需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

使用微移液管引导给药作为啮齿类动物模型中口服灌胃的替代方法

4.4K 次观看

⸱

DOI：

10.3791/66836

⸱

2024年7月26日

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pathology, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Department of Molecular and Comparative Pathobiology, Johns Hopkins University School of Medicine, 3Sidney Kimmel Comprehensive Cancer Center, 4Department of Urology, Johns Hopkins University School of Medicine

本文内容

摘要

本文介绍了一种微移液管引导的药物给药方法（MDA），作为口服灌胃的替代方案。该方法可促使实验动物主动摄入药物，显著减少应激与不适。

摘要

使用连接注射器的套管进行口服灌胃（OG）是将化合物精确剂量递送至实验动物胃部的常用方法之一。然而，该方法对操作者和实验动物均存在操作困难。研究表明，OG 可能导致食管炎、食管穿孔以及药物误入气管等并发症。此外，OG 还与血浆和粪便中皮质酮水平升高（由于应激）、血压改变以及心率加快相关，这些因素可能对研究结果产生负面影响或引入偏倚。此前开发的一种替代方法称为微量移液引导给药（MDA），可促使动物主动摄取治疗药物，实现微创给药。本文展示了 MDA 技术在不同溶剂中重构的治疗药物中的应用实例，并证实该方法可有效将多种治疗药物递送至不同品系的小鼠。我们进一步证明，MDA 是一种可缩短给药时间、降低侵入性的技术，且通过核心肠道微生物物种的定量分析评估，该方法不会影响肠道微生物组的组成。总体而言，MDA 可能是比 OG 更低应激且有效的替代方案。

引言

在啮齿类动物模型中，药物给药通常通过口服灌胃（OG）实现，该方法使用连接在含有药液的注射器上的套管，将液体制剂直接送入动物胃内。该技术能够向动物提供稳定且精确的给药剂量，但也存在多种缺点。口服灌胃因无法充分模拟人类的膳食暴露方式而受到质疑1,2。此外，口服灌胃会增加上消化道意外损伤（如食管和胃穿孔）、药物误吸以及呼吸道病变的风险3。该方法还与动物不适4、血压和心率升高5，以及应激反应6,7相关，有时甚至因动物对灌胃耐受性降低而导致死亡8。这些生理变化可能干扰或混淆实验结果；因此，研究人员已探索新的给药方法以避免这些不良反应。已有研究采用多种替代口服灌胃的方法，例如使用明胶作为药物载体9、口服速溶膜（ODS）10、蔗糖包被的灌胃针11、柔性饲管、小麦饼干12、蜂蜜13和花生酱药丸14。然而，这些对口服灌胃技术的改良仍存在局限性，包括与水不溶性药物不相容、药物制备时间延长15、药物适口性和稳定性问题15，以及动物对食物载体产生习惯化。此外，当动物自由摄食时，可能存在给药剂量不够精确的风险。

