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方法文章

幼年兰德瑞斯猪左心室辅助装置（LVAD）植入术：一种用于小儿心力衰竭的LVAD植入模型

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DOI：

10.3791/69151

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2026年1月16日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cardiac Surgery, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 2Beijing Key Laboratory of Preclinical Research and Evaluation for Cardiovascular Implant Materials, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 3Guangzhou First People's Hospital, The Second Affiliated Hospital of South China University of Technology, 4Department of Cardiac Surgery, Fuwai Yunnan Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, Affiliated Cardiovascular Hospital of Kunming Medical University, 5State Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 6Shenzhen Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, 7Sanya Institute of China Agricultural University

通讯作者： Haisheng Chen <drchenhaisheng@163.com>, Jiangping Song <fwsongjiangping@126.com>

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文介绍了一种将左心室辅助装置（LVAD）植入幼猪体内的实验方案。该模型为研究儿童LVAD植入术以及揭示LVAD治疗中心室逆向重构的机制提供了有力手段。

摘要

本研究建立了一种儿科左心室辅助装置（LVAD）植入模型，用于模拟儿科LVAD支持并探究心脏逆向重构的机制。心力衰竭（HF）是一种常见的全球性心血管疾病，LVAD植入是治疗心力衰竭的重要手段。然而，现有的儿科LVAD植入模型仍不完善，且LVAD治疗引起心室逆向重构的机制尚不明确，尤其是在儿童中，尽管已有大量研究揭示了可能的作用靶点。因此，明确这一机制，特别是针对儿童的机制，十分必要。一个良好的动物模型是评估新型儿科LVAD功能并揭示其关键作用机制的基础。我们建立了一种幼年长白猪LVAD植入模型，可用于评估儿科LVAD的安全性和有效性。LVAD植入后，泵体维持稳定且持续的血流超过1个月。此外，包括血流动力学在内的各项生命体征均稳定，处于理想和正常范围内。该模型能够准确模拟临床患者LVAD植入后的血流动力学状态，可用于追踪LVAD植入后的连续变化过程，同时可用于揭示儿童LVAD植入的反应性与安全性。本实验方案提供了一种简便、标准化的通用流程，可用于构建统一的儿童LVAD植入研究模型。

引言

左心室辅助装置（LVAD）治疗可提高心力衰竭患者的生存率，并可作为心脏移植的过渡手段。LVAD在成人中已应用数十年，被认为可通过促进心肌逆向重构来恢复心脏功能1。以往的研究主要集中在接受LVAD植入的成年患者2。然而，LVAD治疗在儿童中引起逆向重构的详细分子机制仍不明确3。因此，建立一个能够用于研究LVAD治疗诱导逆向重构机制的良好模型十分必要。尽管小鼠模型在心血管疾病药物评价和器械开发中被广泛应用，但小鼠的免疫系统、心肌收缩力、血流动力学和代谢特征与人类存在显著差异。此外，小鼠静息心率可高达每分钟500–600次，是人类的6–10倍，心跳过快不利于心室辅助装置的植入。而且，小鼠左心室和血管尺寸极小，设计并植入足够纤细、柔韧、生物相容性良好且能保证足够流量和低阻力的管道极为困难。因此，亟需建立更接近人类的动物模型。在循环系统方面，猪与人类非常相似，是研究人类循环系统疾病或器械植入的理想动物模型，猪模型也已广泛应用于心室辅助装置的临床前转化研究4,5。本方案建立了一种新的幼年长白猪儿科LVAD植入模型。

