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方法文章

使用双心房技术的巴马香猪原位心脏移植临床前模型

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DOI：

10.3791/68349

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2025年6月13日

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cardiac Surgery, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 2Beijing Key Laboratory of Preclinical Research and Evaluation for Cardiovascular Implant Materials, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 3Department of Cardiac Surgery, Fuwai Yunnan Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, Affiliated Cardiovascular Hospital of Kunming Medical University, 4State Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 5Shenzhen Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, 6Sanya Institute of China Agricultural University

本文内容

摘要

本研究提出了一种采用双房技术的巴马微型猪临床前原位心脏移植模型。该模型适用于移植免疫学、药物评价及手术技术优化，可为临床心脏移植应用提供支持。

摘要

尽管心脏移植领域已取得显著进展，但移植物保存、原发性移植物功能障碍、心脏移植物血管病变以及长期免疫耐受等问题仍未解决。由于解剖尺寸和免疫学差异，小鼠模型无法有效模拟临床心脏移植手术及免疫反应。相比之下，猪模型在心脏解剖结构和免疫反应方面与人类更为相似，特别适用于原位心脏移植研究。本研究建立了巴马香猪的双心房原位心脏移植模型。移植心脏术后表现出迅速且有力的收缩功能，未出现中心静脉压升高或其他血流动力学并发症的迹象。经过短暂的重症监护监测后，猪只恢复意识并自主进食，表明术后恢复稳定。综上所述，该模型为心脏移植研究领域评估新技术和治疗策略提供了一个具有临床相关性的实验平台。

引言

自1967年首例心脏移植手术以来，心脏移植领域已取得显著进展。然而，在过去二十年中，临床实践方面鲜有重大突破。移植物功能障碍、心脏移植物血管病变（CAV）以及长期免疫耐受等核心问题仍未得到解决1,2,3,4。尽管基础研究取得了大量成果，但这些发现难以转化为临床应用，导致心脏移植治疗的进步陷入停滞。因此，如何有效评估新技术和新疗法已成为关键问题，这凸显了动物模型、尤其是合适的临床前模型在应对这些挑战中的重要性。

尽管小鼠模型在心脏移植研究中被广泛应用，但由于其解剖结构和生理特征与人类存在显著差异，难以完整复制临床心脏移植手术及术后免疫反应。此外，小鼠的免疫系统与人类相比也存在较大不同，无法充分反映大型动物模型中所见的复杂免疫反应5,6,7。同时，由于体型较小，小鼠的心脏移植仅限于异位移植，这与临床实践中原位心脏移植的实际操作存在差异8,9,10,11。因此，采用合适的大动物模型，尤其是猪，显得至关重要。

猪模型在心脏移植研究中具有显著优势，尤其是在原位心脏移植方面。猪的心脏在解剖结构上与人类心脏相似，且猪的免疫反应和器官生理功能与人类更为接近，使其成为心脏移植研究的理想平台。此外，猪模型能够提供更复杂和详尽的实验数据，使研究人员能够更好地评估新的免疫抑制策略、心肌保护方法以及移植后的长期效果12,13,14,15。尽管一些研究采用了猪的腹腔异位移植模型，该模型可避免使用体外循环并降低手术复杂性，但其无法完全模拟临床原位心脏移植的真实情况16。因此，本研究建立了巴马香猪的双心房原位心脏移植模型，为推进心脏移植技术提供了一个更具临床相关性的实验平台。

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方案

动物 本研究的实验方案已获得中国医学科学院阜外医院机构动物护理和使用委员会（IACUC）批准，伦理批准编号为0108-1-70-ZX(X)-41。所有实验均严格遵循动物福利和伦理指南，确保符合相关伦理标准。

1. 术前准备

  1. 选择体重为35-40 kg（10-12月龄）的雄性巴马香猪用于原位心脏移植实验，并在手术前让其在饲养环境中适应1周。
  2. 进行常规血液检测（血常规和生化检查）、肝肾功能评估以及超声心动图 检查，以评估动物各器官系统功能并确保其整体健康状况。
  3. 根据ABO血型和心脏大小匹配供体与受体。血型鉴定采用Choi等人17报道的方法，心脏大小通过超声心动图进行评估，以确保匹配恰当。
    注意：由于体重与心脏大小之间不存在线性关系，因此采用超声心动图测量的心脏尺寸作为匹配依据。具体而言，升主动脉直径差异控制在小于2 mm，左心室舒张末期内径差异小于3 mm，收缩末期内径差异小于2 mm。