Scarborough 等人7此前开发了一种小鼠的替代性口服给药方法，称为微量移液器引导给药法（micropipette-guided drug administration, MDA）。该给药方法以甜炼乳溶液作为药理物质的载体，通过单通道移液器和移液器吸头递送溶液，促使实验动物 readily 摄入配制好的载体和/或药物溶液。在实施该技术前，啮齿类动物需经历一个训练阶段（至少2天），以缩短操作时间，并使实验动物熟悉从移液器吸头中饮水的过程4。Scarborough 等人7和 Schalbetter 等人16的初步验证研究表明，MDA 操作简便、成本效益高、侵入性小，且相较于传统的口服灌胃（OG）方法，对动物造成的应激更小。Scarborough 等人首次将 MDA 技术应用于母体免疫激活（maternal immune activation, MIA）所致神经发育障碍的小鼠模型中7。该研究显示，采用 MDA 给予抗精神病药物利培酮的小鼠，其药代动力学特征与使用 OG 方法相当。此外，MDA 未引起小鼠皮质酮（一种应激激素）水平的升高，且通过 MDA 技术进行利培酮的慢性治疗，可剂量依赖性地改善 MIA 所致的社会交互缺陷和安非他明超敏反应7。其他研究也已在小鼠17和大鼠18模型中探讨了 MDA 与 OG 的疗效比较。MDA 还曾与腹腔注射进行对比，结果表明其在向小鼠递送氯氮平-N-氧化物（clozapine-N-oxide）方面具有同等有效性16。鉴于 MDA 在降低动物应激水平和治疗效果方面的已有成功报道，我们现拟进一步探索 MDA 技术作为药物递送有效手段在更多小鼠模型中的应用。本文中，我们描述了 MDA 方法在不同小鼠品系中的实施过程，包括免疫功能正常的 FVB/NJ 和 C57BL/6J 品系，以及免疫缺陷型 NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ（NSG）品系，并采用多种口服处理方式，包括活菌、溶于水不溶性溶液（玉米油）中的实验化合物以及载体对照。我们检测了不同处理在血清和粪便中的活性与存在情况，并评估了 MDA 方法对核心肠道菌群组成的影响。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

所有动物实验均按照机构指南进行，并在约翰斯·霍普金斯大学机构动物护理和使用委员会（IACUC）批准的方案 M021M197 和 M023M195 下实施。所使用的实验小鼠品系（雄性小鼠，7 周龄）详见于下文 材料表使用雄性小鼠是因其在前列腺癌的持续研究中的应用。此前已有研究表明，MDA 方法在雌性小鼠中同样有效。7,17小鼠被随机分配至各自的笼具/处理组。小鼠在笼内接受处理，处理顺序无特定规律。实施处理的实验人员对处理分组情况设盲。分配给小鼠的编号代表其个体标识号，而非处理顺序。研究全程收集数据，并在研究结束时进行分析，以避免任何偏倚。在所有数据收集完成前，实验检测均对处理分组设盲。

注意：本方案已根据 Scarborough 等人的研究进行了修改7。

1. 处理液的制备

  1. 使用甜炼乳（成分：牛奶和糖）与分子生物学级水按牛奶:水 = 3:10 的比例配制溶液。由于炼乳具有较高黏度，应使用15 mL锥形管量取甜炼乳。
  2. 在50 mL锥形管中，将分子生物学级水与甜炼乳混合，每次缓慢加入5 mL水，并与炼乳充分混匀。
    注意：此步骤需在生物安全柜中无菌条件下进行。
  3. 将配制好的牛奶溶液分装成若干份（每份500 µL），并于4 °C保存，直至与待测试处理物混合使用。
  4. 根据动物体重，将各处理物用相应的溶剂重悬至正确浓度，再与甜炼乳/水溶液混合。

2. MDA 培训课程

注意：本节描述的是小鼠模型；然而，MDA 技术可根据需要使用更大体积/移液器吸头，以适用于更大的啮齿类动物模型。

  1. 可选：用一只手轻轻抓住实验动物颈背部的皮肤以进行固定。
  2. 使用单通道移液器和200 µL吸头，将100 µL仅含甜炼乳/水溶液（不添加实验处理物质）缓慢导入动物口腔。
  3. 缓慢释放乳/水溶液，避免偏离动物口腔。确保动物在5–15秒内顺利摄入该乳液。
    注意：该训练需连续进行至少2天（每天一次训练），给药体积保持不变。MDA训练期间需要通过抓取颈背部皮肤进行轻度固定。Scarborough等7建议在MDA训练第一天对动物进行完全固定，第二天则仅通过尾巴固定。对于体型较大的啮齿类动物模型，固定方法可能有所不同。相比之下，Vanhecke等17在训练期间仅轻微抓住小鼠尾巴即可。