此外，小儿心力衰竭（PHF）影响每10万名儿童中的0.87至7.4例6。尽管心脏移植（HT）是治疗心力衰竭的金标准方法，但部分儿童无法立即获得供体心脏。因此，需要为心力衰竭患儿植入小儿左心室辅助装置（LVAD）以维持生命。尽管LVAD在儿科中的应用日益增加，但这些患儿通常病情复杂，可能需要治疗房室传导阻滞7。此外，目前尚无适用于心力衰竭患儿的理想小儿LVAD，既往临床结果显示，其大出血、卒中、感染及肾功能障碍的发生率均高于成人8。在以往的短期临床试验中，小儿LVAD的使用已导致缺血性卒中和严重心律失常等问题，表明小儿LVAD仍需进一步优化9。因此，建立儿童LVAD植入模型十分必要，该模型可为新型LVAD测试或逆向心室重构机制研究提供重要平台。幼年长白猪体型相对较小，心脏重量约为100 g，与儿童心脏相近，可用于评估专为儿童设计的可植入心室辅助装置的安全性和有效性。因此，幼年长白猪是开展儿童LVAD植入研究的合适品系。

本文提供了一种年轻的本地品种LVAD植入模型。该模型可用于揭示LVAD逆向重构的机制，并评估小儿LVAD植入的安全性和有效性。

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方案

​所有涉及猪的实验程序均经中国医学科学院阜外医院机构动物护理和使用委员会（IACUC）批准（伦理批准编号：0109-1-35-ZX(X)-5）。我们的所有实验均遵循ARRIVE指南。实验动物为3月龄雄性幼年长白猪（30-35kg），提前饲养并隔离于阜外医院动物中心的实验设施中，以适应环境并减少应激反应。实验前对动物进行检查，确保其术前健康状况良好；若存在异常行为特征、异常症状或体征，则将其排除在实验之外。根据动物实验中心的常规操作规程，实验动物在心脏移植及检查前需禁食禁饮。

1. 实验动物的术前管理与准备

注意：动物福利措施：术前确认动物健康状况。提供保温支持（使用暖风毯），并维持核心体温在 37.0–38.5 °C。在麻醉诱导时及长时间麻醉期间每 2–4 小时为双眼涂抹无菌眼用润滑剂。在切口前确认手术麻醉深度（无眨眼反射、下颌张力轻微、对脚趾夹捏无反应），并定期重新评估。持续监测心电图（ECG）、血氧饱和度（SpO2）、呼气末二氧化碳（EtCO2）、血压（无创或插管时采用有创监测）、呼吸参数及核心体温；至少每 5–10 分钟记录一次。

