包括多个检查点，以促进有效的故障排除并最大限度地减少实验之间的差异。值得注意的是，链球菌和绿色荧光蛋白 （GFP） 标签^41,42 有助于蛋白质表达和定位的常规监测^，以及单个靶标纯化条件的小规模优化。

最终，这些化学纯度和结构均质的蛋白质样品可用于通过 X 射线晶体学或冷冻电子显微镜 （Cryo-EM） 进行结构测定、生化靶标结合测定、免疫以生成粘合剂，以及通过复溶到化学定义的脂质体中进行无细胞功能研究。

方案

注:所有密码子优化的RESOLUTE SLC基因均已沉积在AddGene⁴³中，其链接可在RESOLUTE公共试剂⁴⁴列表中找到。这些基因已被克隆到 pDONR221 质粒中，并允许使用重组克隆⁴⁵ 将基因直接克隆到目标载体中。为了最大限度地提高平行性，细菌，昆虫和哺乳动物细胞以块形式生长，分别用于杆粒生产（第3节），杆状病毒扩增（第5节）和表达测试（第6节）。对于这些步骤，需要微表情振荡器以确保充分的混合和通气。

1. 将SLCs（高通量）克隆到pHTBV1.1杆粒中

注:克隆步骤使用重组克隆方案进行高效克隆，并使用热休克方法⁴⁶转化为大肠杆菌（大肠杆菌）。该方案专为多个靶标或构建体的高通量和并行克隆而设计，但可以很容易地适应较小的规模。

1. 在 96 孔板中，加入 150 ng pDONR221 SLC 克隆和 100 ng pHTBV1.1-C3CGFP-SIII-10H-GTW 载体。用 10 mM Tris pH 8.0 将反应体积调至 8 μL，然后加入 2 μL 重组酶混合物。
2. 在室温下孵育1小时，加入1μL蛋白酶K，并在37°C下孵育30分钟。
3. 使用 4 μL 反应混合物使用热休克法⁴⁶ 和 SOC 培养基转化 50 μL 化学感受态大肠杆菌 MACH-1 细胞以进行回收。平板到含有 5% 蔗糖或 SOC 琼脂的 LB 琼脂上，补充有 100 μg/mL 氨苄青霉素。
4. 使用适当的引物（见表1）和菌落PCR⁴⁷的标准方案，鉴定含有SLC基因插入片段的pHTBV1.1载体的菌落。
5. 使用质粒小量制备试剂盒从具有目的基因的单个菌落中纯化重组质粒。

2. 换位

注:以下步骤用于将 SLC 基因从 pHTBV1.1 载体转置到杆粒中，以便在 Sf9 细胞中产生 BacMam 杆状病毒。使用热休克方法⁴⁶，将pHTBV1.1载体转化为DH10Bac感受 态大肠杆菌 细胞，其含有具有lacZ-mini-attTn7融合的亲本杆粒。在辅助质粒⁴⁸ 提供的转座蛋白存在的情况下，在 pHTBV1.1 载体的元件和亲本杆粒之间发生转座。有关该协议中使用的溶液的组成，请参见 表2 。

1. 使用 3 μL 100-200 ng/μL 纯化的 pHTBV1.1 载体 DNA，在 96 孔 PCR 板中使用热休克法转化 DH10Bac。通过在37°C下在回收培养基中孵育4-5小时，同时在微表达振荡器中以700rpm振荡来恢复细胞。
2. 将 50 μL 转化细胞铺布到 DH10Bac 选择板上。将板在37°C孵育48小时，并用箔覆盖。
3. 选择单个白色菌落（含有重组 DNA）并划线稀释。在37°C孵育过夜。

