Method Article

利用选择性甩鼻忘记REM的方法(SNiFFer)进行选择性REM睡眠剥夺方法

DOI:

10.3791/69042

April 21st, 2026

In This Article

Summary

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

我们提出了一种针对啮齿动物快速眼动(REM)睡眠选择性剥夺的新方案。

Abstract

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睡眠大致分为快速眼动(REM)和非REM阶段,并开发了多种睡眠剥夺技术来研究其功能。传统方法——如机械刺激或在快速眼动睡眠时放下动物——常常导致快速习惯化和意外的压力效应,使解读变得困难。在这里,我们介绍一种新颖、温和且温和的啮齿动物REM睡眠剥夺方法:SNiFFer。啮齿动物对鼻腔刺激极为敏感。在这种方法中,软刷在快速眼动睡眠期间轻轻抚摸动物的鼻子,可靠地触发性唤起。为了在快速眼动睡眠中有选择性地应用该技术,我们采用了基于人工智能的实时脑电图(EEG)睡眠阶段分类系统。干预仅在快速动眼期(REM)期间触发,并纳入了一组被绑定的对照组,无论睡眠状态如何,均接受相同的刺激模式。我们进一步在痕迹恐惧条件反射范式中应用SNiFFer,测试学习后6小时内的REM睡眠剥夺是否干扰记忆巩固。与有对照组相比,SNiFFer治疗动物在总REM阶段和REM持续时间显著减少,表明该方法的特异性和疗效。总之,SNiFFer技术为小鼠的REM睡眠剥夺提供了高度选择性、微创的触觉方法。它能够精确控制实验条件,并为研究快速眼动睡眠在记忆和认知中的作用开辟了新可能——但带有一种令人毛骨悚然的转折。

Introduction

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快速眼动(REM)睡眠在记忆巩固等认知过程中起着关键作用 1,2。为了研究REM睡眠在大脑的功能意义,REM睡眠剥夺常作为实验方法被采用。目前,主要有四种方法被广泛用于诱导啮齿动物的快速动眼期睡眠剥夺:旋转盘法1、花盆法3、气泡法4和物理刺激技术5,6。虽然旋转盘和花盆法在消除快速眼动睡眠方面非常有效,但它们常常给动物带来大量压力,如水暴露或身体疲劳7,这会影响行为和生理结果的解读。同样,气泡和传统物理刺激方法倾向于向身体传递宽泛且非特异性的刺激,导致刺激强度的变异和对照组选择有限 4,8

我们进行了涵盖六十多年REM睡眠剥夺研究的综合文献比较,详见 补充文件1补充表1。我们整合了来自主要研究方向的基础历史、机制、神经化学、激素和行为研究,包括Jouvet、Rechtschaffen、Bergmann、Tufik、Andersen和Borbély。 补充表1 按时间顺序组织了关键论文。它追溯了REM睡眠剥夺技术的方法学演变,并总结了其主要的生物学、神经化学、激素、免疫、体温调节和行为发现。由于本稿作为方法论文章而非全面的历史综述,本文作为补充信息被补充。

为解决这些局限性,我们开发了一种新方法,提供高选择性的REM睡眠剥夺。该技术旨在精确控制地选择性剥夺啮齿动物的快速眼动睡眠(REM)。在这种方法中,我们将刺激限制在动物的鼻子——啮齿动物中最敏感的区域之一。此外,我们采用AI的实时睡眠阶段分类系统,检测并中断具有时间特异性的REM睡眠发作10。该AI系统参考过去4个时间段内单一通道的脑电信号,并评估当前小鼠的睡眠阶段。这种设置还支持实施绑定控制组,实现时间匹配干预。虽然我们的方案被归类为基于物理刺激的快速眼动睡眠剥夺技术,但与传统方法不同。首先,我们利用人工智能应用实时睡眠阶段分析,实现准确且一致的REM特异性干预。其次,它将刺激区域限制在鼻子顶部,而鼻子顶部是小鼠6中最敏感的区域之一,导致刺激持续时间和强度变化最小。最后,我们新设立了一个带对照组,接受相同剂量的刺激以控制混杂因素。该方案提出了一种研究REM睡眠特有功能的方法。

