卵寄生虫中的RNA干扰， Trichogramma dendrolimi Matsumura

摘要

RNA干扰（RNAi）的操纵在许多体型较小的寄生虫物种（如 黄蜂毛 滴虫）中提出了巨大的挑战。本研究描述了一种有效的 RNAi 方法。本方法为研究 毛滴 虫黄蜂的基因调控提供了一个稳健的模型。

摘要

卵寄生虫（Trichogramma spp）被认为是针对农业和森林中各种鳞翅目害虫的有效生物防治剂。Trichogramma后代的未成熟阶段在宿主卵中发育，表现出显着的矮小（成体长度约为0.5毫米）。RNA干扰（RNAi）方法已成为阐明众多生物体基因功能的重要工具。然而，在某些小型寄生虫物种（如Trichogramma）中操纵RNAi通常带来了重大挑战。在这项研究中，我们提出了一种有效的 RNAi 方法。概述的程序包括从宿主卵中获取和分离单个 T. dendrolimi 标本、双链 RNA （dsRNA） 的设计和合成、T. dendrolimi 蛹的体外移植和培养、dsRNA 的显微注射，以及随后通过 RT-qPCR 分析评估靶基因敲低。本研究为在树状锥虫中进行RNAi实验提供了一个全面、视觉上详细的程序，从而使研究人员能够研究该物种的基因调控。此外，该方法适用于其他毛滴虫物种的RNAi研究或显微注射，只需稍作调整，使其成为在其他内寄生物种中进行RNAi实验的宝贵参考。

引言

毛滴虫属是一组卵类寄生虫，已被广泛用作高效生物防治剂，可对抗全球农业和森林生态系统中的各种鳞翅目害虫1,2,3,4。大规模饲养的Trichogramma的应用为害虫的可持续管理提供了一种环境友好的方法^5,6,7。通过研究基因调控和基因组编辑的方法¹⁰，了解毛滴虫的分子生物学，为提高这些生物^防治剂的批量饲养效率和田间性能提供了宝贵的见解^8,9。

自 1998 年在秀丽隐杆线虫中发现双链 RNA （dsRNA） 介导的特异性遗传干扰以来，RNA 干扰 （RNAi） 方法已发展成为通过抑制靶基因表达来探索生物体调控机制的重要遗传工具包¹¹。RNAi实验已成为一种标准方法，广泛应用于研究多种昆虫物种的基因功能^12,13。然而，RNAi的操作在许多寄生物种中提出了巨大的挑战，特别是在属于内寄生的Chalcidoidea家族^{的物种中14,15,16}。RNAi方法已在至少13种寄生虫^物种14,15,16,17,18,19中记录。其中，RNAi方法已在Nasonia黄蜂中全面进行，并适用于整个发育阶段，包括胚胎、幼虫、蛹和成虫14,15,16。值得注意的是，Nasonia 黄蜂是体外寄生虫，它们的后代在宿主蛹和蛹之间的间隙中发育，使它们能够在体外培养并使其耐受某些治疗，例如显微注射。与 Nasonia 黄蜂不同，Trichogramma 个体在宿主卵内经历整个胚胎、幼虫和蛹发育。胚胎和幼虫阶段的层（可能阻碍dsRNA的通透性）、易受损害以及体外存活困难是巨大的障碍20,21,22。此外，Trichogramma个体的体型很小，成年或蛹的长度约为~0.5毫米，这使得它们非常复杂，无法操纵^20,21,22。

在本研究中，我们概述了在 Trichogramma denrolimi Matsumura 中进行 RNA 干扰 （RNAi） 实验的综合程序。该程序包括以下程序:（1）双链RNA（dsRNA）的设计和合成，（2）丹罗利米蛹的显微注射，（3）这些蛹的移植和体外培养，以及（4）通过RT-qPCR分析检测靶基因敲低。为RNAi实验选择的靶基因是铁蛋白重链同源性（Ferhch）。FerHCH是一种铁结合蛋白，含有具有抗氧化能力的铁氧化酶中心，促进Fe²⁺氧化为Fe³⁺。它通过维持氧化还原平衡和铁稳态，在各种生物的生长发育中起着不可或缺的作用。氟乙烯氯环己烷的消耗可导致铁的过度积累，导致不可逆转的组织损伤，并经常导致显著的表型改变，包括生长缺陷、畸形和死亡^23,24。本研究为在T. denrolimi中进行RNAi提供了分步指南，这对于在更广泛的Trichogramma黄蜂背景下研究基因功能非常宝贵。