3. 高通量杆粒生产

注:该方案描述了使用96孔杆粒纯化试剂盒提取杆粒的步骤。

1. 将单个白色菌落（从条纹到稀释板中分离）接种到含有 1 mL 2x LB 培养基的 96 深孔块的孔中（表 2）。
2. 盖上多孔密封件，在37°C下以700rpm在微表情振荡器中孵育过夜。
3. 通过在微量滴定板中将120μL培养物与30μL60%甘油混合并储存在-80°C来制备细胞的甘油储备液。
4. 将深孔块以2,600× g 离心30分钟。将上清液倒入合适的容器中进行去污。倒置积木并轻轻敲击纸巾。使用多通道移液器向模块的每个孔中加入 250 μL 溶液 1。
5. 重悬颗粒;如有必要，请使用多通道移液器。
6. 向每个孔中加入 250 μL 溶液 2，并用硅胶垫密封。轻轻倒置 5 次，并在室温下孵育 10 分钟。非常短暂地旋转。
7. 加入 300 μL 溶液 3 并用硅胶垫密封。轻轻但彻底地混合，倒置 5 倍。
8. 将样品置于冰上20分钟，然后在4°C下以2,600× g 离心30分钟。
9. 将透明上清液转移到新鲜的 96 孔块中。在4°C下再次以2,600× g 离心30分钟。
10. 在新鲜的 96 深孔模块中，每孔分配 0.8 mL 100% 异丙醇。从相应的孔中加入 0.8 mL 上清液。
11. 使用移液管轻轻地上下移液，然后在冰上孵育30分钟或在4°C下孵育过夜以产生更多的杆粒。
12. 在4°C下以2,600× g 离心30分钟。
13. 在生物安全柜内，用70%乙醇喷洒块体的外部，打开块体，丢弃上清液。
14. 向每个孔中加入 500 μL 70% 乙醇 （v/v），轻轻敲击块以洗涤沉淀。盖上粘性塑料密封件，并在4°C下以2,600× g 离心30分钟。
15. 在生物安全柜内，打开块并丢弃上清液。在纸巾上轻轻敲击块以去除乙醇。让块在罩内干燥1-2小时或在50°C烘箱中干燥。
16. 加入 50 μL 无菌 TE 缓冲液以重悬杆粒 DNA，并使用粘合剂塑料密封密封。将内容物转移到 V 形底微量滴定板中。将杆粒DNA储存在4°C直至试验纯化完成，然后将其储存在-20°C。
    注:虽然不常规测量，但通常可预期 500 至 2,000 ng/μL 杆粒 DNA。
17. 使用标准菌落PCR方法⁴⁷和以下载体引物筛选成功掺入靶基因的杆菌:
    pFBM-fwd caaaatgtcgtaacaactccgc
    pFBM-rev tagttaagaataccagtcaatctttcac
    注意:扩增子将比靶基因大约 700 bp。

4. 转染

注意:这些步骤用于用产生的杆粒转染 Sf9 昆虫细胞，这会导致昆虫细胞产生杆状病毒颗粒 （P0）。

1. 在无血清昆虫培养基中将 Sf9 细胞培养至 2.0-2.4 × 10⁶ 个细胞/mL 的密度。在无血清昆虫培养基中将细胞稀释至 2 ×^{10 个 5} 个细胞/mL，并将 1 mL 稀释的细胞分配到 24 孔组织培养板孔中。包括仅 转染试剂 和 仅细胞对 照。将板在27°C的加湿培养箱中孵育1小时，以使细胞附着。
2. 将每孔 38 μL 无血清昆虫培养基与每孔 2 μL 转染试剂混合。将 40 μL 混合物分装到 96 孔无菌平底微量滴定板中。加入 2 μL 0.5-2.0 μg/μL 的重组杆粒 DNA，盖上板，在微生物安全柜内孵育 15 分钟。
3. 将 160 μL 无血清昆虫培养基加入含有 DNA 转染试剂混合物的微量滴定板的每个孔中。
4. 在步骤4.1中从细胞中吸出培养基。轻轻地将200μL杆粒转染试剂 - 培养基混合物加入细胞上，盖上板，并在27°C的加湿培养箱中孵育4小时。
5. 向每个孔中加入 400 μL 补充有 2% FBS 的无血清昆虫培养基。为减少蒸发，请将板转移到干净的塑料袋中，但不要密封。将板在27°C下在加湿培养箱中孵育72小时。
6. 3天后，将培养基从板转移到无菌的96深孔块中，并在室温下以1,500× g 离心20分钟。将含有P0杆状病毒的澄清上清液转移到无菌的96深孔块中，并储存在4°C，远离光。