为了评估该方法的实用性,我们应用它来研究REM睡眠在痕迹恐惧记忆巩固中的作用。先前研究报告称,REM睡眠剥夺会损害海马依赖的恐惧记忆巩固,包括延迟的恐惧记忆11,12。然而,关于REM睡眠剥夺对涉及分布式复杂脑回路的记忆过程的影响,证据存在矛盾(5,13)。痕迹恐惧记忆巩固需要将足电击(无条件刺激)、听觉线索(条件刺激)及其间的痕迹间隔联系起来——这一过程已知会招募多个脑区,包括海马体、内侧前额叶皮层和杏仁核14。因此,我们在小鼠进行痕迹恐惧条件反射后立即剥夺了6小时的快速动眼动睡眠(REM sleep 15),这一时间窗口被认为对记忆巩固至关重要。利用该方案,我们评估了REM睡眠剥夺对依赖分布式神经系统协调活动的记忆痕迹巩固的影响。本文提出了一种新颖的方法,描述了详细的实验方案以测试其效应。

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Protocol

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所有动物实验均由筑波大学机构动物护理与使用委员会批准。本研究使用了雄性和雌性C57BL/6J小鼠(11–13周龄,体重20–35克)。本研究所用材料和仪器的完整列表见 材料表

1. 脑电极外科植入17

  1. 麻醉与动物准备
    1. 用4%异氟醚与空气混合,3分钟内诱导麻醉。通过无足部撤退反射和肌肉张力,以及呼吸模式稳定,确认了充分的麻醉效果。
    2. 用电动剃须刀刮除背部头部和颈部,从后颈到眼中区域。当小鼠表现出清醒(如胡须移动)时,再次诱导麻醉。
  2. 头部固定与颅骨暴露
    1. 将动物固定在立体定位框架中,确保鼻腔和颅骨的对齐。从此直到整个手术结束,麻醉一直通过异氟醚蒸发泵系统持续维持。
    2. 在双眼涂抹眼药膏以防止角膜干燥。用脱毛膏去除剩余的毛发。
    3. 在头皮中线切开,轻轻拉开皮肤,露出从耳后线到眼前线的头骨。用棉签取出黏膜组织。
  3. 地标识别与水平化
    1. 识别bregma和lambda;调整立体转动臂,使这些点保持在±0.05毫米以内水平。确认横坐标±距离雷格玛3.0毫米)也是水平的(±0.05毫米)。
  4. 钻孔与螺丝安装
    1. 标记以下相对于布雷格玛的坐标。按照这些坐标钻四个导向孔。前后侧/内侧侧:+1.5毫米 / ±1.5毫米,–3.0毫米 / ±1.7毫米。
    2. 在每个孔中植入脑电记录螺丝,并用氰基丙烯酸酯凝胶固定。用一层薄薄的牙科胶水包裹并覆盖裸露的颅骨和头骨。
  5. 术后护理
    1. 给药5%葡萄糖溶液0.5毫升和布洛芬(或等效镇痛药)0.13毫升。
    2. 将老鼠放回其固定笼子,一个直径21.9厘米、高31.6厘米的圆柱形Plexiglas笼子,置于一个绝缘舱内(45.7 x 50.8 x 85.4厘米)。该舱室温度维持在23.5±2.0摄氏度,相对湿度为50.0%±10.0%,采用12小时的明暗周期(光明阶段:上午9:00至晚上9:00)。
    3. 将动物放入加热的恢复笼中。在笼子前等老鼠醒来。手术后,动物被安置在单独的饲养中,实验期间未返回群体饲养。

2. 处理与习惯化

  1. 实验时间表
    1. 手术后24–48小时内在轻型阶段开始操作。连续四天。
  2. 手术程序
    1. 第一天,手边放一只鼠标2分钟,每次两次。将鼠标放在实验者张开的手掌上,手指伸出,掌心朝上。手掌位置略高于前臂,因为老鼠自然会爬到高处。让老鼠自由移动,不受限制;如果老鼠试图爬上前臂,轻轻握住尾巴根部,轻轻将前臂放回掌心。每个间歇时间都超过20分钟。这应该在光相期间进行。
      注意:如果老鼠跳出手或咬伤手,第一天应用布或薄纸覆盖手部。衣物可以重复使用,且应每两周清洗一次。
    2. 第2-4天,手边放一只老鼠2分钟,每次3次。每个间歇和进行的时段与第一天相同。从行为上评估习惯性:未习惯的小鼠通常通过跳跃或强咬来逃脱,而习惯性老鼠则积极探索手掌,逃脱尝试极少,几乎没有强力咬人。
    3. 在最终操作结束时,将鼠标连接到脑电图记录线缆上。
      注意:当垫料过多以妨碍老鼠鼻子时,请手动挑取部分,并在操作过程中或连接时取下。

