本文介绍了一种在小鼠中进行圆头精子细胞注射(ROSI)的方法,该技术具有潜在的临床应用价值,并可用于研究胚胎发育背后的机制。
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本文介绍了一种在小鼠中进行圆头精子细胞注射(ROSI)的方法,该技术具有潜在的临床应用价值,并可用于研究胚胎发育背后的机制。
圆形精子细胞具有单倍体遗传物质,是成熟精子的前体细胞。通过创新的圆形精子细胞注射技术(ROSI),可成功使卵母细胞受精并发育为可存活的胎儿。1995年,科学家首次利用ROSI技术成功诞生了小鼠胎儿,实现了里程碑式的突破。此后,ROSI逐渐成为解析胚胎发育复杂机制的关键工具,并在加速小鼠世代更替、制备基因修饰小鼠等多种应用中展现出重要潜力。1996年,首例通过ROSI技术诞生的人类胎儿成功出生,标志着该技术在人类生殖领域的又一重要进展。然而,该方法在临床应用中的成功率起伏不定,至今尚未在临床实践中得到广泛应用,主要原因在于其出生效率较低,且胎儿安全性尚未得到充分验证。本文系统阐述了在小鼠中实施ROSI技术的精确操作方法,旨在为相关基础研究及其潜在的临床应用提供新的见解。
精子发生的最后阶段涉及将圆形的精子细胞转化为结构完整的精子,其特征是具有明显的头部、颈部和细长的尾部结构1。这一转化过程伴随着细胞形态的显著变化,包括细胞核内染色质的浓缩、组蛋白被鱼精蛋白取代、顶体的形成、线粒体鞘的发育、中心粒的迁移与消失、尾部结构的形成以及细胞残余物的清除2。
1992年,首例通过卵胞浆内单精子注射(ICSI)技术成功诞生的人类胎儿出生3。自此以后,研究人员开始探索利用具有与成熟精子相同单倍体遗传组成的圆型精子细胞(round spermatids)来使卵母细胞受精并维持可存活妊娠的可能性2,4。随后,1996年,首例通过圆型精子细胞注射(ROSI)技术孕育的人类胎儿顺利出生5,6。值得注意的是,由于小鼠卵母细胞膜在注射过程中易受损伤,小鼠中的ICSI和ROSI研究进展落后于人类。这一问题随着压电膜穿刺装置(Piezo membrane-breaking device)的引入得以成功解决。因此,1995年,首只通过ROSI技术诞生的小鼠成功出生。此外,针对其他多种动物的ROSI研究也....
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本实验所用的 B6D2F1 (C57BL/6 x DBA/2)、C57BL/6 和 ICR 小鼠均购自北京维通利华实验动物技术有限公司(中国北京)。所有动物处理均遵循经吉林大学第一医院实验动物伦理委员会批准的实验程序和标准(批准编号:20200435)。
1. 相关试剂的准备
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我们首先通过考察卵母细胞激活(AOA)对胚胎发育能力的影响来开展研究。实验设计的示意图见图1A。在精子注射前,卵母细胞接受AOA处理(A-ICSI)或不进行处理(ICSI)。胚胎发育的详细数据见表1。结果显示,A-ICSI组与ICSI组在卵裂率、囊胚率和出生率方面均无显著差异(P > 0.05;图1B)。这些结果表明,使用10 mM SrCl2处理20分钟的AOA方案未对胚胎的发育潜能产生影响。
先前有报道称,通过流式细胞术(FACS)或在显微镜下直接肉眼观察所筛选的ROSI胚胎,在发育效率上未见明显差异22。本实验采用FACS技术来鉴定圆形精子细胞(RS)(图2A,B)。在显微镜下,小鼠圆形精子细胞直径约为10 µm,中央具有类似突起的核仁结构(图2C
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辅助卵母细胞激活
ROSI 的一个关键前提是辅助卵母细胞激活(AOA),因为圆头精子细胞本身无法启动卵母细胞的激活。目前,在小鼠中最成熟的方法是使用氯化锶23,24,而在人类应用中最为先进的方法则是电激活13,14。卵母细胞激活的时机也极为重要。文献报道显示,在小鼠中最佳的激活策略是先激活卵母细胞,然后再注射圆头精子细胞25。这与传统的受精过程相反,后者是精子首先进入卵母细胞,随后释放磷脂酶 C ζ 以激活卵母细胞26。Satoshi Kishigami 及其同事开展的专门研究表明,ROSI 在预先激活或后激活的卵母细胞中形成雄性原核的能力存在差异。为了实现高效的后代出生率,两种操作都必须在卵母细胞进入 G1 期之前完成25
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作者声明不存在财务或其他利益冲突。
我们衷心感谢赵文洁在通过流式细胞术分选圆形精子细胞过程中提供的宝贵帮助,以及感谢王芳在小鼠胚胎移植方面的专业支持。本工作部分得到了吉林省自然科学基金(编号:YDZJ202301ZYTS461)的资助。我们感谢 Bullet Edits Limited 对 manuscript 的语言编辑和校对工作。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| CaCl22H2O | 西格玛 | C7902 | CZB 液体的配制 |
| 葡萄糖 | 西格玛 | G6152 | CZB 液体的配制 |
| HEPES-Na(碱性) | 西格玛 | H3784 | CZB 液体的配制 |
| Hoechst 33342 | 碧云天 | C1025 | FACS |
| 人绒毛膜促性腺激素(HCG) | 宁波第二激素厂 | HCG | 促排卵药物 |
| 透明质酸酶 | 西格玛 | H3506 | 去除卵母细胞周围的颗粒细胞 |
| KCl | 西格玛 | P5405 | CZB 液体的配制 |
| KH2PO4 | 西格玛 | P5655 | CZB 液体的配制 |
| KSOMaa | Caisson 实验室 | IVL04-100ML | 含氨基酸的优化钾盐单纯培养基 |
| L-谷氨酰胺 | 西格玛 | G8540 | CZB 液体的配制 |
| M2 | 西格玛 | M7167-50ML | 操作液 |
| MgSO47H2O | 西格玛 | M1880 | CZB 液体的配制 |
| Na2-EDTA2H2O | 西格玛 | E5134 | CZB 液体的配制 |
| NaCl | 西格玛 | S5886 | CZB 液体的配制 |
| NaHCO3 | 西格玛 | S5761 | CZB 液体的配制 |
| 60% 乳酸钠糖浆,密度 = 1.32 g/L | 西格玛 | L7900 | CZB 液体的配制 |
| 丙酮酸钠 | 西格玛 | P4562 | CZB 液体的配制 |
| 压电钻头(ICSI) | 艾本德 | piezoXpert | 压电膜穿孔 |
| 孕马血清促性腺激素(PMSG) | 宁波第二激素厂 | PMSG | 促排卵药物 |
| PVA | 西格玛 | P8136 | CZB 液体的配制 |
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