3. 使用 MDA 方法对小鼠进行处理

  1. 将研究用处理物与甜炼乳/水溶液混合（参见下方第4节和第5节中的验证实验示例）。
  2. 可选：用一只手轻轻抓住实验动物颈背部皮肤以进行轻柔固定。
    注意：Scarborough 等人7报道，小鼠在训练期结束后通常不再需要固定，可主动从移液枪尖端饮水。相比之下，Vanhecke 等人17报道，对于某些可能引起轻微味觉厌恶的处理（例如他莫昔芬），在每次给药时通过轻捏颈背部皮肤固定小鼠更有利于经口微量给药（MDA）的实施。该研究还发现，将动物仰卧位放置并辅以轻柔捏颈固定，可提高处理物摄入的时间效率和有效性。
  3. 使用单通道移液器和200 µL移液枪头，将100 µL处理物缓慢导入动物口腔，操作方式与训练阶段一致。
  4. 每次仅处理一只动物。
  5. 处理完成后，将每只动物放回其对应的笼具中。
    注意：采用MDA方法的处理可每日进行，也可重复多次7,17。

4. 验证实验 #1 —— 使用 MDA 口服递送肠道细菌至小鼠

注意：本节介绍使用 MDA 方法将活菌经口递送，用于小鼠肠道定植研究。在此代表性预实验中，将革兰氏阳性菌 Clostridium scindens 递送至 C57BL/6J 小鼠。在通过 MDA 进行细菌接种前，小鼠在饮水中连续两天接受抗生素（头孢西丁）处理。

  1. 细菌培养
    1. 使用强化梭菌肉汤（RCB）培养 C. scindens 菌株 ATCC 35704，从冻存甘油菌种中取 500 µL 接种至 7 mL RCB 培养管中，于 37 °C 厌氧条件下过夜培养。
    2. 取 500 µL 过夜培养的细菌接种至新的 RCB 培养管中，厌氧孵育 24 小时。将该培养管从厌氧舱中取出，用于制备 MDA 实验用的细菌处理液，并用此培养管计算每毫升菌落形成单位（CFU/mL）。
  2. 计算 C. scindens 的 CFU/mL
    1. 将 C. scindens 培养物用 3.5 mL 接种至 7 mL RCB 培养基中，制备 1:3 稀释液。取该稀释液样品制备 1 mL 20% 甘油保存液（1:1），于 -80 °C 保存。
    2. 取 100 µL 的 1:3 稀释液涂布于强化梭菌琼脂（RCA）平板上。利用该初始稀释液进一步进行连续梯度稀释，并重复涂布，共进行三次额外的涂布操作。
    3. RCA 平板孵育后，计数菌落并计算 CFU。使用以下公式计算稀释样品及原始样品中的细菌细胞浓度：
      稀释样品中的 CFU（细胞/mL）=（RCA 平板上计数的菌落数）/（接种到 RCA 平板的稀释样品体积，单位为 mL）
      ​原始样品中的 CFU（细胞/mL）=（稀释样品中的 CFU）/（RCA 平板对应的稀释倍数）
  3. 制备用于 MDA 的 C. scindens 处理液
    1. 将 50 µL C. scindens 菌液（本示例中浓度为 1.265 × 106 CFU/mL）与 50 µL 加糖炼乳/水溶液混合。
      注：若需特定 CFU 浓度，可采用其他细菌定量方法，例如通过在 600 nm 处测定光密度（OD）建立标准曲线。
  4. 通过 MDA 对小鼠进行口服 C. scindens 处理
    1. 在第 1–3 天，按照第 2 节所述方法使小鼠适应牛奶溶液（MDA 训练阶段）。
    2. 在第 4 天，通过 MDA 向 C57BL/6J 小鼠给予 100 µL 的 C. scindens + 牛奶溶液或 PBS（对照组）+ 牛奶溶液。在整个研究期间仅处理一次。
  5. 粪便样本采集
    1. 轻轻抓握小鼠颈部皮肤使其固定，等待其排出粪便颗粒。直接从直肠收集粪便颗粒至无菌的 1.5 mL 微量离心管中。样本保存于 -80 °C 直至使用。
  6. C. scindens 定量 PCR（qPCR）
    1. 采用已发表的方法进行粪便 DNA 提取19,20。
    2. 使用 DNA 荧光计测定 DNA 浓度，以实现高灵敏度检测。将 DNA 样本标准化至 10 ng/µL，并保存于 -20 °C 直至使用。
    3. 使用 qPCR 检测以下目标的丰度：(i) 利用针对 C. scindens 菌株 ATCC 35704 desA 基因的保守引物检测 C. scindens 细菌；(ii) 利用针对细菌 16S rRNA 基因 V6 高变区的引物检测总细菌，引物设计如先前所述20,21。
      注：表 1 中列出了所用 qPCR 条件和引物。使用 C. scindens 菌株 ATCC 35704 DNA 建立标准曲线，用于估算 desA+ 细菌的拷贝数。