3. 基线脑电图记录

  1. 从术后第5天和第6天开始。每天11:00到17:00连续记录脑电图。如果垫料阻碍了老鼠鼻子的通路,应逐渐移除多余的垫料,以确保鼻腔通达,同时尽量减少对动物后续处理的干扰。

4. 恐惧条件反射18,19

  1. 术后第7天(或第8天)开始,时间为10:00至11:00之间。作为准备,向调节室(30 x 25 x 24厘米)喷洒70%乙醇,该腔体由透明丙烯酸墙体和不锈钢网格地板(直径2.0毫米的杆子间距6.0毫米)组成。
  2. 训练方案(总训练1100秒)
    1. 在180秒、400秒、620秒、840秒和1060秒时传递五个听觉提示(20秒上升声,5–20kHz,1.25赫兹,0.8秒时长)。每个声源与脚震(1.0毫安,2秒)配合,分别在218秒、438秒、658秒、878秒和1098秒时发出。

5. 快速眼动睡眠剥夺

  1. 快速眼动睡眠剥夺组(RSD组)
    1. 在恐惧条件反射(ZT2-ZT8)之后,通过激活基于人工智能的睡眠阶段分类系统实时监测脑电图,实现对REM睡眠的实时检测。检测到REM睡眠后,用软画笔轻轻挠动物鼻子,直到其重新唤醒,从刺激开始到觉醒的平均潜伏期为0.89±0.063秒(平均扫描显微仪±0.063秒)。
    2. 实验中,唤起被定义为对触觉刺激的行为反应,特别是刺激后胡须的移动。记录每个挠痒的时间戳以便后续分析。
      注意:挠痒动作没有固定方向模式(如来回、向上或圆形),同时保持持续的轻微触觉刺激,仅限于鼻尖顶部。如果鼻子受阻,应直接刺激振动(胡须)区域,通常该区域暴露。如果老鼠背对画笔,可以根据需要旋转笼子,确保能畅通无阻地进入鼻腔区域。使用顶部开放式笼子时,也可以从上方施加刺激,以确保鼻腔或振动器的持续接触。
  2. 有对照组(有对照组)
    1. 将每只被绑的老鼠配对到一个REM睡眠不足的对应体。与被绑鼠的REM发作同步,同时对其进行鼻痒,同时匹配起始时间和持续时间。每只老鼠在REM睡眠剥夺实验中都使用同一把专用画笔。每次使用后,用弱酸性水喷刷,然后用纸巾擦拭。使用间隔至少24小时,确保清洁过的画笔完全干燥。

6. 记忆回忆测试

  1. 情境回忆测试(测试A)
    1. 睡眠剥夺后24小时(±3小时)开始。将老鼠放回原始调温室(带有70%乙醇气味)。记录5分钟的冻结行为。
  2. 声音提示回忆测试(测试B)
    1. 考试A后3小时进行课程。
    2. 情境准备:在情境B(三棱柱(高30厘米))中喷水,由三面墙组成,边长分别为31厘米、24厘米和24厘米。其中两面墙覆盖着白纸,第三面墙由透明丙烯漆制成,背景中可见一个蓝色矩形。该结构采用塑料地板和透明亚克力天花板。
    3. 记录6分钟的冻结行为。发出一个180秒的听觉提示,与180秒训练相同。

7. 数据分析

  1. 睡眠阶段评分(图1C-G17
    1. 对于每个醒来/非REM/REM,计算总次数、发作次数、平均发作时长和睡眠转换次数,基于人类专家评分数据。每个阶段的标准如下。
      尾流:低幅度,高频(β/γ)
      NREM:高振幅低频(δ)
      REM:低振幅,θ主导
  2. 剥夺质量(图1B
    1. 通过比较每个挠痒刺激的时间戳与人类专家注释的脑电图数据,评估其施加的睡眠阶段。
  3. 冻结行为(图1H,J-K
    1. 使用FreezeFrame4(时效学)来量化恐惧条件反射和回忆测试中的不动(不包括呼吸)。
      1. 启动FreezeFrame 4软件,选择 录制 模式。在文件菜单(左上角)中,指定保存录制文件的目标文件夹。在左侧面板的四个白色输入字段中,输入对应每个鼠标的唯一标识符,确保与屏幕右侧四个文件显示窗口对齐。
      2. 点击界面底部的 “协议 ”面板,定义录音参数,包括总录音时长以及根据实验设计的听觉提示和脚部电击的时间。
      3. 点击屏幕中央的 “参考 ”以获取背景参考图像。把鼠标放进调节室,然后点击 开始 录制。
  4. 辨别指数分析(图1L
    1. 通过以下公式计算辨别指数:
      测试A平均5分钟就冻结——测试B平均前3分钟就冻结/测试A平均5分钟就冻结,B测试平均前3分钟就冻结。
  5. 冲击反应性指数分析(图1I
    1. 使用手追踪测量动物2在恐惧条件训练中电击开始点前后的二维运动。通过以下公式计算冲击反应性指数:
      震动时的运动——运动前震动/震动中的运动 + 运动前震动