  1. 术前12小时禁食，术前4小时禁水。
  2. 使用氯胺酮 10–20 mg/kg 肌内注射进行术前用药/镇静，然后以丙泊酚 2–4 mg/kg 静脉注射诱导麻醉，以实施气管插管。
  3. 建立耳缘静脉通路。
    1. 在耳根部紧扎止血带以使静脉充血。
    2. 用非优势手拉伸并固定耳朵。用优势手以握笔姿势持住导管针，针尖斜面朝上，呈15-30度角° 与皮肤呈一定角度。
    3. 无菌导管置入：必要时剪除局部毛发；用氯己定（或聚维酮碘）与70%异丙醇交替擦拭穿刺部位 ×3；使用无菌手套和无菌物品；置管后应用无菌敷料/透明薄膜覆盖。维护：每6–8小时及给药后用肝素化生理盐水（例如，10 U/mL）冲洗2–5 mL；每日至少检查穿刺部位两次；怀疑发生静脉炎或感染时及时更换。以流畅的动作一次性穿透皮肤和静脉壁。
    4. 当观察到回血进入腔内时，将整个装置再推进1-2 mm。随后固定针芯（金属针），并将塑料导管完全推进血管内。
    5. 在导管尖端上方的皮肤处施加压力以防止出血，迅速撤出导丝，并将其丢弃至锐器容器中。立即连接肝素帽或三通阀。
    6. 从耳基部移除止血带。用注射器抽吸以观察回血，确认血管内置入。缓慢推注1-2 mL生理盐水进行冲洗。观察穿刺部位周围是否有肿胀，以判断是否存在外渗。
    7. 用自粘绷带 loosely 包裹整个耳朵，确保耳尖露出以监测缺血情况。
  4. 给予丙泊酚（2–4 mg/kg，静脉注射）并进行气管插管。使用100%氧气预充氧。2 在可能的情况下持续3–5分钟。诱导时使用眼用润滑剂。在肩部/髋部/四肢下方放置衬垫，并定期检查受压部位，以防止肌肉缺血和神经损伤。
    1. 检查并准备好合适尺寸的气管插管、喉镜（直镜片）、导丝、注射器、润滑剂、牙垫/卷纱布、固定胶带和听诊器。
    2. 将猪置于稳定的仰卧位，伸展颈部并后仰头部。
    3. 提供100%氧气 通过 若条件允许，佩戴面罩3至5分钟。
    4. 将喉镜片插入患者口腔右侧口角，推进时将舌体向左推开。
    5. 沿舌体正中线推进喉镜片。辨认会厌后，用喉镜片前端轻柔抬起并下压会厌，以暴露声门（呈垂直裂隙状）。
    6. 当声门打开（吸气时），将气管插管（若使用导丝，则连同导丝一起）经右侧声带裂隙插入气管。
    7. 导管推进到位后，固定导管并小心撤出导丝。
    8. 观察管内是否有冷凝水，并在管口处感受是否有呼出的气流。
    9. 使用注射器向导管气囊内充气，直至导管周围的漏气现象被密封。
    10. 连接呼气末二氧化碳监测仪；若出现规律的 EtCO₂ 波形，则表明气管插管位置正确。2 波形确认气管内导管位置正确。
    11. 将导管系在咬合块上，并使用胶带将其牢固地固定在下颌或上颌。
    12. 将气管插管连接至麻醉机管路。气管插管完成后，将动物转移至手术室。
  5. 肌肉松弛剂：静脉推注0.5 mg/kg阿曲库铵后，以5–10 µg/kg/min