2. 供体操作步骤

  1. 麻醉与动物准备
    1. 供体猪术前禁食 12 小时，术前 4 小时禁水，以确保胃部排空，从而降低麻醉期间发生呕吐和误吸的风险。
    2. 通过肌内注射给予氯胺酮（10 mg/kg）和咪达唑仑（1 mg/kg）诱导麻醉。麻醉诱导后，采用吸入用异氟烷（2–3%）联合右美托咪定（1 µg/kg）输注及丙泊酚（1–2 mg/kg/h）持续输注，以维持适当的麻醉深度。
    3. 通过观察下颌肌张力松弛以及夹捏脚趾时无疼痛反应，确认麻醉深度足够。使用 6.5–8 mm 气管导管行经口插管，确保气道通畅，并给予 100% 氧气。
    4. 通过耳缘静脉建立外周静脉通路，以便输注液体和给药。建立股动脉通路用于监测血压，实现血流动力学参数的实时监测。
    5. 手术全程持续监测 12 导联心电图（ECG），以观察动物心脏状况。维持稳定的麻醉深度，根据需要调整药物剂量，确保麻醉水平适宜。
  2. 供体心脏的获取
    1. 开胸术：剃除猪胸部毛发后，使用聚维酮碘对术区进行消毒并铺巾，使用高频电刀从颈中部至剑突下方行正中切口，随后切开胸骨。电凝胸骨断面并涂抹骨蜡止血（图 1A）。
    2. 肝素化：打开胸腔后，给予 300 U/kg 肝素进行全身抗凝，以预防术中血栓形成。
    3. 胸腺切除术：使用电刀小心抬起并分离胸腺与心包组织，完整切除胸腺，确保无出血。
    4. 切开心包，清除主肺动脉前方的结缔组织（图 1B）。使用电刀分离升主动脉与肺动脉之间的间隙，暴露大血管。随后结扎左侧半奇静脉（图 1C）。
      注：猪的左侧半奇静脉直接汇入冠状窦，在心脏获取过程中需予以结扎。
    5. 使用 5-0 Prolene 缝线在升主动脉近端外膜处缝置荷包缝线，并用牵引线固定。将停跳液灌注管插入升主动脉，并用荷包缝线固定。
    6. 停跳液灌注：夹闭升主动脉，灌注 500 mL 改良St. Thomas 溶液（在 500 mL 醋酸钠林格液中加入 4 mL 25% 硫酸镁、1 g 氯化钾、40 mL 5% 碳酸氢钠和 10 mL 2% 利多卡因）以及 500 mL UW 溶液，温度为 4 °C，灌注流速为 300–600 mL/min，确保主动脉根部压力维持在 80–100 mmHg。此时切开右心耳进行排气（图 1D）。
      注：为防止失血过多，可使用额外夹钳夹闭上、下腔静脉，收集血液以备术后受体输血使用。
    7. 在胸腔内及器官表面放置冰屑（0.9% NaCl），从停跳液灌注开始即进行器官降温（图 1E）。
    8. 尽可能远端切断主肺动脉及上、下腔静脉，确保每根血管保留至少 2 cm 的长度，以便移植时无张力吻合（图 1F）。取出心脏后，将其置于器官保存袋中，加入至少 500 mL 生理盐水，置于冰上并在 4 °C 保存至移植（图 1G）。
      注：确保所有血管均保留足够长度。过长的血管可在移植时修剪，但长度不足则无法补救。
    9. 供体血液采集：收集上、下腔静脉断端流出的血液，用于受体术后输血。