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Results

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脑电电极的外科植入
小鼠在手术中应完全麻醉。如果出现麻醉失败的迹象,如挣扎,应将其从方案中移除。同样,如果出血持续超过10秒,可能会对小鼠大脑造成严重损伤,建议停止实验。手术后,大多数小鼠通常在1小时内醒来。他们的步态和眼球运动应恢复正常,类似于手术前的状况。

操控与习惯
如果小鼠在操作过程中表现出癫痫或疼痛的迹象,应将其从实验中移除。在习惯化过程中,老鼠通常在被抱着时变得不那么僵硬。这个习惯期通常在第2天或3天开始 时发生。连接脑电图线时,用柔软的布轻轻覆盖小鼠的眼睛,以保持其平静并减少运动(补充图1)。如果事先正确操作,鼠标通常会保持静止,直到你调整鼠标的头销以便连接线缆。

基线脑电记录
6小时内记录的REM睡眠总量应超过每只小鼠15分钟。至少一侧的脑电信号...

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Discussion

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该方案使使用有对照小鼠的小鼠实现选择性REM睡眠剥夺。与传统方法如花盆和旋转盘技术不同,该系统允许实现精细匹配的对照组,使动物在同一昼夜节律时间内获得相同的刺激。此外,这种方法最大限度地减少了刺激位置的变异性,这是传统轻柔操作和气吹方法的常见局限。因此,这种技术可能能够更精确地分离REM睡眠功能。

该方案中的关键步骤是在REM睡眠剥夺过程中对鼻子进行精准且温和的刺激。对身体其他部位施加刺激可能会带来刺激效应的变异性。此外,非特异性或过度刺激可能诱发急性压力,削弱后续行为评估的可靠性。

另一个考虑因素是地板材料的使用量。过多的垫层可能遮挡受试者的鼻子,从而干扰刺激的传递。如果老鼠鼻子似乎堵塞,应在习惯化和基线记录期间逐渐减少地面材料的量。最后,如图1C,G所示,一些小鼠表现出相对较高或较低的快速眼动睡眠。这种变异性,尤其是REM睡眠时间相对较低的小鼠,可能是解读群体差异...

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Disclosures

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作者声明没有利益冲突。

Acknowledgements

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感谢中田Y.提供睡眠阶段分类。我们感谢所有IIIS成员。该工作得到了AMED JP21zf0127005、JP21km0908001、JP23wm0525003、日本学术振兴会(JSPS)(26H02428、24H00894、23H02784、22H00469、16H06280)对M.S.的资助,23K19393和24K18212给I.K.的资助,25KJ0664给C.K.的资助,24H00893给T.N.,以及武田科学基金会的支持。

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5%葡萄糖大冢35061410
6针头部广濑172-0989
粘合剂小西16351
麻醉机信浓清作所SN-487-0T
压接壳体广濑688-9095
压接套筒广濑688-8982
冰焰4医学联合公司RRID:SCR_014429版本 4.104
GraphPad 棱镜GraphPadRRID:SCR_002798版本 10.5.0
布洛芬东京化学工业I0415
异氟醚维亚特里斯901036504
洛克泰特454亨克尔UFI: MAK2-7WRP-G202-F235
鼠标(C57BL/6J)杰克逊实验室RRID:IMSR_JAX:00066411.0 - 13.0周龄,恐惧条件反射课程
画笔村台生堂4943668000448SDflat No.8,尖端长度:8.2 毫米;宽度:18.8毫米
普罗维尼斯液体少府21400BZZ00451000250毫升
普罗维尼斯粉末少府21400BZZ00451000250克
睡眠信号记录器机声COMTECRRID:SCR_018200版本 1.2.10
不锈钢螺丝山崎φ1.0 & 次数;2.0
标准立体定向仪器美国图书馆协会科学68038
葵花籽油西格玛-奥尔德里奇S5007-250ML
白色凡士林太阳制药K09-TS

References

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