    注意：使用阿曲库铵后需进行机械通气。典型设置（幼年猪）：容量控制通气，潮气量 8–10 mL/kg，呼吸频率 12–18 次/分钟，呼气末正压 5 cmH₂O。2O₂，FiO₂2 0.4–0.6；调整以维持呼气末二氧化碳（EtCO₂）2 35–45 mmHg 和 SpO2 >95%.
  6. 维持麻醉：吸入2%–3%异氟烷进行麻醉维持，并持续输注右美托咪定0.5–2.0 µg/kg/h 静脉输注（滴定至有效剂量）和丙泊酚 1-2 mg/kg/h。使用琥珀胆碱 2 mg/kg 作为肌肉松弛剂（猪对顺式苯二甲酸不敏感）。
  7. 进行前腔静脉穿刺以监测中心静脉压（CVP）。
    1. 在胸锁乳突肌前缘与气管之间的颈静脉沟处进行触诊。
    2. 在下颌角至胸骨柄连线的上三分之一与中三分之一交界处做一3-4 cm的纵行切口。
    3. 逐层锐性切开皮肤及皮下筋膜。
    4. 通过钝性分离颈阔肌以暴露颈动脉鞘。
    5. 使用花生剥离器游离出1-2厘米的颈静脉段。
    6. 在分离出的静脉段下方穿过两根结扎线（近端结扎线用于牵引，远端结扎线用于永久结扎）。
    7. 使用虹膜剪在结扎线之间的静脉前壁做一个V形切口，进行静脉切开术。
    8. 在直视下将导管斜面向下插入，以确保其位于管腔内。
    9. 将导管向头侧推进15-20 cm，直至到达上腔静脉（SVC）。
    10. 通过抽吸暗红色静脉血来确认位置。
    11. 用3-0丝线将固定翼缝合至皮下组织。
    12. 逐层缝合伤口（筋膜：可吸收缝线；皮肤：间断不可吸收缝线）。
    13. CVP 监测设置：依次连接导管、三通旋塞阀、压力传感器和监护仪。
    14. 在胸骨角水平将换能器调零，并开始连续监测中心静脉压（CVP）波形。
  8. 连接三导联心电图，并在全过程中心电图监测。
  9. 同时监测 SpO₂2 （脉搏血氧饱和度监测），EtCO₂2 （二氧化碳波形图）和核心体温（直肠或食管探头）。在诱导期/关键阶段每5–10分钟至少记录一次参数，之后每10–15分钟记录一次。维持体温在37.0–38.5℃ °C 使用暖风保温毯/循环温水垫
  10. 必要时建立股动脉通路以测量血压。
    1. 在腹股沟韧带中点下方约2-3厘米处定位股动脉搏动，该中点位于连接髂前上棘与耻骨结节的连线上。
    2. 沿股动脉搏动轴线做一条4-5厘米的纵行切口。
    3. 切开皮肤和皮下脂肪，并通过筋膜进行钝性分离。
    4. 切开股鞘以暴露股动脉，并游离2-3 cm的股动脉段。
    5. 在近端和远端应用微血管夹。
    6. 创建一个横向动脉切口（动脉周长的50%）。
    7. 将导管以斜面向上30度角插入°.
    8. 将导管向主动脉方向推进8-10 cm。
    9. 确认搏动性鲜红色血液流动。
    10. 使用5-0 Prolene缝线将导管固定翼缝合至深筋膜。
    11. 逐层缝合伤口。
    12. 依次连接以下部件：导管、三通阀、压力传感器、监护仪。
    13. 将探头置于右心房水平（第4肋间隙/腋中线）。
    14. 进行零点校准并启动连续压力监测。