3. 受体操作步骤

  1. 受体准备
    1. 按照 2.1.1–2.1.4 步骤进行麻醉和气管插管操作。将受体置于仰卧位，使用软绳固定四肢以确保稳定性，并便于手术操作。
    2. 在颈部做切口，暴露颈静脉和颈动脉。将中心静脉导管插入颈静脉，用于中心静脉压（CVP）监测和给药；将动脉导管插入颈动脉，用于实时动脉血压监测。
      注：手术过程中常用的血管活性药物包括多巴胺（200 mg 多巴胺溶于 50 mL 5% 葡萄糖或生理盐水，终浓度为 4 mg/mL）、多巴酚丁胺（250 mg 溶于 50 mL 5% 葡萄糖，终浓度为 5 mg/mL）、肾上腺素（1 mg 溶于 49 mL 生理盐水，终浓度为 0.02 mg/mL）、异丙肾上腺素（1 mg 溶于 50 mL 5% 葡萄糖，终浓度为 0.02 mg/mL）以及去甲肾上腺素（4 mg 溶于 50 mL 生理盐水，终浓度为 0.08 mg/mL）。剂量应根据受体的血流动力学状态进行调整。
    3. 膀胱造瘘：在下腹部做小切口，暴露膀胱壁。使用细缝线将膀胱固定于切口边缘。切开膀胱壁后，插入导尿管并用缝线将其固定于膀胱。将导尿管连接至集尿袋，用于尿液引流和监测。
      注：由于雄性猪的尿道弯曲且细长，常规导尿不可行。必须建立膀胱造瘘以确保有效的尿液引流。
    4. 在股部做切口，暴露股动脉。插入动脉导管以监测下肢血压和血氧饱和度。确保导管固定牢固，防止脱落或血管损伤。
  2. 体外循环（CPB）建立
    1. 开胸与大血管暴露：按照 2.2.1–2.2.4 步骤进行开胸，充分暴露升主动脉、上腔静脉（SVC）和下腔静脉（IVC）。检查大血管，确保适合插管。给予 300 U/kg 肝素以实现全身抗凝，并在激活凝血时间（ACT）超过 300 秒后继续操作。
    2. 组装体外循环机，并用 2 L 乳酸林格液和 500 mg 甲基强的松龙进行预充。
      注：由于巴马香猪的血容量相对较小，应确保体外循环机有足够的预充量。若发生过度血液稀释，可根据需要考虑输血。
    3. 腔静脉套扎：分离升主动脉与肺动脉之间的间隙，并在升主动脉周围放置套带，向左牵引。暴露 SVC 内侧，使用直角钳从后方环绕 SVC 并套扎。对 IVC 采用相同操作，为后续插管做好准备。
    4. 动脉插管：在升主动脉远端放置两个同心荷包缝合（使用 5-0 缝线，避免穿透血管全层，仅缝合外膜）。将荷包缝合开口分别置于左右两侧，并用止血钳夹住以备插管和固定。使用小型圆形刀片在荷包中心处做一小切口，切口略小于 18 Fr 动脉插管直径。立即插入动脉插管，用止血钳收紧荷包缝线，并用粗缝线将插管固定于止血钳上。将动脉插管连接至体外循环动脉管路，确保无气泡存在。
    5. 静脉插管：在 SVC 和 IVC 上分别放置荷包缝合，并连接止血钳。在荷包内做切口，将 28 Fr 插管插入 SVC，32 Fr 插管插入 IVC，并通过收紧止血钳固定插管。使用粗缝线将插管固定于血管壁。将插管连接至体外循环静脉管路。
    6. 心脏停搏液插管：在升主动脉近端外膜处使用 5-0 Prolene 缝线放置荷包缝合，并用止血钳固定。通过荷包将心脏停搏液插管插入升主动脉并固定。将插管连接至心脏停搏液灌注系统。
    7. 启动体外循环：确认所有插管和连接均正确就位且无阻塞。启动体外循环，运行数分钟后逐步套扎 SVC 和 IVC，建立完全体外循环，将所有静脉血引流至体外循环机（图 1H）。
      注：术中维持平均动脉压（MAP）为 60–90 mmHg，中心静脉压（CVP）为 6–12 cmH2O。
    8. 主动脉阻断：当核心体温降至约 30 °C 时，提起升主动脉套带，施加小儿主动脉阻断钳。通过心脏停搏液插管向主动脉根部灌注 4 °C 冷改良性 St. Thomas 溶液（10–15 mL/kg），并在心脏表面覆盖冰屑以实现快速降温和心肌停搏（图 1I）。
      注：确保阻断钳位置正确，避免压迫无名动脉或颈总动脉，以免影响脑部血流。
  3. 受体心脏切除
    1. 右心房切除：打开心包后，开始切除受体右心房。沿右心房中部做切口，向下延伸至下腔静脉开口，向上延伸至上腔静脉开口，保留足够长度的右心房壁以供后续吻合。
      注：由于左侧半奇静脉直接汇入冠状静脉窦，应保留冠状静脉窦，使左侧半奇静脉的回流得以继续。为避免干扰手术视野，可用 bulldog 钳夹闭左侧半奇静脉，在供体心脏植入后再移除。
    2. 在主动脉和肺动脉根部切断，确保其长度足以满足后续吻合需要。
    3. 切开左心房，从左心耳开始，围绕肺静脉开口做环形切口，保留足够长度的左心房袖状组织。最后完整切除受体心脏，确保所有血管均保留足够长度以供供体心脏植入（图 1J）。
  4. 供体心脏修剪
    1. 肺动脉修剪：根据需要修剪供体心脏，去除多余组织。首先分离主动脉与肺动脉之间的结缔组织，修剪主动脉和肺动脉至合适长度，避免过长导致吻合后扭曲，或过短引起张力过大。
    2. 左心房修剪：将肺静脉汇合为单一左心房袖状结构，并修剪边缘以匹配受体左心房袖的大小。
    3. 右心房修剪：结扎上腔静脉；然后从右心耳至下腔静脉切开右心房，形成右心房袖状结构，并修剪边缘以匹配受体右心房袖的大小（图 1K,L）。
      注：窦房结位于上腔静脉与右心房交界处。操作中应格外小心，避免损伤供体心脏的窦房结，否则将导致术后依赖起搏器。
  5. 供体心脏与受体的吻合
    1. 吻合顺序：左心房—右心房—主动脉—肺动脉
    2. 左心房吻合：采用双针滑动缝合法，将受体左心房袖在左上肺静脉水平与供体左心房袖在左心耳基底部附近进行吻合。开始植入供体心脏（图 1M）。
      1. 将供体心脏置入受体纵隔，使用冰屑持续冷却心脏，防止热量传导至邻近胸壁组织。继续向下缝合至房间隔中下部；在另一侧，沿左心房顶部向下缝合至房间隔。持续评估供体与受体左心房的尺寸差异，适当折叠多余组织以完成吻合。排空左心房内空气后，牢固结扎缝线。
        注：左心房后壁的精细缝合至关重要，以防止术后出血。心脏复跳后，该区域出血可能难以发现和控制。
    3. 右心房吻合：调整供体心脏至接近正常解剖位置，从右心房间隔下端开始。一条缝线沿间隔逆时针方向向上延伸，再转向右心房侧壁；另一条缝线从下腔静脉开口处沿右心房壁向下缝合。两条缝线在右心房侧壁中部相遇并打结（图 1N）。
    4. 主动脉吻合：采用滑动技术行端对端吻合，从血管后壁开始，完成从供体至受体肺动脉的吻合，最后在前壁牢固结扎。
    5. 肺动脉吻合：采用与主动脉吻合相同的技术进行肺动脉吻合，通常在进行肺动脉吻合前开始复温（图 1O）。
  6. 心脏复苏与后续操作
    1. 心脏复苏：完成肺动脉吻合后，将排气针插入升主动脉根部，清除供体心脏内残留空气，随后移除主动脉阻断钳。由麻醉医师协助进行肺膨胀。
    2. 辅助循环：心脏复跳后，需依赖体外循环辅助一段时间（图 1P）。
      注：辅助时间取决于缺血时间和心功能恢复情况。
    3. 止血与关胸：仔细检查所有吻合口有无出血，确保彻底止血。放置临时起搏器，撤离体外循环，拔除插管。在右心房和右心室外膜表面放置临时心外膜起搏导线，并在纵隔和胸腔内放置引流管。最后采用标准技术关闭正中切口。
      注：猪的血管组织脆弱，尤其是右心房和肺动脉，易发生撕裂。操作中应格外谨慎。