5. 验证实验 #2 — 使用 MDA 向小鼠递送实验性药物

注意：本节描述了使用微透析（MDA）方法向小鼠递送实验化合物的过程。在此具有代表性的初步实验中，大豆代谢物雌马酚（S-雌马酚）被递送至NSG和FVB/NJ小鼠体内。

  1. S-雌马酚处理的制备
    注意：S-雌马酚和二甲基亚砜（DMSO）均分装后于 -20 °C 保存，直至使用。
    1. 将 S-雌马酚用 DMSO 与玉米油（90%）混合复溶。将分装的 S-雌马酚溶于玉米油（220 µL）中，再加入 480 µL 甜炼乳/水溶液。在动物房内混合并搅拌该溶液，以避免油相与乳相分离。
      注意：若观察到溶液出现分层，给药前需重新混匀。给予小鼠的 S-雌马酚剂量为 25 mg/kg/天。本研究中使用的小鼠体重相近，因此给予相同剂量。根据实验动物的实际体重，可能需要调整剂量，并制备多种不同浓度的处理液。
    2. 将 DMSO 溶剂与玉米油（90%）混合。将分装的 DMSO 溶于玉米油（220 µL）中，再加入 480 µL 甜炼乳/水溶液。在动物房内混合并搅拌该溶液，以避免油相与乳相分离。
      注意：若观察到溶液出现分层，给药前需重新混匀。
  2. 使用 MDA 经口给予小鼠 S-雌马酚处理
    1. 在第 1 天和第 2 天，按照第 2 节（MDA 训练阶段）所述方法，使小鼠适应牛奶溶液。
      注意：在验证实验 #1 中，遵循 Scarborough 等人描述的训练时间，建议进行为期 3 天的适应期。本实验测试了较短的训练时间（2 天），发现其并未影响目标处理物的给药效果。
    2. 在第 3 至 43 天，对小鼠分别给予（i）PBS 对照、（ii）DMSO 溶剂或（iii）S-雌马酚，均与甜炼乳/水溶液混合。配制处理液的母液，以确保所有实验动物接受均一的处理溶液。每天每只小鼠给予 100 µL 总体积，每周给药 5 天，持续 43 天。
  3. 血液采集
    1. 通过心脏穿刺法在安乐死后（二氧化碳过量）采集血液。将血液转移至含血清分离胶的微量采血管中，混匀后于室温（RT）保存，待进一步处理。
    2. 以 254 × g 离心 5 分钟，完成血液样品的分离。收集上层血清，并于 -20 °C 保存至使用。
  4. S-雌马酚液相色谱串联质谱法（LC/MS/MS）检测
    1. 参见材料表文件，获取本实验所用的化学品与试剂。
    2. 标准曲线与质控样品制备：将 S-雌马酚和内标物（外消旋 equol-d4）分别用 DMSO 配制成 1 mg/mL 的储备液，并于 -20 °C 保存。
    3. 用乙腈：水（50:50）稀释储备标准品溶液，制备含不同浓度的混合工作液。将内标物用乙酸乙酯配制成 100 ng/mL 的提取液。储备液和工作液均于 4 °C 保存，每日新鲜稀释或直接使用。
    4. 样品提取
      1. 采用蛋白沉淀法进行样品处理，加入提取液（乙酸乙酯加内标物，见第 5.4.3 节），随后离心，并在 50 °C 条件下用干燥氮气蒸发上清液。
      2. 将残余物用 100 µL 50% 乙腈复溶，转移至自动进样瓶中用于 LC/MS/MS 分析。
    5. 样品分离
      1. 采用 C18 柱（2.1×50 mm，1.7 µm）实现分离。流动相 A 为 0.1% 甲酸水溶液，流动相 B 为含 0.1% 甲酸的乙腈溶液。
      2. 采用梯度洗脱程序：起始时流动相 B 保持在 40%，流速为 0.3 mL/min，持续 0.5 分钟；随后在 1 分钟内将 B 相升至 100%，保持 2 分钟，再于 1 分钟内恢复至 40% B。
      3. 使用电喷雾电离源的质谱检测器，在负离子模式下监测柱流出液。设定质谱仪监测以下多反应监测（MRM）离子对：S-雌马酚为 241 → 119.1，内标物 equol-d4 为 245 → 123。
      4. 采用二次方程配合 1/x2 加权函数，基于分析物峰面积与内标峰面积的比值，计算 S-雌马酚的标准曲线，校准范围为 5–500 ng/mL。