2. LVAD 植入

  1. 术前无菌皮肤准备：广泛剪毛后，用氯己定（或聚维酮碘）与70%酒精交替擦洗手术区域 ×3；铺无菌巾。若术中手套或敷料被污染，需及时更换。取仰卧位行胸骨正中切口开胸；悬吊心包并固定，以充分暴露心脏。
  2. 肝素化：给予肝素钠注射液（100 U/kg） 通过 中心静脉导管。注射后3-5分钟，采集动脉血样测定活化凝血时间（ACT）。ACT值必须达到并维持在 > 在开始建立体外循环（CPB）前 480 秒
  3. 体外循环的建立
    1. 连接体外循环（CPB）管路后，用预先配制的预充液进行系统预充（乳酸钠林格注射液∶泰得欣6% = 2∶1，添加肝素∶每1 mL总预充体积加入肝素2 - 4 IU，碳酸氢钠∶每1000 mL预充体积加入5 - 10 mmol等）。
    2. 在主动脉前壁选定的插管位置，使用带垫片的双头缝线缝合两针荷包缝线。
    3. 切开荷包缝合线的中心，插入一根22 F的主动脉插管。牢固结扎荷包缝合线并固定插管，确保止血。
    4. 将套管的远端连接至体外循环机的动脉管路。
    5. 在右心耳选定插管位置，并在该位置放置一带垫片的双头缝线。
    6. 用手术刀片切开荷包缝合线的中心，插入26 F静脉插管，并将荷包缝合线紧扎于插管周围。
    7. 将插管连接至体外循环机的静脉管路。
  4. 将LVAD信号线从背部皮下隧道穿出，并连接至控制器，以防止猪苏醒后摩擦信号线导致其脱落。
    1. 在猪背部距中线3-5 cm处标记信号线穿出的位置。
    2. 在皮肤上做一切口以形成切口点。使用血管钳向左侧第四肋间进行皮下组织钝性分离。
    3. 使用金属导丝引导信号线穿过皮下隧道。外端连接至控制器，内端作为备用连接左心室辅助装置（LVAD）。
  5. 使用超声确定二尖瓣的位置和方向。
    1. 将无菌高频线阵探头（7-10 MHz）轻柔地置于左心室心尖部的非血管区域，以获取关键成像切面。
    2. 在左心室长轴切面中，定位前叶二尖瓣（A2/A3 节段）与后叶二尖游戏副本区（P2/P3 节段）之间的对合区域。
    3. 在改良的心尖四腔心切面中，调整探头沿右心室游离壁的倾斜角度，以显示整个二尖瓣对合线。
    4. 在舒张中期冻结图像，然后测量二尖瓣前叶游离缘中点至拟置入的左心室辅助装置流入道插管位置中心之间的垂直距离（> 15 mm。
  6. 确保左心室辅助装置（LVAD）已预先成功连接至人工血管。在生理盐水中进行测试，以确认LVAD功能正常，且人工血管无渗漏。
  7. 使用无菌手术标记笔在心脏心尖处标出心尖环的固定位置。
  8. 使用带垫片的5-0缝合线将心尖环固定在心尖位置。
  9. 使用心尖打孔器去除壁环内的心肌组织，并用镊子和剪刀修整，以防止碎片落入心腔。
  10. 将左心室辅助装置（LVAD）置于生理盐水中，缓慢运行并用生理盐水充满，以排尽泵内所有空气。
  11. 阻断人工血管，防止空气进入。
  12. 将LVAD泵头插入顶环，并确保泵头进入心腔。拧紧锁紧装置，然后移除顶环夹。
  13. 确定人工血管（直径：8 mm）从左心室辅助装置泵头至升主动脉的合适长度（15–20 cm）。
  14. 在升主动脉前外侧放置部分阻断钳。
  15. 在冠状动脉开口远端1厘米处，用手术刀片做一个初始的刺切切口。
  16. 使用剪刀将切口扩展为椭圆形。
  17. 切出一个约30度角的斜向开口°并将末端与升主动脉吻合，以避免人工血管扭曲。
    1. 后壁（6点钟位置）：放置带垫片的缝线。
    2. 前壁（12点钟位置）：放置单纯间断缝合线。
    3. 用连续缝合完成剩余的周缘，并以手术结固定吻合处。
      注意：血管移植物长度应额外预留10%，以防止张力过大，并确保移植物全程无扭曲或成角。
  18. 检查有无出血，并进行进一步修复和缝合。
  19. 将超声探头置于右心房表面，进行超声检查以观察LVAD泵头的位置，确认泵的位置正确（LVAD的入口直接对向三尖瓣）。
  20. 将LVAD控制器设定为目标转速（rpm）和流量：根据猪的体重和心输出量调整合适的转速和流量。从1.0 L/min开始逐步增加流量，并维持血压稳定。
  21. 将超声探头置于升主动脉以检查血流情况。确保人工血管内的血流顺畅，且主动脉内无明显湍流。
  22. 在心脏左右两侧各置入一根引流管，并连接外部负压吸引瓶。
  23. 对齐胸骨并逐层关闭胸腔。
    1. 使用18 G针引导器，将五根5-0不锈钢胸骨钢丝穿过胸骨，每个肋间隙穿一根钢丝。从剑突开始，沿头侧方向依次紧密拧紧钢丝。
    2. 使用连续的3-0 Vicryl缝线缝合胸大肌及筋膜。
    3. 使用埋藏式连续2-0 Monocryl缝线缝合皮下组织。
    4. 使用4-0尼龙线进行间断垂直褥式缝合关闭皮肤。
    5. 使用聚维酮碘溶液按照无菌技术对切口部位进行消毒。