4. 术后护理

  1. 手术后立即将动物转移至专用重症监护室进行密切监测。持续监测血流动力学参数，包括中心静脉压（CVP）、动脉血压、心率和血氧饱和度。根据实时监测结果，及时调整血管活性药物和支持性治疗措施，以维持血压和心输出量的稳定。
  2. 心脏功能监测：术后持续监测心电图，观察是否存在心律失常或心肌缺血征象。若出现心律失常，应给予电复律或药物治疗。
    注意：术后早期心律失常常由心脏再灌注引起，需密切观察。应根据心电图变化按需使用抗心律失常药物。术后窦性心动过速较为常见，原因是移植心脏缺乏迷走神经抑制作用。推荐使用伊伐布雷定控制窦性心律，应避免使用β受体阻滞剂，因为猪心脏对其高度敏感，可能导致低血压。
  3. 呼吸管理：术后早期采用机械通气提供呼吸支持，以确保呼吸稳定。随着心肺功能逐步恢复，减少镇静药物使用，一旦动物恢复自主呼吸，即拔除气管插管。
    注意：尽早拔除气管插管并恢复自主呼吸至关重要。长时间留置插管可能导致呼吸衰竭，影响术后恢复。
  4. 术后疼痛管理：根据动物的疼痛表现给予镇痛治疗（常用镇痛药物包括非甾体抗炎药（NSAIDs）和阿片类药物）。
  5. 肾功能监测：术后定期监测尿量及肾功能指标（如肌酐和尿素氮）。若出现尿量减少或肌酐升高，应及时使用利尿剂。
    注意：肾功能的恢复对维持电解质平衡和酸碱平衡至关重要。
  6. 术后并发症的预防：密切观察动物是否出现感染、出血等术后并发症。根据情况给予适当的抗生素、止血药物及输血，以预防和治疗并发症。