6. 测定MDA治疗对核心肠道微生物群的影响

注意：本部分介绍使用qPCR检测MDA处理后核心肠道微生物群的水平。

  1. 按照步骤 4.5.1 和 4.6.1 所述进行粪便样本采集和 DNA 提取。
  2. 使用 DNA 荧光计进行高灵敏度检测以确定 DNA 浓度。将 DNA 样本标准化至 10 ng/µL，并于 -20 °C 保存直至使用。
  3. 采用 qPCR 检测肠道微生物群成员的丰度：(i) Akkermansia muciniphila，(ii) Bifidobacterium spp.，(iii) Streptococcus salivarius，(iv) Lactobacillus spp.，以及 (v) 总细菌，所用引物针对细菌 16S rRNA 基因的 V6 高变区设计，具体方法如前所述20,21,22。
    注意：qPCR 反应条件及所用引物列于 表 2 中。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

MDA 可用于在小鼠模型中口服递送细菌菌株。在开始 MDA 训练前，C57BL/6J 小鼠接受抗生素处理（饮水中添加头孢西丁）2 天，以清除共生微生物群。在给药前连续 3 天每天给予一次加糖炼乳/水溶液。在 MDA 处理期间，小鼠通过轻柔抓握颈部皮肤短暂固定。第 4 天，小鼠接受一次 PBS 处理（阴性对照，n = 4）或厌氧培养的 C. scindens（desA+ 细菌，n = 4），该菌株此前已重悬于加糖炼乳/水溶液中。所有小鼠通常在数秒内完成摄取，并饮尽全部剂量（100 µL）。为验证厌氧细菌的递送及定植情况，我们比较了抗生素处理后采集的粪便样本与 PBS 或 C. scindens 处理后 24 小时采集的粪便样本（图 1）。提取粪便 DNA，定量并归一化至 10 ng/µL，随后使用 C. scindens ATCC 35704 desA 基因特异性引物进行 qPCR 检测（Table 1）。我们观察到，经抗生素处理的小鼠粪便中 desA+ 细菌...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

口服给药（OG）可能对实验动物造成显著的应激反应，从而引入混杂变量，这一点已在多项研究中得到评估7,9,11,12,13,14,15,23。由于OG具有侵入性，研究人员已采用其他替代技术以尽量减少与OG相关的问题9,10,12,13,...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