3. 术后护理

  1. LVAD 植入术后，将猪转移至重症监护室进行监测。每日记录出入量，包括血压和 LVAD 参数。通过静脉输注丙泊酚对猪进行麻醉，并在术后初期调节血管活性药物（多巴胺、异丙肾上腺素、去甲肾上腺素）的使用，以维持血流动力学稳定。
    注意：提供保温支持并持续监测体温直至完全恢复。给予静脉输液（平衡晶体液，例如初始2–5 mL/kg/h，随后根据血流动力学、尿量和实验室检查结果调整剂量）。每日记录饮水和进食量，并在动物清醒后尽快恢复进食；若进食量减少，可根据机构标准操作程序考虑补充喂养。需明确镇静/麻醉（丙泊酚输注）仅在临床需要时用于早期血流动力学控制或呼吸机耐受，一旦病情稳定即应停用。
  2. 对于大型手术添加阿片类药物：布托啡诺 0.01–0.02 mg/kg 肌内注射，每 8–12 小时一次，持续 48–72 小时，同时按当前方案使用美洛昔康（0.4 mg/kg 皮下注射，每 24 小时一次，持续 0–72 小时；0.2 mg/kg 口服，每 24 小时一次，持续 72 小时至 7 天）。至少增加 2–3 次疼痛评估×/天，采用行为/疼痛评分及补救镇痛标准（若评分超过阈值，由兽医追加阿片类药物）。
  3. 使用血管活性药物并调节适宜的左心室辅助装置流量（为正常心输出量的1/3至1/2），以维持猪的正常血流动力学。
    注意观察左心室辅助装置信号线，避免被猪踩踏或缠绕。
  4. 术后第1天、第3天、第7天、第2周及此后每周进行一次心脏超声检查。当心脏周围基本无液体时，拔除引流管。
  5. 术后抗凝方案：使用5 mL注射器从静脉导管抽取动脉血，用于活化凝血时间（ACT）和国际标准化比值（INR）监测。术前3天内，持续静脉输注肝素，维持ACT在150–200秒左右。自第3天起，开始给予猪口服华法林（0.15–0.2 mg/kg/d），维持INR在1.5至2.0之间。当INR达到1.5时，停用肝素。
  6. 术后抗感染治疗方案：给予头孢唑林（25 mg/kg，每8小时一次）治疗5–7天。每日检查切口及导管部位有无感染迹象；按照标准操作程序更换敷料；明确兽医干预指征（发热、渗出、肿胀、红斑）。
  7. 术后LVAD控制与数据采集：由于使用的是有线LVAD控制系统，信号线从猪的背部引出并连接至监测计算机。因此，术后需确保信号线从笼子上方引出，并留有足够余量，以利于长期控制和数据采集。此举旨在防止因猪的活动导致信号线脱落。

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结果

为了建立儿童左心室辅助装置（LVAD）植入模型，我们对一头3月龄、体重33.8 kg的雄性长白猪应用了本方案，术后4周体重增加了2.6 kg。长白猪通常在约一岁时达到性成熟，因此该实验动物属于幼龄猪。如图1A所示，我们按照本方案完成了LVAD植入手术。术前12导联心电图（ECG）结果显示，手术前心电图正常（图1B）。术前超声心动图检查显示左右心室功能均正常，左心室射血分数（LVEF）和左心室缩短分数（LVFS）分别为62%和26%（图1C、图2A、B）。术前血常规及生化检查结果表明，该猪各项指标均正常（图2C、D 和 补充图2C,F）。

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讨论

年轻的长白猪左心室辅助装置（LVAD）植入模型为研究LVAD引起心室逆向重构的详细机制提供了一种方法。该模型可用于揭示LVAD植入后在不同时间点心肌的连续动态变化。此外，可通过心肌活检对同一动物的心肌变化进行追踪，从而减少实验动物的使用数量。更重要的是，3月龄的年轻长白猪与儿童年龄相当，是儿童LVAD植入研究的理想模型。该模型填补了儿科LVAD研究中的关键空白。此模型至少可用于三个方面：（1）LVAD引起心室逆向重构的机制研究；（2）儿童心脏对LVAD植入的反应性与安全性评估；（3）针对LVAD相关治疗的新器械或药物评价。

在本方案中，有几个关键步骤。首先，由于这是针对儿童左心室辅助装置（LVAD）植入的研究，猪的品系和年龄至关重要。3个月大的幼龄长白猪体型相对较小，心脏重量约为100 g，与儿童的心脏大小相似。其次，需要选择尺寸和输出量合适的LVAD。由于儿童或幼猪的胸腔较小，选择合适的LVAD可避免对心脏造成压迫。此外，儿童的心输出量低于成人10，因此LVAD的最低输出量需比常规LVAD低1.0 L/min。另外，在植入LVAD之...