5. BacMam 杆状病毒扩增

注意:以下步骤用于将初始 P0 杆状病毒扩增为更高滴度的病毒储备;即 P1、P2 和 P3。最终的 P3 滴度适用于转导和蛋白表达。为了提高效率和并行性，该协议使用固定的体积比进行病毒扩增，该病毒扩增已经过经验优化。然而，如果随后转导的细胞未通过显微镜显示GFP荧光和细胞直径增加，或者如果蛋白质表达失败（参见第6节和第8节），则在定量杆状病毒滴度49,50,51,52后，应重新优化杆状病毒扩增，以便在每个步骤中降低感染的多重性^，并通过GFP荧光显微镜监测感染并增加细胞直径^53。

1. 通过在无血清昆虫培养基中将 Sf9 细胞培养至 2 × 10 个^{6 个} 细胞/mL 的密度来制备 P1 病毒储备液，加入 2% FBS，并将细胞接种在 24 深孔块中，最终体积为每孔 3 mL。向细胞中加入 120 μL P0 病毒原液。
2. 将块在27°C孵育，同时在微表情振荡器中以450rpm振荡66-72小时。在室温下以1,500× g 离心块20分钟，并将上清液收获到96深孔块中。作为P1病毒原液储存在远离光的4°C下。
3. 通过感染 50 mL Sf9 细胞（2 ×^{10 个 6 个} 细胞/mL 细胞密度）来制备 P2 病毒储备物，这些细胞在补充有 2% FBS 的无血清昆虫培养基中生长，并含有 250 μL P1 病毒储备液。将细胞在27°C下孵育，并以110rpm振荡。
4. 在66-72小时后收获P2病毒储备液，以1,500 ×克 离心20分钟，并在远离光的4°C下储存。
5. 通过用 1:200 （v/v） P2 病毒储备液感染所需体积的 Sf9 细胞（2 × 10 个⁶ 个细胞/mL 细胞密度）来制备 P3 病毒储备物。将细胞在27°C下孵育，并以110rpm振荡。
6. 66-72小时后，以1,500× g 离心20分钟，并通过收集上清液收获P3病毒，并储存在4°C，避光保存。

6. 转导表达检测

注:以下部分描述了小规模表达测试，可以进行修改，以便使用深孔模块对多个构建体进行并行测试。

1. 通过将 200 g PEG 10,000 和 12 g NaCl 溶解在 600 mL 双蒸 H₂O 中来制备 20% （w/v） 聚乙二醇溶液，搅拌至最终体积为 1,000 mL。高压灭菌溶液。
2. 将 300 μL 收获的 P1 病毒加入 24 深孔区块的孔中，向每个孔中加入 75 μL PEG 溶液。将块在18°C的微表情振荡器中孵育，同时以300rpm振荡5分钟，并将块在4°C下储存过夜。
3. 在18°C下以300rpm再次摇动块30分钟，并以3,000× g 离心块45分钟。使用移液管在微生物安全柜中丢弃上清液。
4. 在密度为 2 × 10^{6 个细胞} /mL 的 HEK293 培养基中制备悬浮适应的 HEK293 细胞，并将 3 mL 接种到每个含有病毒沉淀的孔中，补充 5 mM 丁酸钠。
5. 将块在30°C下与8%CO₂ 孵育，同时以200-250rpm振荡72小时。
   注:对于悬浮适应和祖先 HEK293 细胞系，供应商推荐的细胞培养过程中的 CO₂ 浓度不同，分别为 8% 和 5%。
6. 通过以 900 × g 离心 20 分钟收获细胞，并用 1 mL PBS 洗涤每个孔。
   注:吸出 10 μL 重悬细胞，并在荧光显微镜下用与 GFP 兼容的滤光片立方体观察细胞，以评估蛋白质表达和定位。吸出 10-15 μL 重悬细胞，并运行全细胞 SDS-PAGE 凝胶进行凝胶内 GFP 荧光检测⁵⁴。
7. 再次以900× g 离心20分钟。将沉淀冷冻在-80°C。

