我们提出了一种针对啮齿动物快速眼动(REM)睡眠选择性剥夺的新方案。
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我们提出了一种针对啮齿动物快速眼动(REM)睡眠选择性剥夺的新方案。
睡眠大致分为快速眼动(REM)和非REM阶段,并开发了多种睡眠剥夺技术来研究其功能。传统方法——如机械刺激或在快速眼动睡眠时放下动物——常常导致快速习惯化和意外的压力效应,使解读变得困难。在这里,我们介绍一种新颖、温和且温和的啮齿动物REM睡眠剥夺方法:SNiFFer。啮齿动物对鼻腔刺激极为敏感。在这种方法中,软刷在快速眼动睡眠期间轻轻抚摸动物的鼻子,可靠地触发性唤起。为了在快速眼动睡眠中有选择性地应用该技术,我们采用了基于人工智能的实时脑电图(EEG)睡眠阶段分类系统。干预仅在快速动眼期(REM)期间触发,并纳入了一组被绑定的对照组,无论睡眠状态如何,均接受相同的刺激模式。我们进一步在痕迹恐惧条件反射范式中应用SNiFFer,测试学习后6小时内的REM睡眠剥夺是否干扰记忆巩固。与有对照组相比,SNiFFer治疗动物在总REM阶段和REM持续时间显著减少,表明该方法的特异性和疗效。总之,SNiFFer技术为小鼠的REM睡眠剥夺提供了高度选择性、微创的触觉方法。它能够精确控制实验条件,并为研究快速眼动睡眠在记忆和认知中的作用开辟了新可能——但带有一种令人毛骨悚然的转折。
快速眼动(REM)睡眠在记忆巩固等认知过程中起着关键作用 1,2。为了研究REM睡眠在大脑的功能意义,REM睡眠剥夺常作为实验方法被采用。目前,主要有四种方法被广泛用于诱导啮齿动物的快速动眼期睡眠剥夺:旋转盘法1、花盆法3、气泡法4和物理刺激技术5,6。虽然旋转盘和花盆法在消除快速眼动睡眠方面非常有效,但它们常常给动物带来大量压力,如水暴露或身体疲劳7,这会影响行为和生理结果的解读。同样,气泡和传统物理刺激方法倾向于向身体传递宽泛且非特异性的刺激,导致刺激强度的变异和对照组选择有限 4,8。
我们进行了涵盖六十多年REM睡眠剥夺研究的综合文献比较,详见 补充文件1 和 补充表1。我们整合了来自主要研究方向的基础历史、机制、神经化学、激素和行为研究,包括Jouvet、Rechtschaffen、Bergmann、Tufik、Andersen和Borbély。 补充表1 按时间顺序组织了关键论文。它追溯了REM睡眠剥夺技术的方法学演变,并总结了其主要的生物学、神经化学、激素、免疫、体温调节和行为发现。由于本稿作为方法论文章而非全面的历史综述,本文作为补充信息被补充。
为解决这些局限性,我们开发了一种新方法,提供高选择性的REM睡眠剥夺。该技术旨在精确控制地选择性剥夺啮齿动物的快速眼动睡眠(REM)。在这种方法中,我们将刺激限制在动物的鼻子——啮齿动物中最敏感的区域之一。此外,我们采用AI的实时睡眠阶段分类系统,检测并中断具有时间特异性的REM睡眠发作10。该AI系统参考过去4个时间段内单一通道的脑电信号,并评估当前小鼠的睡眠阶段。这种设置还支持实施绑定控制组,实现时间匹配干预。虽然我们的方案被归类为基于物理刺激的快速眼动睡眠剥夺技术,但与传统方法不同。首先,我们利用人工智能应用实时睡眠阶段分析,实现准确且一致的REM特异性干预。其次,它将刺激区域限制在鼻子顶部,而鼻子顶部是小鼠6中最敏感的区域之一,导致刺激持续时间和强度变化最小。最后,我们新设立了一个带对照组,接受相同剂量的刺激以控制混杂因素。该方案提出了一种研究REM睡眠特有功能的方法。
为了评估该方法的实用性,我们应用它来研究REM睡眠在痕迹恐惧记忆巩固中的作用。先前研究报告称,REM睡眠剥夺会损害海马依赖的恐惧记忆巩固,包括延迟的恐惧记忆11,12。然而,关于REM睡眠剥夺对涉及分布式复杂脑回路的记忆过程的影响,证据存在矛盾(5,13)。痕迹恐惧记忆巩固需要将足电击(无条件刺激)、听觉线索(条件刺激)及其间的痕迹间隔联系起来——这一过程已知会招募多个脑区,包括海马体、内侧前额叶皮层和杏仁核14。因此,我们在小鼠进行痕迹恐惧条件反射后立即剥夺了6小时的快速动眼动睡眠(REM sleep 15),这一时间窗口被认为对记忆巩固至关重要。利用该方案,我们评估了REM睡眠剥夺对依赖分布式神经系统协调活动的记忆痕迹巩固的影响。本文提出了一种新颖的方法,描述了详细的实验方案以测试其效应。
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所有动物实验均由筑波大学机构动物护理与使用委员会批准。本研究使用了雄性和雌性C57BL/6J小鼠(11–13周龄,体重20–35克)。本研究所用材料和仪器的完整列表见 材料表。
1. 脑电极外科植入17
2. 处理与习惯化
3. 基线脑电图记录
4. 恐惧条件反射18,19
5. 快速眼动睡眠剥夺
6. 记忆回忆测试
7. 数据分析