方案

注意:有关本协议中使用的所有材料、仪器、软件和试剂的详细信息 ，请参阅材料表 。

1. 昆虫培养物的收集和维护

1. 使用 1:5 （v/v） 阿拉伯胶粉和水^25,26 的溶液，将一组 ~5,000 个 Corcyra cephalonica （Stainton） 卵粘贴在 9 cm x 16 cm 的卡片上。
   注意:避免在卡片上附加过多的宿主卵，因为过度拥挤会使后续的转移和解剖程序变得不切实际。
2. 为了防止宿主卵孵化，将宿主卵卡置于30分钟的紫外线（UV）照射下（图1-i）。随后，将装有灭活鸡蛋的纸切成厚度为1厘米，直径为8厘米的鸡蛋卡，每张包含约300-500个鸡蛋（图1-ii）25,26,27。
3. 将一组 80-120 只 T. denrolimi 黄蜂引入直径为 2 厘米、长度为 8 厘米的玻璃管中。用棉花密封管子。
   注意:将黄蜂保持在25±1°C的温度下，光/暗循环为16小时，黑暗8小时，并保持约75%的相对湿度。
4. 向黄蜂出示寄主卵卡进行寄生（图1-ii）。让黄蜂将卵沉积在宿主卵中 6 小时，然后立即取出黄蜂。
   注意:避免过度延长寄生期，因为这会导致寄主卵中 T. denrolimi 后代过度拥挤，导致后代黄蜂死亡率增加^28,29。

2. dsRNA的合成

1. 设计含有 T7 启动子的引物组，用于合成双链 RNA （dsRNA）。从靶基因 （Ferhch） 中选择一个 300-400 bp 的片段进行 dsRNA 合成。
2. 获取商业合成的引物组，用于生产靶基因的dsRNA，以及用作阴性对照的dsGFP 。
3. 按照制造商^{的方案 9}，使用参考试剂盒从 100 只 T. denrolimi 黄蜂中提取 RNA 含量。检查RNA含量的质量;如果 OD260/OD280 的值范围为 1.8 到 2.0⁹，则继续。
4. 用 2 μL 5x 缓冲液 （1 U/50 μL）、1 μL DNAse （1 U/50 μL） 和 6.5 μL RNA （~100 ng/μL）、0.5 μL H₂O 在 42 °C 下纯化 RNA 含量 2 分钟。
5. 进行逆转录酶聚合酶链反应 （RT-PCR） 以生成含有 10 μL 纯化 RNA （~100 ng/μL）、4 μL 5x 缓冲液 （1 U/50 μL）、1 μL 酶混合物 I （1 U/50 μL） 和 4 μL H₂O 的 cDNA 模板。 使用以下设置进行RT-PCR: 37°C15分钟， 85°C5秒。将cDNA产物储存在-4°C直至使用。
6. 根据参考的预混液（10 μL Taq II [1 U/50 μL]、0.8 μL 正向引物 [0.4 μM]、0.8 μL 反向引物 [0.4 μM]、0.8 μL DNA 模板 [40 ng/μL] 和 7.6 μL H₂O）进行聚合酶链反应 （PCR） 扩增 dsRNA 序列。使用以下设置进行PCR:94°C2分钟;35 次循环，其中 94 °C 30 秒，60 °C 30 秒，72 °C 30 秒;72°C2分钟。
7. 通过在2.0%琼脂糖凝胶^5,9上电泳评估PCR产物的质量，并通过Sanger测序确认目标序列。
8. 根据制造商的指南^9,23，使用凝胶提取试剂盒纯化PCR产物。
9. 利用RNAi系统用10μL 2x缓冲液（0.02 U / μL），8 μL DNA模板（75ng / μL）和2μL酶混合物（1U / 50μL）合成靶基因的dsRNA，设置如下:37°C30分钟，70°C10分钟和25°C20分钟。用 30 μL 无核酸酶水洗脱合成的 dsRNA。
10. 通过在 1.0% 琼脂糖凝胶 ^5,9 上观察 dsRNA 产物的质量来评估其质量。将 dsRNA 稀释至 7,000 ng/μL。 检查dsRNA产物的质量;如果 OD260/OD280 的值范围为 1.8 到 2.0⁹，则继续。将dsRNA产物储存在-20°C直至使用。

3. T. denrolimi 蛹的移植

1. 在25±1°C下培养寄生的寄主卵约8天，保持16小时的光照/8小时的黑暗循环和~75%的相对湿度。寄生的宿主卵将在 5 天后^{变黑 30} （图 1-iv，v）。
2. 将宿主卵卡转移到解剖显微镜上。使用一对钨针（图1-vi）小心地从宿主卵中取出绒毛膜（图1-vii），并从内部取出蛹（图1-viii）^5,17,18。
   注意: 解剖针的尖端应小于 0.05 毫米。
3. 为基材准备一个干净的板。倒出 10-15 mL 的 15 g/L 琼脂溶液，使其自然冷却（图 2-i）。
   注意:将琼脂溶液与0.5g链霉素混合，以抑制 体外污染物的生长。
4. 使用消毒刻刀蚀刻几个深度为 0.2-0.3 毫米、宽度为 0.4-0.8 毫米的凹槽（图 2-ii）。
5. 使用小刷子（图2-iii）将解剖的宿主卵中的蛹移植到琼脂基质上的一个凹槽中（图2-iv）。
6. 重复步骤3.4和3.5，将100-300个蛹逐个移植到凹槽中（图2-v）。