7. 高通量小规模测试纯化

注:以下步骤描述了 24 孔模块格式的快速测试纯化工作流程，用于筛选单个 SLC 的表达水平。有关该协议中使用的溶液的组成，请参见 表2 。

1. 向收获的细胞的每个孔中加入 1 mL HT 裂解缓冲液，并使用 24 头探针在 24 孔块中继续在冰上超声处理总长度 4 分钟（以 3 秒开启/15 秒关闭循环）。
2. 将内容物转移到 96 深的孔块中，加入 125 μL 洗涤剂原液，并用硅密封密封。在4°C下轻轻旋转块1小时。或者，将十二烷基麦芽糖苷（DDM）和胆固醇半琥珀酸酯（CHS）直接添加到24孔块中，并将它们置于4°C的摇杆上。
3. 在4°C下以2600× g 离心块20分钟，并将上清液转移到新的96深孔块中。
4. 制备 50% 用裂解缓冲液预平衡的高容量链球菌蛋白树脂储备液。
5. 向每个孔中加入 100 μL 重悬树脂原液。
6. 用硅密封盖住块并在4°C下旋转2小时，然后非常短暂地离心（至200 ×g）以除去粘附在盖子上的液体。
7. 将 96 孔滤板放在空块的顶部，并将树脂/上清液混合物转移到滤板中。用 800 μL HT 洗涤缓冲液冲洗深孔块的孔，并转移到过滤块中以收集最大量树脂。
8. 让缓冲液滴入或以 200 × g 短暂离心并收集流出物。将滤板放在新的洗涤块上，并用 800 μL HT 洗涤缓冲液洗涤树脂，让缓冲液滴落（或短暂离心）。再重复洗涤步骤两次，并以500 ×g 离心块3分钟以除去残留的HT洗涤缓冲液。
9. 将滤板放在 96 孔微量滴定板的顶部。加入 50 μL HT 洗脱缓冲液，在室温下摇动孵育 10 分钟。通过以500× g 离心3分钟洗脱样品。
10. 在 Coomassie 染色的 SDS-PAGE 凝胶上运行 15 μL 洗脱的样品以检查蛋白表达。将剩余的洗脱液样品加载到尺寸排阻色谱 （SEC） 或荧光检测尺寸排阻色谱 （FSEC） 系统上，以评估 DDM/CHS 中的蛋白质单分散性。

8. 大规模表达的转导

注:以下步骤是SLC表达的标准RESOLUTE协议。单个靶标需要进一步优化丁酸钠的表达时间、孵育温度和浓度。此外，我们通过在小规模实验中测试用于感染悬浮适应 HEK293 细胞的 P3 病毒的各种体积比来常规优化杆状病毒感染的多样性。这节省了时间，使用手头已有的技术和设备，并直接评估所需的实验结果。然而，这种经验方法需要对 P3 病毒的每次扩增进行重新优化，并且可以使用其他方法来量化杆状病毒颗粒 49,50,51,52。