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结果

图1 展示了猪原位心脏移植的关键操作步骤，包括正中胸骨切开、打开心包以暴露主要血管、主动脉灌注停跳液、用冰屑对心脏进行降温，以及供体心脏的保存。其中特别强调了一个关键环节：左奇静脉的处理，这是移植手术中的重要步骤。对于供体心脏，应结扎左奇静脉，以防止过多血液流入心包腔；而对于受体，则必须保留左奇静脉的引流功能，以避免术后出现中心静脉压（CVP）升高等并发症。该图详细描绘了这些操作步骤，有助于确保移植过程的可重复性与标准化。

图2 比较了双腔静脉法和双心房法在术后12小时和48小时的重症监护室（ICU）监测结果。结果显示，双腔静脉法导致中心静脉压（CVP）显著升高，并出现明显的血流动力学异常；而双心房法在相同的术后时间点可使CVP及其他监测参数维持在正常范围内。这进一步验证了双心房法在优化血流动力学稳定性方面的优势。

表1总结了术前、体外循环期间、心脏再灌注后以及脱离体外循环后...

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讨论

猪心脏原位移植模型是一种可模拟临床心脏移植的有效实验平台15。猪心脏在解剖结构和生理特性上与人类心脏具有诸多相似之处12。因此，该模型在研究心脏移植的多个方面，特别是心脏保护、手术操作及移植免疫学领域，具有重要的应用价值。然而，尽管具备上述优势，在体外循环条件下实施原位移植手术仍面临显著的技术挑战18。

心脏移植手术中的挑战与解决方案涉及多个方面，其中心房吻合技术的选择——即双心房法与双腔法之间的权衡——是主要关注点之一。在早期实验中，我们最初采用双腔法。然而，在结扎左侧半奇静脉后——该静脉在猪体内引流来自胸壁（包括肋间静脉和胸内静脉）、食管、支气管以及部分腹部区域的静脉血——我们观察到中心静脉压（CVP）显著升高，并伴有腹腔积液以及肝脾肿大。根据我们的观察，左侧半奇静脉的血流量相当可观，可能占体循环静脉回流至右心房总量的五分之一。即使扩大了上、下腔静脉吻合口，这些问题仍无法有效解决。为应对这一情况，我们转而采用双心房法，通过保留左侧半奇静...

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披露

作者声明无利益冲突。

致谢

本工作由国家自然科学基金优秀青年科学基金项目（82125004；负责人：Jiangping Song）、国家重点研发计划前沿生物技术重点专项 &中国科学技术部重点研发计划（2023YFC3404300，姜平松）；中国科学技术部支持项目，依托中国医学科学院阜外医院心血管疾病国家重点实验室（2024GZZD-03，姜平松）；国家自然科学基金（82300464，袁畅）