4. 将 dsRNA 显微注射到 T. denrolimi 蛹中

1. 使用玻璃针拔拔器拉动玻璃毛细管（图3-i，ii）。在拔针器上将热量设置为 280，将速度设置为 170，将延迟设置为 250，将拉力设置为 30（图 3-iii）。准备用于显微注射的多个毛细管玻璃针（图3-iv，v）。
2. 使用研磨板对玻璃针的尖端进行斜面处理（图3-vi）。
   注意: 确保注射针的尖端保持锋利;否则，可能导致蛹死亡或阻碍试剂流过针头（图3-vii）。
3. 使用微进样泵将约2μL含有7,000ng / μL的dsRNA注射液加载到制备的注射针中（图3-vii）。
4. 将含有数百个蛹的琼脂底物转移到复合显微镜的平台上（图3-viii）。
5. 小心地将注射针插入 T. denrolimi 蛹的腹部，与晶状体下方的腹部成 ~30° 角（图 3-ix）。
6. 逐渐将~5nL的注射液（步骤4.3）尽可能轻柔地注入 T. denrolimi 蛹中。
   注意:当注射dsRNA溶液时， T. denrolimi 蛹可能会略微膨胀。向蛹中注射过量的溶液或使用开口过大的针头可能会导致蛹过早死亡。当针头在注射几到几十个蛹后堵塞时更换针头。
7. 重复步骤4.5和4.6，将dsRNA逐个注射到600个蛹中。
   注意:为了进行可靠的RT-qPCR分析，应从至少100个蛹中分离出RNA含量。在dsRNA处理中注射至少600个蛹进行3次重复，在 dsGFP 阴性对照中注射3次重复⁹。

5. T. denrolimi 蛹的孵化

1. 将含有注射蛹的底物转移到25±1°C的培养箱中，光/暗循环为16小时/8小时，RH为~75%。
2. 每次处理孵育约700 T. denrolimi 蛹24小时或48小时。从一组 100 个蛹中提取 RNA 内容，每次重复⁹.
   注意:从样品中取出萎缩的蛹（死蛹）;否则，可能会导致基因表达检测出错。
3. 每次处理孵育~50 T. denrolimi 蛹，直到黄蜂出现（图3-x）。记录出现率和畸形率。

6. 靶向基因表达检测

1. 使用设计工具设计用于RT-qPCR的靶基因和参考基因的引物集。
   注意:确保RT-qPCR引物的序列不与dsRNA的目标区域重叠。
2. 在RT-qPCR分析中采用基因 叉头盒O （FoxO）作为参考基因; FoxO 的引物之前已有^{报道 9}.
3. 获得商业合成的引物组。使用 10 μL Taq II （1 U/50 μL）、0.8 μL 正向引物 （0.4 μM）、0.8 μL 反向引物 （0.4 μM）、0.8 μL 模板 （10 ng/μL） 和 7.6 μL H₂O 进行 RT-qPCR。 使用以下设置进行 RT-qPCR:95°C 30 秒;35 次循环，其中 95 °C 持续 5 秒，57 °C 持续 30 秒，72 °C 持续 30 秒;95°C10秒;60°C5秒，95°C5秒。
4. 使用^2-ΔΔCt方法计算目标基因^的表达值^9,25。
5. 采用Kruskal-Wallis检验分析不同治疗（dsFerhch、 dsGFP、非注射）影响下靶基因的表达。
   注意:避免使用参数检验（例如 ，t 检验）进行事后比较，因为数据的异方差性和非正态性可能会导致错误的结论²⁵.

结果

注射dsFerhch的T. denrolimi蛹的出现率显著低于注射dsGFP或未注射的蛹（表1）。在新出现的黄蜂中，51.85%的T. denrolimi黄蜂经受dsFerhch后发育出畸形的小翅膀。在注射dsGFP或未注射任何疫苗的黄蜂中未观察到变形的黄蜂（表1）。此外，注射dsFerhch的T. denrolimi蛹的腹部表现出黑色素，这是铁代谢异常的表型²³。在注射dsGFP或未注射任何注射的T. denrolimi蛹中未观察到黑色素（图4）。

RT-qPCR分析显示，与注射 dsGFP（1.4514±±0.5402;P = 0.0415）。然而，它与...