1. 在 HEK293 培养基中放大悬浮适应 HEK293 细胞的所需体积。
2. 将悬浮适应的HEK293细胞稀释至1×10个⁶ 个细胞/mL并生长24小时（2 L滚瓶为170rpm，3 L滚瓶为105rpm）。
3. 每升细胞加入 30 mL P3 病毒，并加入 5 mM 丁酸钠。将细胞在37°C孵育48小时或在30°C孵育72小时。
4. 在孵育期间和之后， 关键步骤 是使用明场显微镜检查细胞，以检查微生物污染和细胞活力。使用荧光显微镜和与GFP兼容的滤光片立方体评估蛋白质表达和定位。
5. 通过以900× g 离心20分钟收获细胞。
6. 通过将细胞沉淀重悬于每升细胞培养物 10-15 mL PBS 中来洗涤细胞沉淀，然后再次以 900 × g 沉淀 20 分钟。
7. 将细胞沉淀在液氮中快速冷冻并储存在-80°C。

9. 蛋白质纯化

注:以下是用于 5 L 细胞培养物 SLC 纯化的标准 RESOLUTE 方法。对于每个 SLC 目标，必须根据经验确定最佳洗涤剂。提前准备基础缓冲液、去污剂储备液、洗涤液、洗脱液和 SEC 缓冲液（表 2）。有关测试的标准洗涤剂列表，请参阅 表 3。洗涤缓冲液中的 ATP 和 MgCl₂ 可减少热休克蛋白的污染。

1. 第1天
   1. 在设置为室温的水浴中解冻冷冻细胞沉淀。
   2. 用 135 mL 基础缓冲液和三种蛋白酶抑制剂混合物片剂制备增溶缓冲液。让片剂溶解。
   3. 用增溶缓冲液重悬解冻的沉淀。每 10-15 g 细胞沉淀使用 27 mL 增溶缓冲液，加入 DNase，然后倒入冰冷的 Dounce 匀浆机中。通过上下移动柱塞约 20 倍来均质化溶液，将均质器保持在冰上。
      注意:重悬体积需要根据靶蛋白和细胞沉淀质量进行优化，这将因收获时的细胞密度而变化。可以根据制造商的说明添加商业 DNase。DNase也可以使用既定的方案⁵⁵在内部表达和纯化。
   4. 加入洗涤剂储备溶液至1%终浓度。
      注:优化蛋白质纯化的 一个关键步骤 是确定用于 SLC 溶解和纯化的最佳去污剂，这必须根据经验进行确定。我们经常使用各种洗涤剂;每种药物单独使用并与琥珀酸半胆固醇酯联合使用，使洗涤剂与CHS的质量比保持在10:1。
   5. 将增溶混合物转移到 50 mL 锥形管中。在4°C下缓慢旋转1小时。
   6. 将溶液在4°C下以50,000× g 离心30分钟。 收集上清液。
   7. 用基础缓冲液平衡 4-6 mL 床体积的链球菌蛋白树脂。
   8. 将平衡的树脂加入溶解的上清液中，并在4°C下旋转2小时。
   9. 将溶液倒入重力流柱中，让溶液流过。
   10. 用 30 倍床体积的链球菌洗涤缓冲液以 3 个相等体积的步骤洗涤树脂。
   11. 加入 3-5 mL 洗脱缓冲液，孵育 15 分钟，并收集洗脱液。再重复此步骤四次，分别收集每个洗脱部分。
       注意: 关键步骤 是从链球菌蛋白树脂中洗脱蛋白质，每次添加洗脱缓冲液后孵育 15 分钟很重要。通常，由于残留洗涤缓冲液稀释洗脱缓冲液，第一洗脱液馏分含有较低浓度的蛋白质。因此，如果需要更高的最终蛋白质浓度，可以丢弃第一个洗脱液部分。或者，也可以使用SDS-PAGE分析所有连续洗脱液中的蛋白质浓度，以优化方案。
   12. 通过紫外吸光度光谱法测量蛋白质浓度，合并所需的洗脱馏分，并以 1:5 （w/w） 至 1:10 （w/w） 的比例加入 3C 蛋白酶。
   13. 在4°C下缓慢旋转过夜。
       注意:仅当需要删除 GFP 标签时，才需要步骤 9.1.12 和 9.1.13。如果不需要删除标签，请直接执行步骤 9.2.4。或者，蛋白质可以在4°C下保持过夜，以便第二天继续。此外，对于稳定性降低的SLC，可能需要优化蛋白酶浓度、孵育期和温度。3C 蛋白酶在很宽的温度范围内具有活性，可实现最适合各种 SLC 的优化。
2. 第2天
   1. 用 SEC 缓冲液平衡 2-4 mL 床体积的钴金属亲和树脂。
   2. 将平衡的钴金属亲和树脂加入过夜的3C反应混合物中，并在4°C下旋转1小时。
   3. 将溶液倒入重力流柱中并收集流出物。
   4. 通过在4°C下以3,000× g 旋转，将流出物浓缩在100kDa截止离心过滤器中，每5分钟轻轻混合一次样品，直到达到所需的SEC进样体积。
   5. 使用 SEC 缓冲液平衡基于葡聚糖琼脂糖的尺寸排阻色谱柱。SEC程序应在4°C（冷却室或冷室）下进行。
      注: 关键步骤:根据SLC的寡聚状态，可以使用不同的色谱柱（例如基于琼脂糖的尺寸排阻色谱柱）进行SEC。
   6. 将样品注入样品回路并运行SEC程序，其流速使色谱柱压力低于色谱柱制造商的规格。使用馏分收集器，在整个 SEC 运行中自动收集 0.3 mL 馏分。
   7. 汇集峰馏分，测量UV吸光度，并通过在4°C下以3,000 × g 旋转，在100 kDa截留离心浓缩器中浓缩至所需的体积/浓度。

