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方法文章

测量细菌定植 拟南芥 水培条件下的根系

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DOI:

10.3791/66241

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2024年3月1日

本文内容

摘要

植物根际促生细菌(PGPR)在根际的定殖对其促生作用至关重要。因此,有必要标准化细菌根际定殖的检测方法。本文描述了一种可重复的定量细菌在根表定殖的方法。

摘要

测量细菌在拟南芥(Arabidopsis thaliana)根部的定殖是植物-微生物互作研究中最常见的实验之一。为了提高实验的可重复性,有必要建立一种标准化的方法来定量根际中的细菌定殖。我们首先在水培条件下培养无菌的拟南芥(A. thaliana),然后将细菌接种至根际,终浓度为 OD600 0.01。接种后第2天,采集根组织并用无菌水清洗三次,以去除未定殖的细菌细胞。随后称量根部重量,并通过涡旋振荡收集根表定殖的细菌细胞。将所得菌悬液用磷酸盐缓冲液(PBS)进行梯度稀释,之后涂布于Luria-Bertani(LB)琼脂培养基上。平板在37 °C下培养10小时后,计数LB平板上的单菌落,并将其标准化以表示定殖在根部的细菌数量。该方法可用于单菌互作条件下根际细菌定殖的检测,具有良好的可重复性。

引言

检测单一细菌菌株在根际定殖的方法包括定量和定性方法。对于定性方法,应使用持续表达荧光的菌株,并通过荧光显微镜或激光共聚焦仪器观察荧光的分布和强度1,2。这些策略能够较好地反映细菌在原位(in situ)的定殖情况3,但在定量方面不如传统的平板计数法准确。此外,由于显微镜只能显示部分根区,有时可能受到主观偏差的影响。

本文介绍了一种定量方法,包括收集定植在植物根部的细菌细胞,并通过平板计数菌落形成单位(CFU)。该方法基于稀释与涂布平板技术,可对从植物根部剥离的定植菌株进行计数,从而计算根部定植的细菌总数4,5。

首先,在水培条件下培养拟南芥(A. thaliana),然后将细菌细胞接种至根际,终浓度为 0.01 OD600。接种后 2 天采集受感染的根组织,并用无菌水清洗以去除未定植的细菌细胞。进一步收集定植在根部的细菌细胞,用磷酸盐缓冲液(PBS)稀释后,接种于Luria-Bertani(LB)琼脂培养基上。在 37 °C 培养 10 小时后,计数 LB 平板上的单菌落,并进行归一化....

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方案

1. 无菌水培 A. thaliana 培养

  1. 准备 A. thaliana 幼苗。
    1. 制备培养 A. thaliana 幼苗的培养基,其成分为含2%(wt/vol)蔗糖和0.9%(wt/vol)琼脂的1/2 MS培养基(Murashige和Skoog)。
    2. 在培养基凝固前,将其倒入无菌的方形培养皿(13 cm × 13 cm)中。避免空气干燥,以保持湿度。
    3. 将 A. thaliana 种子浸入装有1 mL无菌水的2 mL微量离心管中,在4 °C下放置超过12小时,然后用1 mL 2%(vol/vol)NaClO处理2分钟进行种子灭菌。
    4. 用无菌水彻底清洗种子六次,以去除NaClO溶液。使用无菌的1 mL枪头将种子播种到含有MS琼脂培养基的培养皿中。
    5. 用透气医用胶带密封培养皿,并将其垂直放置于光照培养箱中培养1周。设置光照培养箱的光/暗周期为16小时/8小时,温度维持在23 °C,湿度维持在40%–60%。
  2. 移栽 A. thaliana。
    1. 在孔径为40 µm的细胞筛上打5 mm的孔,并对其进行灭菌处理。
    2. 将三株7日龄的 A. thaliana

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结果

为检验该方法检测细菌定植能力的准确性 A. thaliana 根际,我们进行了接种 Bacillus velezensis SQR9 野生型及其衍生突变体 Δ8mcp 进入 A. thaliana 根际分别。该 Δ8mcp 是一种缺失所有编码趋化受体基因的突变体,其定植能力显著降低6我们通过现有的根部定殖检测方法,在接种后2天测定了其定殖情况。结果显示,根部定殖显著减少 Δ8mcp,表明该条件和方法能够有效检测细菌定植情况(图1C).

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讨论

为了获得良好的可重复性,本实验方案的定植检测过程包含四个关键步骤。首先,必须确保每次实验接种的细菌细胞数量完全相同。其次,需要用无菌水严格控制未定植细菌的清洗强度。第三,每个样品的稀释过程在进行前都必须进行涡旋振荡,使样品充分混匀,以避免因细菌易在微量离心管中沉降的特性而导致的吸液误差。因此,我们建议在每次吸液前使用涡旋振荡器混匀细菌悬液。第四,整个操作过程中必须严格保证无菌条件,以避免任何可能的污染。

该方法用于检测定植在根表的细菌。除了根表细菌外,内生细菌和真菌也会定植于植物根际7。利用本文所述的实验方案仍可检测内生细菌的定植能力,但需将根组织研磨以释放内生细菌。然而,内生真菌与细菌不同,主流方法大多采用透射电子显微镜(TEM)观察菌丝的生长情况,这是一种类似于荧光标记细菌进行可视化的定性检测方法8。

在比较不同菌株的定殖能力时,不应将它们接种于同一块6孔板中,以避免细菌挥发性物质9

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披露

作者声明,他们对本文内容不存在利益冲突。

致谢

本工作由国家自然科学基金(32370135)、中国农业科学院创新工程(CAAS-CSAL-202302)、江苏农林职业技术学院科技项目(2021kj29)资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
6孔板Corning3516
滤膜细胞筛SolarbioF8200-40µm
酶标仪 TecanInfinite M200 PRO
MS培养基HopebioHB8469-5
NaClOAlfaL14709
植物凝胶Sigma-AldrichP8169
方形培养皿Ruiai ZhengtePYM-130
Vortex Genie2涡旋振荡器Scientific IndustriesG560E

参考文献

  1. Wang, B., Wan, C., Zeng, H. Colonization on cotton plants with a GFP labeled strain of Bacillus axarquiensis. Curr Microbiol. 77 (10), 3085-3094 (2020).
  2. Zhai, Z., et al. A genetic tool for production of GFP-exp....

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标签

拟南芥根根际细菌植物-微生物互作菌落形成单位根系清洗PBS缓冲液LB琼脂贝莱斯芽孢杆菌