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脑电电极的外科植入
小鼠在手术中应完全麻醉。如果出现麻醉失败的迹象,如挣扎,应将其从方案中移除。同样,如果出血持续超过10秒,可能会对小鼠大脑造成严重损伤,建议停止实验。手术后,大多数小鼠通常在1小时内醒来。他们的步态和眼球运动应恢复正常,类似于手术前的状况。
操控与习惯
如果小鼠在操作过程中表现出癫痫或疼痛的迹象,应将其从实验中移除。在习惯化过程中,老鼠通常在被抱着时变得不那么僵硬。这个习惯期通常在第2天或 第3天开始 时发生。连接脑电图线时,用柔软的布轻轻覆盖小鼠的眼睛,以保持其平静并减少运动(补充图1)。如果事先正确操作,鼠标通常会保持静止,直到你调整鼠标的头销以便连接线缆。
基线脑电记录
6小时内记录的REM睡眠总量应超过每只小鼠15分钟。至少一侧的脑电信号...
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该方案使使用有对照小鼠的小鼠实现选择性REM睡眠剥夺。与传统方法如花盆和旋转盘技术不同,该系统允许实现精细匹配的对照组,使动物在同一昼夜节律时间内获得相同的刺激。此外,这种方法最大限度地减少了刺激位置的变异性,这是传统轻柔操作和气吹方法的常见局限。因此,这种技术可能能够更精确地分离REM睡眠功能。
该方案中的关键步骤是在REM睡眠剥夺过程中对鼻子进行精准且温和的刺激。对身体其他部位施加刺激可能会带来刺激效应的变异性。此外,非特异性或过度刺激可能诱发急性压力,削弱后续行为评估的可靠性。
另一个考虑因素是地板材料的使用量。过多的垫层可能遮挡受试者的鼻子,从而干扰刺激的传递。如果老鼠鼻子似乎堵塞,应在习惯化和基线记录期间逐渐减少地面材料的量。最后,如图1C,G所示,一些小鼠表现出相对较高或较低的快速眼动睡眠。这种变异性,尤其是REM睡眠时间相对较低的小鼠,可能是解读群体差异...
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作者声明没有利益冲突。
感谢中田Y.提供睡眠阶段分类。我们感谢所有IIIS成员。该工作得到了AMED JP21zf0127005、JP21km0908001、JP23wm0525003、日本学术振兴会(JSPS)(26H02428、24H00894、23H02784、22H00469、16H06280)对M.S.的资助,23K19393和24K18212给I.K.的资助,25KJ0664给C.K.的资助,24H00893给T.N.,以及武田科学基金会的支持。
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| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| 5%葡萄糖 | 大冢 | 35061410 | |
| 6针头部 | 广濑 | 172-0989 | |
| 粘合剂 | 小西 | 16351 | |
| 麻醉机 | 信浓清作所 | SN-487-0T | |
| 压接壳体 | 广濑 | 688-9095 | |
| 压接套筒 | 广濑 | 688-8982 | |
| 冰焰4 | 医学联合公司 | RRID:SCR_014429 | 版本 4.104 |
| GraphPad 棱镜 | GraphPad | RRID:SCR_002798 | 版本 10.5.0 |
| 布洛芬 | 东京化学工业 | I0415 | |
| 异氟醚 | 维亚特里斯 | 901036504 | |
| 洛克泰特454 | 亨克尔 | UFI: MAK2-7WRP-G202-F235 | |
| 鼠标(C57BL/6J) | 杰克逊实验室 | RRID:IMSR_JAX:000664 | 11.0 - 13.0周龄,恐惧条件反射课程 |
| 画笔 | 村台生堂 | 4943668000448 | SDflat No.8,尖端长度:8.2 毫米;宽度:18.8毫米 |
| 普罗维尼斯液体 | 少府 | 21400BZZ00451000 | 250毫升 |
| 普罗维尼斯粉末 | 少府 | 21400BZZ00451000 | 250克 |
| 睡眠信号记录器 | 机声COMTEC | RRID:SCR_018200 | 版本 1.2.10 |
| 不锈钢螺丝 | 山崎 | 无 | φ1.0 & 次数;2.0 |
| 标准立体定向仪器 | 美国图书馆协会科学 | 68038 | |
| 葵花籽油 | 西格玛-奥尔德里奇 | S5007-250ML | |
| 白色凡士林 | 太阳制药 | K09-TS |
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