结果

SLC基因可以从RESOLUTE pDONR质粒克隆到BacMam载体中，用于哺乳动物表达
所描述的克隆、表达和纯化方案已被证明对跨多个蛋白质折叠的许多 SLC 转运蛋白是成功的。然而，这些程序包括几个用于监测进展的检查点，允许优化以考虑表达、蛋白质折叠、脂质和去污剂依赖性稳定性以及对缓冲液条件的敏感性的差异。

SLC克隆和小规模表达过程中的检查点
在克隆步骤中，应使用琼脂糖凝胶电泳来确保PCR和酶切产物的正确大小。同样，Gateway和转座反应可以通过集落PCR反应进行验证（图2A，B）。杆状病毒的产生可以根据需要使用标准技术进行监测 49,50,51,52。

讨论

由于缺乏对转运蛋白功能的系统表征，SLC靶向疗法的开发仍然受到阻碍。这导致相对于 GPCR 和离子通道⁶³ 靶向该蛋白质类别的药物不成比例地减少，尽管它们在正常和病理生理过程中具有许多作用。RESOLUTE是一个国际联盟，旨在开发尖端的研究技术和工具，以加速和改进当前的SLC研究。作为RESOLUTE的一部分，我们开发了这些方案，用于人类SLC的高效克隆、构建体筛选以及大规模表达和纯化。

在这里，我们描述了可扩展的SLC克隆和表达方法，这些方法成功地用于系统地探索人类SLC转运蛋白，包括推定的和孤立的SLC。 值得注意的是，以这种方式纯化的SLC已成功用于转运蛋白结构，生物化学，功能，结合剂生成和小分子结合的后续研究。我们经常采用这种方法来纯化毫克量的各种SLC，在最佳条件下，整个方案，包括克隆和组织培养步骤，可以在4-5周内完成。

