本文介绍了一种利用水凝胶作为脂肪源性干细胞(ADSC)三维(3D)细胞培养支架的实验方案,并引入光生物调节(PBM)以增强ADSCs在3D培养环境中的增殖能力。
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本文介绍了一种利用水凝胶作为脂肪源性干细胞(ADSC)三维(3D)细胞培养支架的实验方案,并引入光生物调节(PBM)以增强ADSCs在3D培养环境中的增殖能力。
脂肪来源的干细胞(ADSCs)具有类似于干细胞的多能间充质特性,因其能够向多种细胞类型分化,并促进细胞迁移、增殖以及减轻炎症反应,故常被用于再生医学。然而,ADSCs在伤口中的存活和定植常面临挑战,主要原因是局部存在不利的炎症环境。为解决这一问题,已开发出可维持ADSC在伤口中活性的水凝胶,以加速伤口愈合过程。本研究旨在评估光生物调节疗法(PBM)在三维细胞培养体系中对ADSC增殖及细胞毒性的协同影响。将永生化ADSC以2.5 × 103个细胞的密度接种于10 µL水凝胶中,并使用波长为525 nm和825 nm的二极管光源,以5 J/cm2和10 J/cm2的能量密度进行照射。在PBM处理后24小时和10天分别评估细胞形态变化、细胞毒性和增殖情况。结果显示,ADSC呈现圆形形态,以单个细胞或球状聚集体的形式均匀分布于凝胶中。重要的是,PBM与三维培养体系均未对细胞产生细胞毒性作用,且PBM显著提高了ADSC的增殖速率。综上所述,本研究证实水凝胶可作为ADSC三维培养的适宜环境,并提出PBM是一种有效的增强策略,尤其可缓解三维细胞培养中常见的增殖缓慢问题。
ADSCs 是具有自我更新能力并可分化为多种细胞谱系的间充质多能祖细胞。这些细胞可在脂肪抽吸术过程中从脂肪组织的基质血管组分(SVF)中分离获得。1脂肪源性干细胞(ADSCs)因其来源丰富、获取过程微创、易于获取且特性明确,已成为再生医学中理想的干细胞类型。2干细胞治疗通过促进细胞迁移、增殖和新生血管形成,并减轻伤口内的炎症反应,为伤口愈合提供了一种可能的途径。3,4大约80%的ADSCs再生能力归因于其分泌组介导的旁分泌信号传导5此前有研究提出,将干细胞或生长因子直接局部注射到受损组织中,可引发足够的反应 体内 修复机制6,7,8然而,这种方法面临若干挑战,例如由于炎症环境导致干细胞在受损组织中的存活率低下以及移植效率降低 9此外,其中一个被提及的原因是缺乏细胞外基质来支持移植细胞的存活与功能10为应对这些挑战,目前的研究重点已转向开发生物材料载体,以支持干细胞的存活与功能。....
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注意:有关本实验方案中使用的所有材料、试剂和软件的详细信息,请参见材料表。本方案已在图1中以图示形式概括。
1. 二维(2D)细胞培养
注意:永生化ADSCs(1×106 个细胞)保存于含有1 mL细胞冻存液的冻存管中,置于-195.8 °C液氮中。
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为评估水凝胶的形态并直观检查细胞密度,采用倒置显微镜进行观察(图2)。接种并接受PBM照射后24小时,ADSCs仍保持圆形形态。细胞以单细胞或葡萄串样簇状结构分散分布于凝胶中。在三维培养10天后,细胞形态未发生明显改变。实验组与对照组之间,以及不同实验组之间,均未观察到形态学上的显著差异。
为评估光生物调节(PBM)照射及使用水凝胶进行三维培养的细胞毒性效应,检测了乳酸脱氢酶(LDH)的释放量(图3)。在24小时或10天时,实验组与对照组之间均无显著差异,表明PBM照射和水凝胶培养对细胞无不良影响。
通过测定ADSCs的ATP含量来测量细胞增殖速率(图4PBM照射导致所有实验组的细胞增殖率均高于对照组。在PBM照射后24小时,525 nm波长刺激产生的增殖率最高;然而,在照射后10天时,825 nm波长的增殖率优于525 nm波长。.