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披露

作者声明无任何利益冲突。

致谢

本工作由国家自然科学基金优秀青年科学基金项目（82125004；宋江平）、自主研发儿童专用植入式心室辅助装置的大动物实验评价及儿童终末期心力衰竭临床诊疗突破与诊疗规范建立（2023YFC2706204）；国家重点研发计划前沿生物技术重点专项 &中国科学技术部重点研发计划（2023YFC3404300；项目负责人：Jiangping Song）；中国科学技术部支持项目，由国家心血管病中心、中国医学科学院阜外医院心血管疾病国家重点实验室资助（2024GZZD-03；项目负责人：Jiangping Song）。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10度主动脉阻断钳SinoviewCP40431-19主动脉阻断
10度主动脉阻断钳SinoviewCP40431-19主动脉阻断
30度弓部分支血管钳SinoviewCP40432-19
45度主动脉阻断钳SinoviewCP40044-18
ACT-K 检测盒Abbott03P74-25ACT 监测
ACT-LR 检测管Medtronic809ACT 监测
Affinity Fusion 氧合系统MedtronicBB841体外循环
麻醉机MindrayA9麻醉及其他
心尖环（缝合袖套）Cor-Heart-植入组件。缝合至心脏心尖部位，为泵与心脏的连接提供支撑和密封。
动脉插管Medtronic18Fr体外循环
阿曲库铵恒瑞医药-麻醉及其他
无创平头镊SureMedGF04021-25
无创平头镊SureMedGF04021-25
平衡手柄笔式显微外科镊SinoviewFC12010-21
幼年长白猪中国科学院动物研究所北方大型动物研究设施-实验动物
血气分析仪EdiagnosisPT1000麻醉及其他
导线牵引器Cor-Heart-手术附件。术中用于将经皮导线从体内引出。
体外循环管路MedtronicB-HL-159体外循环
中心静脉导管百和医疗-麻醉及其他
充电底座Cor-Heart-外部组件。用于为电池充电。
CoaguChek XS PT 检测条Roche4015630936854 (EAN)INR 监测
通信适配器Cor-Heart-可选外部组件，可重复使用。实现监护仪与控制器之间的通信连接。
连接器保护套Cor-Heart-外部组件。用于增强经皮导线与控制器导线之间的连接，防止连接器旋转或松动。
连接器密封套管Cor-Heart-手术附件。术中用于将导线牵引器与经皮导线连接，并确保密封完整性。
控制器Cor-Heart-外部组件。连接并监测泵的运行，对异常情况提供报警功能。
打孔刀Cor-Heart-手术附件。术中用于在心脏心尖部位创建开口。
弯头镊SureMedGC01002-16
弯头镊SureMedGC01002-12
弯头镊SureMedGC01002-16
一次性血液微栓过滤器三鑫医疗FAF-2体外循环
一次性储血器滤器三鑫医疗FCR300K体外循环
一次性停跳液灌注系统MedtronicXP41体外循环
多巴胺九安制药-麻醉及其他
气管插管亚新医药YS-0000麻醉及其他
肾上腺素金耀药业-麻醉及其他
精细解剖镊SureMedGC01090-20
精细解剖镊SureMedGC01090-20
人工心肺机LivaNovaS5体外循环
肝素华北制药-麻醉及其他
冰桶SureMedGQ13018-00D
冰桶SureMedGQ13018-00D
输液泵中生医疗SN-C8麻醉及其他
INRatio PT/INR 检测条HemoSenseREF:0100071 INR 监测
静脉留置针KDL16G-26G麻醉及其他
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大号盆SureMedGQ13033-00D
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监护仪/计算机Cor-Heart-可选外部组件，可重复使用。连接控制器和心室辅助泵，用于系统设置和运行。
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去甲肾上腺素禾丰药业-麻醉及其他
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PCL ACT 检测卡Instrumentation Laboratory257
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电源适配器Cor-Heart-外部组件。为左心室辅助系统提供市电连接。
硫酸鱼精蛋白优凯制药-
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直角镊SureMedGC01089-18
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心室辅助泵Cor-Heart-一种磁悬浮离心泵。植入组件。植入心脏内，辅助血液循环。

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