讨论

Trichogramma黄蜂被认为是有效的生物防治剂，专门针对农业和林业中的一系列鳞翅目害虫¹。这些体型较小的黄蜂在宿主卵中经历其未成熟阶段，这一特征在进行 RNAi 实验时提出了挑战 ^5,18。本研究为在T. denrolimi中进行RNAi实验提供了全面的视觉指南。鉴于毛滴虫物种之间共有的生物学特征，该程序可以很容易地适用于其他毛滴虫物种和内寄生物种的RNAi研究或显微注射，并进行一些调整。

该程序引入了几种创新方法，促进了 dsRNA 含量的高效显微注射，简化了 T. denrolimi 的 RT-qPCR 过程，并优化了 T. denrolimi 蛹的移植和体外培养。根据这项研究，移植蛹的出现率达到90%，无需任何注射。当移植的蛹进行dss GFP注射时，这些蛹的出苗率...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
2x ES Taq MasterMix（染料）	Cowin Biotech，中国	CW0690H	dsRNA序列
20x PBS缓冲液，DEPC处理（7.2-7.6）	Sangon Biotech，中国	B540627-0500	dsRNA
琼脂条	Shishi Globe Agar Industries Co.，Ltd，中国	n/a	制作培养基
氨苄青霉素钠	Sangon Biotech，中国	A610028	制作培养基
Bioer 恒温金属浴	BIOER， 中国	MB-102	合成 dsRNA
硼硅酸盐玻璃毛细管	WPI， 美国	1B100-4	拉毛细管玻璃针
洁净工作台	Airtech， 中国	SW-CJ-1FD	提取
RNA 双蒸水	Sangon Biotech， 中国	A500197-0500	稀释 cDNA
环境检测箱	松下，日本	MLR-352H-PC	培养 T. denrolimi
Eppendorf 离心机	Eppendrof， 德国	5418R	储存 RNA 含量
Eppendorf FemtoJet 4i	Eppendrof， 德国	FemtoJet 4i	注射 T. denrolimi
Eppendorf 冷冻离心机	Eppendrof， 德国	5810R	离心
乙醇溶液（75%，无RNase）	阿拉丁， 中国	M052131-500ml	提取RNA
凝胶提取试剂盒	Omega， USA	D25000-02	提取cDNA
GUM	语 Solarbio， 中国	CG5991-500g	制作蛋卡
丙醇	阿拉丁， 中国	80109218	提取RNA
基于激光的微量移液器拉拔器	美国 SUTTER	P-2000	拉毛细管玻璃针
Microloader	Eppendrof， 德国	20 µL	加载 dsRNA
多样品组织研磨仪	中国地衣	LC-TG-24	研磨 T. denrolimi
针磨机	美国萨特	BV-10-E	研磨毛细管玻璃针
无核酸酶水	桑贡生物技术公司，中国		稀释RNA
奥林巴斯显微镜	日本奥林巴斯	XZX16	观察丹匕猴
PCR 机	美国 Bio-rad	S-1000	用于 DNA 扩增
PowerPac Basic	美国 Bio-rad		检测 dsRNA 的质量
dsGFP （正向）			[TAATACGACTCACTATAGGG] ACAAACCAAGGCAAGTAATA
dsGFP （反向）			[TAATACGACTCACTATAGGG]
Ferhch qPCR（正向）			TGAAGAGATTCTGCGTTCTGCT
Ferhch qPCR 引物（反向）			CTGTAGGAACATCAGCAGGCTT
Ferhch RNAi 引物（反向）			[TAATACGACTCACTATAGGG]AG TAGCCATCATCTTTCC
Ferhch RNAi 引物（正向）			[TAATACGACTCACTATAGGG] ACACTGTCAATCGTCCTG
FoxO qPCR 引物（正向）			CTACGCCGATCTCATAACGC
用于 qPCR 的 FoxO 引物（反向）			TGCTGTCGCCCTTGTCCT
PrimeScript RT 试剂盒与 gDNA Eraser（完美实时）	TaKaRa，日本	RR047A
定量实时 PCR	Bio-rad，美国	CFX 96 Touch	进行逆转录酶聚合酶链反应 （RT-PCR）
实时荧光定量 PCR （TaqMan） 引物和探针设计工具			https://www.genscript.com/tools/real-time-pcr-taqman-primer-design-tool/
T7 RiBoMAX Express RNAi 系统	Promega，美国	P1700	合成 dsRNA  <>体外
TB Green Premix Ex TaqTM （Til RnaseH Plus）	TaKaRa，日本	RR820A	进行 RT-qPCR
三氯甲烷	，中国	KESHI GB/T682-2002	提取 RNA
TRIzol 试剂	Ambion，美国	15596018	从样品中提取总 RNA 含量
超低温冰箱	Thermo， 美国	Forma 911