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脂肪来源干细胞(ADSCs)是再生医学中理想的细胞类型,因其可促进多种过程以辅助伤口愈合3,4。然而,仍存在若干需要克服的挑战,例如细胞在损伤部位的存活率低以及移植效果不佳9。本研究采用永生化细胞作为商业化细胞系,因其相比原代细胞可进行更多代次的传代,无需反复分离获取,且具有明确的特性以及均一的细胞群体,从而确保实验结果的一致性31。本研究旨在利用三维细胞培养技术,评估光生物调节(PBM)对ADSCs增殖能力及细胞毒性的增强潜力。根据制造商提供的30 µL水凝胶操作方案,本研究将其调整为10 µL以降低成本32。然而,体积的减少使得凝胶的制备与操作更为困难。
ADSCs 已被证明可在三维环境中自我聚集33同样,在本研究中,细胞形成了具有葡萄状外观的细胞聚集体,但也观察到单层细胞.......
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作者声明无竞争利益。
本研究由南非国家研究基金会 Thuthuka 项目资助,资助号 TTK2205035996;非洲激光中心(ALC)由科学与创新部(DSI)资助,资助号 HLHA23X,任务编号 ALC-R007;约翰内斯堡大学研究委员会资助,资助号 2022URC00513;南非科技部南非研究讲席计划(DST-NRF/SARChI)资助,资助号 98337。资助机构在研究设计、数据收集、分析、解释以及论文撰写过程中均未发挥任何作用。作者感谢约翰内斯堡大学(UJ)和激光研究中心(LRC)提供设施与资源支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 525 nm 二极管激光器 | National Laser Centre of South Africa | EN 60825-1:2007 | |
| 825 nm 二极管激光器 | National Laser Centre of South Africa | SN 101080908ADR-1800 | |
| 96 孔条板 | Sigma-Aldrich | BR782301 | |
| 两性霉素 B | Sigma-Aldrich | A2942 | 抗生素(0.5%;0.5 mL) |
| CellTiter-Glo 3D 细胞活力检测试剂盒 | Promega | G9681 | ATP 试剂,增殖检测试剂盒 |
| Corning 2 mL 外螺纹聚丙烯冻存管 | Corning | 430659 | 冻存管 |
| CryoSOfree | Sigma-Aldrich | C9249 | 细胞冻存培养基 |
| CytoTox96 非放射性细胞毒性检测试剂盒 | Promega | G1780 | 细胞毒性试剂 |
| Dulbecco’s 改良 Eagle 培养基 | Sigma-Aldrich | D5796 | 基础培养基(39 mL/44 mL) |
| FieldMate 激光功率计 | Coherent | 1098297 | |
| Corning 平底 96 孔透明聚苯乙烯板 | Sigma-Aldrich | CLS3370 | |
| 胎牛血清 | Biochrom | S0615 | 培养基添加剂(5 mL;10% / 10 mL;20%) |
| Hanks 平衡盐溶液(HBSS) | Sigma-Aldrich | H9394 | 冲洗液 |
| Heracell 150i CO2 培养箱 | Thermo Scientific | 51026280 | |
| Heraeus Labofuge 400 | Thermo Scientific | 75008371 | 用于 96 孔板的板式离心机 |
| Heraeus Megafuge 16R 离心机 | ThermoFisher | 75004270 | |
| 永生化 ADSCs | ATCC | ASC52Telo hTERT, ATCC SCRC-4000 | 第 37 代 |
| Invitrogen Countess 3 | Invitrogen | AMQAX2000 | 台盼蓝自动细胞计数仪 |
| Julabo TW20 水浴锅 | Sigma-Aldrich | Z615501 | 用于将培养基加热至 37 °C 的水浴锅 |
| Olympus CellSens Entry | Olympus | Version 3.2 (23706) | 成像软件:数字图像采集 |
| Olympus CKX41 | Olympus | SN9B02019 | 倒置光学显微镜 |
| Olympus SC30 相机 | Olympus | SN57000530 | 连接至倒置光学显微镜的相机 |
| Corning 不透光 96 孔实心聚苯乙烯微孔板 | Sigma-Aldrich | CLS3912 | 用于 ATP 发光检测的不透光孔 |
| 青霉素-链霉素 | Sigma-Aldrich | P4333 | 抗生素(0.5%;0.5 mL) |
| SigmaPlot 12.0 | Systat Software Incorporated | ||
| TrueGel3D – True3 | Sigma-Aldrich | TRUE3-1KT | 10 µL |
| TrueGel3D 酶法细胞回收溶液 | Sigma-Aldrich | TRUEENZ | 01:20 |
| 台盼蓝染色液 | Thermo Fisher - Invitrogen | T10282 | 0.4% 溶液 |
| TrypLE Select 酶(1x) | Gibco | 12563029 | 细胞解离溶液 |
| Victor Nivo 酶标仪 | Perkin Elmer | HH3522019094 | 分光光度酶标仪 |
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