致谢

我们感谢美国国防部前列腺癌研究计划（W81XWH-20-1-0274）和前列腺癌基金会挑战奖（16CHAL13）提供的研究支持。我们谨向约翰斯·霍普金斯大学分析药理学共享资源平台的 Michelle Rudek 博士、Noushin Rastkari 博士、Nicole Anders 博士以及 Linping Xu 致以诚挚谢意，感谢他们在槐黄素 LC/MS/MS 检测方面提供的协助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
200 µL 移液器吸头Mettler Toledo17005860
AB SCIEX Triple QTRAP 5500 质谱检测器SciexN/A
Akkermansia muciniphila 菌株 muc 基因组 DNA美国模式培养物集存库BAA-835D-5
乙酸铵Sigma–Aldrich5.43834
C57BL/6J 小鼠Jackson 实验室品系# 000664
C. scindens 菌株 35704美国模式培养物集存库35704
头孢西丁Sagent NDC25021-109-10
玉米油MedChemExpressHY-Y1888
DMSOSigma-AldrichD2650
乙醇菲舍尔科技AC611050040
甲酸Sigma–Aldrich5.33002
FVB/NJ 小鼠Jackson 实验室品系# 001800
甘油Sigma–AldrichG5516
己烷菲舍尔科技02-002-996
LC-MS 级水菲舍尔科技14-650-357
甲醇菲舍尔科技02-003-340
微量采血管（含血清分离胶）贝克顿·迪金森02-675-185
分子生物学级水康宁46-000-CI
NSG 小鼠Jackson 实验室品系# 005557
PBS康宁21-031-CV
Qubit DNA HS 试剂盒InvitrogenQ32851
外消旋 equol-d4Santa Cruz 生物技术sc-219827
强化梭菌琼脂Anaerobe SystemsAS-6061
强化梭菌肉汤Anaerobe SystemsAS-606
S-equolMedChemExpressHY-100583
用于 LC-MS 的 S-equol 参考标准品Cayman Chemical10010173
单通道移液器Rainin17008652
唾液链球菌基因组 DNA美国模式培养物集存库BAA-1024D-5
加糖炼乳California FarmsB09TGQ7WV8
VSL#3VSL#3B07WX1LVHL
β-葡萄糖醛酸酶（来源于 Helix pomatia）Sigma–AldrichG7017