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10度主动脉阻断钳SinoviewCP40431-19供体手术
10度主动脉阻断钳SinoviewCP40431-19受体手术
30度弓部分支血管钳SinoviewCP40432-19供体手术
45度主动脉阻断钳SinoviewCP40044-18供体手术
45度主动脉阻断钳SinoviewCP40044-18受体手术
Affinity Fusion 氧合系统MedtronicBB841体外循环
麻醉机MindrayA9麻醉及其他
动脉插管Medtronic18Fr体外循环
阿曲库铵恒瑞医药-麻醉及其他
无创平头镊SureMedGF04021-25供体手术
无创平头镊SureMedGF04021-25受体手术
无创平头镊SureMedGF04016-25受体手术
平衡手柄笔式显微外科镊SinoviewFC12010-21供体手术
平衡手柄笔式显微外科镊SinoviewFC12010-21受体手术
巴马小型猪中国科学院动物研究所北方大型动物研究设施-实验动物
Belzer UW 器官保存液Bridge to Life Ltd.1000 ml/袋供体手术
黑色手柄极锐利剪刀SinoviewSC35101-23UC供体手术
黑色手柄极锐利剪刀SinoviewSC35101-23UC受体手术
血气分析仪EdiagnosisPT1000麻醉及其他
体外循环管路MedtronicB-HL-159体外循环
中心静脉导管佰和医疗-麻醉及其他
弯头镊SureMedGC01002-16供体手术
弯头镊SureMedGC01002-12受体手术
弯头镊SureMedGC01002-16受体手术
一次性血液微栓过滤器SansinFAF-2体外循环
一次性储血器过滤器SansinFCR300K体外循环
一次性心脏停搏液灌注系统MedtronicXP41体外循环
多巴胺九安制药-麻醉及其他
气管插管亚新医药YS-0000麻醉及其他
肾上腺素津药制药-麻醉及其他
精细解剖镊SureMedGC01090-20供体手术
精细解剖镊SureMedGC01090-20受体手术
金色手柄超锐利剪刀SinoviewSC35001-23SC供体手术
金色手柄超锐利剪刀SinoviewSC35001-23SC受体手术
人工心肺机LivaNovaS5体外循环
肝素华北制药-麻醉及其他
冰桶SureMedGQ13018-00D供体手术
冰桶SureMedGQ13018-00D受体手术
输液泵中民医疗SN-C8麻醉及其他
静脉穿刺导管KDL16G-26G麻醉及其他
异氟烷鲁南制药-麻醉及其他
异丙肾上腺素收获制药-麻醉及其他
乳酸钠林格液科伦制药-麻醉及其他
大号盆SureMedGQ13033-00D供体手术
大号盆SureMedGQ13033-00D受体手术
喉镜汉飞亚TD-C-III麻醉及其他
盐酸利多卡因注射液科伦药业有限公司H20057816供体手术
注射用硫酸镁正大天晴药业有限公司H20051792供体手术
医用电动胸骨锯京东西机HF-X01供体手术
医用胸骨锯、电动胸骨锯京东西机HF-X01受体手术
中号盆SureMed-供体手术
中号胸骨牵开器SureMedGR04130-00受体手术
改良St. Thomas溶液自制-麻醉及其他
多参数监护仪MindrayBenoversion N17麻醉及其他
荷包缝合针引线器SureMedGR04074-00受体手术
神经及腱索牵开器SureMed-供体手术
神经牵开器SureMed-供体手术
去甲肾上腺素收获制药-麻醉及其他
小儿胸骨牵开器SureMedGR04114-00受体手术
笔式显微外科持针器SinoviewNH11300-21供体手术
笔式显微外科持针器SinoviewNH11300-21受体手术
氯化钾注射液科伦药业有限公司H42021164供体手术
硫酸鱼精蛋白优凯制药-麻醉及其他
荷包缝合导入器SureMedGR04074-00供体手术
Resano无创魔术镊SinoviewFC25501-23S供体手术
直角镊SureMedGC01110-14供体手术
直角镊SureMedGC01089-18供体手术
直角钳SureMedGC01110-14受体手术
直角钳SureMedGC01089-18受体手术
小号盆SureMed-供体手术
醋酸钠林格注射液多瑞药业有限公司H20163331供体手术
碳酸氢钠注射液科伦药业有限公司H20043739供体手术
胸骨牵开器（中号）SureMedGR04130-00供体手术
直头镊SureMedGC01001-12供体手术
直头镊SureMedGC01001-16供体手术
直头镊SureMedGC01001-12受体手术
直头镊SureMedGC01001-16受体手术
5-0 Prolene BB 缝线Ethicon-受体手术
Prolene Blum 4-0 SH 36 缝线Ethicon-受体手术
2-0 Prolene Blu M SH 缝线Ethicon-受体手术
BB 4-0 Prolene 缝线Ethicon-受体手术
温度探头3M-麻醉及其他
扁桃体钳SureMedGC09009-20D供体手术
碳化钨环柄持针器SureMedGN01013-22K供体手术
碳化钨环柄持针器SureMedGN01013-22K受体手术
碳化钨环柄持针器SureMedGN01010-22K受体手术
UW溶液 Belzer-麻醉及其他
静脉插管Medtronic28Fr, 32Fr体外循环
呼吸机MindraySV300麻醉及其他
加重笔式持针器SinoviewNH10400-23受体手术

参考文献

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