我们的方法针对经济性和并行性进行了优化，可以系统地评估多个目标。然而，这种高通量方法也很容易适应通过使用不同的克隆引物或载体来并行生成具有各种截断或...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
3C 蛋白酶	生产的
50 或 100 kDa 截留离心浓缩器	Sartorius	VS0242
5-环己基-1-戊基-β;-D-麦芽糖苷	Anatrace	C325	CYMAL-5
96 孔杆粒纯化试剂盒	Millipore	LSKP09604	Montage 质粒小量制备
96 孔模块 （2 mL）	GreinerBio-One	780271
胶粘剂塑料密封件	Qiagen	19570	胶带垫
琼脂糖体积排阻色谱柱	Cytiva	29091596	Superose 6 Increase 10/300 GL
Benzonase DNAse	内部
BisTris	Sigma Aldrich	B9754
胆固醇半琥珀酸酯 Tris 盐	Anatrace	CH210	CHS
钴金属亲和树脂	Takara Bio	635653	TALON 金属亲和树脂
D（+）-生物素	Sigma Aldrich	851209
葡聚糖-琼脂糖尺寸排阻色谱柱	Cytiva	28990944	Superdex 200 Increase 10/300 GL
洋地黄皂	Apollo Scientific	BID3301
Dounce 组织研磨机 （40 mL）	DWK 生命科学	357546
不含 EDTA 的蛋白酶抑制剂混合物	Sigma Aldrich	4693132001	cOmplete，不含 EDTA 的蛋白酶抑制剂混合物
牛血清	Thermo Fisher	10500064
Fos-Choline-12	Anatrace	F308S	FS-12
甘油	Sigma Aldrich	G5516
糖薯蓣皂苷元	Anatrace	GDN101	GDN
重力流色谱柱	Cole-Parmer	WZ-06479-25
HEK293 培养基	Thermo Fisher	12338018	FreeStyle 293 培养基
HEPES	Apollo Scientific	BI8181
亲水性中性硅胶 UHPLC 色谱柱	Sepax	231300-4615	Unix-C SEC-300 4.6 x 150
咪唑	Sigma Aldrich	56750
昆虫转染试剂	Sigma Aldrich	71259	试剂
月桂基麦芽糖 新戊二醇	Anatrace	NG310	LMNG
氯化镁 六水合	Sigma Aldrich	M2670
微量表达摇床	Glas-Col	107A DPMINC24CE
NaCl	Sigma Aldrich	S9888
正癸基-β;-D-麦芽糖苷	Anatrace	D322	DM
正十二烷基-b-D-麦芽吡喃糖苷	Anatrace	D310	DDM
正十二烷基-N，N-二甲胺-N-氧化物	Anatrace	D360	LDAO
n-壬基-β;-D-吡喃葡萄糖苷	Anatrace	N324S	NG
n-辛基-d17-&β;-D-吡喃葡萄糖苷	Anatrace	O311D	OGNG
十八甘醇单十二烷基 醚	Anatrace	O330	C12E8
辛基葡萄糖 新戊二醇	Anatrace	NG311	OGNG
磷酸盐缓冲盐水	Sigma Aldrich	D8537	DPBS
聚氧乙烯（10）十二烷基醚	Anatrace	AP1210	C12E10
聚氧乙烯（9）十二烷基醚	Anatrace	APO129	C12E9
组织培养板用多孔密封	VWR	60941-084	生物培养用人造丝薄膜
	蛋白酶 K New England Biolabs	P8107S
重组酶混合物	Thermo Fisher	11791020	Gateway LR Clonase II
无血清昆虫培养基	Gibco	10902088	Sf-900 II 无血清培养基
丁酸钠	Sigma Aldrich	303410
Sonicator 24 头探头	Sonics	630-0579
Sonicator 电源装置		Sonics VCX 750
Strep-Tactin 树脂	IBA 生命科学	2-5030-025	Strep-TactinXT 4Flow 高容量树脂
蔗糖	SigmaAldrich	S7903
蔗糖十二酸酯	Anatrace	S350	DDS
悬浮适配的 HEK293 细胞	Thermo Fisher	A14527	Expi293F
转染试剂	Sigma Aldrich	70967	GeneJuice 转染试剂