参考文献

  1. Vandenberg, L. N., Welshons, W. V., Vom Saal, F. S., Toutain, P. -L., Myers, J. P. Should oral gavage be abandoned in toxicity testing of endocrine disruptors. Environ Health. 13 (1), 46(2014).
  2. Craig, M. A., Elliott, J. F. Mice fed radiolabeled protein by gavage show sporadic passage of large quantities of intact material into the blood, an artifact not associated with voluntary feeding. Contemp Top Lab Anim Sci. 38 (5), 18-23 (1999).
  3. Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider. J Am Assoc Lab Anim Sci. 50 (5), 600-613 (2011).
  4. Gulin, J. E. N., Bisio, M., García-Bournissen, F. Refining drug administration in a murine model of acute infection with Trypanosoma cruzi. Lab Anim Res. 36, 37(2020).
  5. Bonnichsen, M., Dragsted, N., Hansen, A. K. The welfare impact of gavaging laboratory rats. Anim Welf. 14 (3), 223-227 (2005).
  6. Brown, A. P., Dinger, N., Levine, B. S. Stress produced by gavage administration in the rat. Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (1), 17-21 (2000).
  7. Scarborough, J., et al. Preclinical validation of the micropipette-guided drug administration (MDA) method in the maternal immune activation model of neurodevelopmental disorders. Brain Behav Immun. 88, 461-470 (2020).
  8. Germann, P. G., Ockert, D. Granulomatous inflammation of the oropharyngeal cavity as a possible cause for unexpected high mortality in a Fischer 344 rat carcinogenicity study. Lab Anim Sci. 44 (4), 338-343 (1994).
  9. Martins, T., et al. Comparison of gelatin flavors for oral dosing of C57BL/6J and FVB/N mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 61 (1), 89-95 (2022).
  10. Huynh, N., Arabian, N., Lieu, D., Asatryan, L., Davies, D. L. Utilizing an orally dissolving strip for pharmacological and toxicological studies: A simple and humane alternative to oral gavage for animals. J Vis Exp. (109), e53770(2016).
  11. Hoggatt, A. F., Hoggatt, J., Honerlaw, M., Pelus, L. M. A spoonful of sugar helps the medicine go down: a novel technique to improve oral gavage in mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 49 (3), 329-334 (2010).
  12. Neto, T., Faustino-Rocha, A. I., Gilda Costa, R. M., Medeiros, R., Oliveira, P. A. A quick and low-intensity method for oral administration to large numbers of mice: A possible alternative to oral gavage. Lab Anim. 56 (2), 185-190 (2022).
  13. Küster, T., et al. Voluntary ingestion of antiparasitic drugs emulsified in honey represents an alternative to gavage in mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (2), 219-223 (2012).
  14. Gonzales, C., et al. Alternative method of oral administration by peanut butter pellet formulation results in target engagement of BACE1 and attenuation of gavage-induced stress responses in mice. Pharmacol Biochem Behav. 126, 28-35 (2014).
  15. Teixeira-Santos, L., Albino-Teixeira, A., Pinho, D. An alternative method for oral drug administration by voluntary intake in male and female mice. Lab Anim. 55 (1), 76-80 (2021).
  16. Schalbetter, S. M., et al. Oral application of clozapine-N-oxide using the micropipette-guided drug administration (MDA) method in mouse DREADD systems. Lab Anim (NY). 50 (3), 69-75 (2021).
  17. Vanhecke, D., Bugada, V., Buch, T. Refined tamoxifen administration in mice by encouraging voluntary consumption of palatable formulations). bioRxiv. , (2023).
  18. Heraudeau, M., et al. Micropipette-guided drug administration (MDA) as a non-invasive chronic oral administration method in male rats. J Neurosci Methods. 398, 109951(2023).
  19. Sfanos, K. S., et al. Compositional differences in gastrointestinal microbiota in prostate cancer patients treated with androgen axis-targeted therapies. Prostate Cancer Prostatic Dis. 21 (4), 539-548 (2018).
  20. Shrestha, E., et al. Profiling the urinary microbiome in men with positive versus negative biopsies for prostate cancer. J Urol. 199 (1), 161-171 (2018).
  21. Peiffer, L. B., et al. Composition of gastrointestinal microbiota in association with treatment response in individuals with metastatic castrate resistant prostate cancer progressing on enzalutamide and initiating treatment with anti-PD-1 (pembrolizumab). Neoplasia. 32, 100822(2022).
  22. Jones, C. B., Peiffer, L. B., Davis, C. M., Sfanos, K. S. Examining the effects of 4He exposure on the gut-brain axis. Radiat Res. 197 (3), 242-252 (2022).
  23. Walker, M. K., et al. A less stressful alternative to oral gavage for pharmacological and toxicological studies in mice. Toxicol Appl Pharmacol. 260 (1), 65-69 (2012).
  24. Miguelena Chamorro, B., Swaminathan, G., Mundt, E., Paul, S. Towards more translatable research: Exploring alternatives to gavage as the oral administration route of vaccines in rodents for improved animal welfare and human relevance. Lab Anim (NY). 52 (9), 195-197 (2023).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

探索更多文章

微量移液器给药小鼠药物递送微创技术肠道微生物组前列腺癌模型减压方法给药方法加糖牛奶载体
使用微移液管引导给药作为啮齿类动物模型中口服灌胃的替代方法
联系我们
向图书馆推荐

隐私政策

使用条款

政策

版权所有 © 2026 MyJoVE Corporation。保留所有权利。