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数据检索与预处理
本研究使用公开可得的转录组和遗传数据进行;没有直接涉及人类或动物受试者。与HER2+乳腺癌治疗耐药性的转录组数据集检索自NCBI基因表达综合数据库(GEO)(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)11。选中了两个RNA-seq数据集,GSE231524和GSE231525,因其特别关注HER3驱动的耐药性和HER2+乳腺癌细胞系(BT474和MDA-MB-453)中的DUSP6抑制作用。这些数据集包括由拉帕替尼(1 μM)暴露和DUSP6敲低产生的亲代表型、耐药性和耐药表型。原始计数矩阵及对应的元数据文件通过 RStudio(v4.3.2)12 中的 GEOquery(v2.70.0)和 Biobase(v2.62.0)包访问。元数据经过筛选,定义了两个主要对比:GSE231524比较对照组(BT474亲本,第0天)与耐药和耐药样本(第9天至第9个月),GSE231525组比较对照组(Scrambled siRNA)与DUSP6敲低样本(DUSP6-KD)。质量控制和数据归一化采用了DESeq2(v1.42.0)框架,该框架采用方差稳定变换(VST)以降低异差性并确保样本间的可比性。在差别表达分析前,使用ggplot2(v3.5.0)和pheatmap(v1.0.12)视觉评估数据分布和聚类模式,以确认数据一致性并识别潜在异常值,随后进行差异表达分析13,14。
本研究明确区分了来自细胞系转录组数据集的发现与患者来源临床数据集所得的结果。细胞系数据主要用于探索性分析,包括鉴定差异表达基因以及在受控实验模型中生成初步机制见解。相比之下,患者来源数据集用于基因表达模式的外部验证和临床相关性评估,包括预后评估。因此,细胞系模型和临床队列的结果会被分开解释,以避免过度泛化,并确保所有发现都具有适当的转化背景。
差异基因表达分析
进行了差异表达分析,以识别在对照与治疗条件下显著调节的基因。归一化计数使用集成于DESeq2的调整回归模型(ARM)处理,以准确估计log₂折叠变化和统计显著性。设计公式定义为~条件,代表对照组与处理组。调整后p值(FDR)<0.05且绝对log₂折叠变化≥1的基因被认为表达差异显著。利用apeglm方法进行了Log₂折叠变化缩减,以增强效应量估计的稳健性。分析结果通过EnhancedVolcano (v1.22.0)15和ggplot216可视化,生成了火山图和MA图,显示表达强度与统计置信度之间的关系。还在DESeq2中评估了分散估计,以确保准确的方差建模和生物复制间的一致归一化。
线粒体氧化应激相关差异表达基因(MOS-DEGs)的检索与鉴定
为了研究能量代谢、氧化应激与耐药性之间的联系,我们从多个数据库中汇编了一份完整的线粒体及氧化应激相关基因列表,包括人类MitoCarta3.018 (https://personal.broadinstitute.org/scalvo/MitoCarta3.0/human.mitocarta3.0.html)、Gene Ontology(GO:0006979,氧化应激反应)(http://geneontology.org/)、京都基因与基因组百科全书(KEGG)氧化磷酸化途径(https://www.genome.jp/kegg/ 年),以及人类氧化应激基因数据库(HOSGDB)(http://hosgdb.com/ 年)。所有检索的基因均通过org标准化为HGNC批准的基因符号。Hs.eg.db(v3.18.0)和AnnotationDbi(v1.64.0),同时删除重复条目、伪基因和非编码RNA,以确保注释准确性。由此筛选出的线粒体氧化应激基因面板(MOS基因)随后被用作与两个转录组数据集中识别出的差异表达基因整合的参考集。
在R中,通过dplyr(v1.1.3)19 和基础R的intersect()函数完成了从GSE231524和GSE231525获得的DEG的交集。这种整合方法使得MOS-DEGs的识别成为可能,这些基因代表与线粒体代谢、氧化还原调控和氧化应激适应功能相关。数据集间的重叠通过R语言中的VennDiagram(v1.7.3)包可视化,展示了实验模型中共享和独特的基因。细化后的MOS-DEGs列表被用于后续分析,提供了关于HER2靶向治疗耐药背后转录和代谢重编程机制的机制洞见。
MOS-DEGs的表达分析与可视化
通过RStudio中的ComplexHeatmap (v2.18.0)21 和pheatmap (v1.0.12)软件包对已识别的MOS-DEGs进行表达分析,以可视化父本、耐药和耐药条件下的全局表达模式。通过z分数尺度法对归一化计数数据进行转换,以标准化样本间的基因表达矩阵。聚类采用欧几里得距离和完全连锁方法进行,以检测共表达模式并区分条件特异性的转录谱。使用ggplot2生成热图和聚类图,以确保各条件的清晰视觉区分。这种可视化方法有助于识别与线粒体活性、氧化应激调节以及耐药状态下代谢重编程相关的基因群。
功能富集与通路注释
为探究已识别MOS-DEGs的生物学意义和调控机制,使用R Studio(版本4.3.1)进行了基因本体论(GO)和京都基因与基因组百科全书(KEGG)富集分析。分析在整洁宇宙环境中进行,使用多种Bioconductor软件包实现可重复计算和可视化。基因注释和标识符映射均使用该组织完成。Hs.eg.db基于 智人 参考基因组(GRCh38)的数据库(https://bioconductor.org/packages/org.Hs.eg.db/)。GO富集分析使用clusterProfiler软件包(版本4.8.1;https://bioconductor.org/packages/clusterProfiler/)进行,该软件将基因分为三大本体——生物过程(BP)、细胞成分(CC)和分子功能(MF)。enrichGO22 函数参数设为 p值 <0.05并 调整p值。 (FDR)<0.05,采用Benjamini–Hochberg校正法。可视化图,包括条形图、点图和弦图,均使用enrichplot(https://bioconductor.org/packages/enrichplot/)、ggplot213 (https://cran.r-project.org/web/packages/ggplot2/)和GOplot(https://cran.r-project.org/web/packages/GOplot/)生成。这些工具为富集 GO 术语及其基因关联提供了结构化的视图。
KEGG通路富集通过clusterProfiler包中的enrichKEGG()函数完成,参考了人类KEGG数据库(https://www.genome.jp/kegg/)。KEGGREST软件包(https://bioconductor.org/packages/KEGGREST/)用于通路数据检索和注释。调整后 p值 (q值)<0.05的通路被视为显著。可视化和路径映射使用路径视图(https://bioconductor.org/packages/pathview/)、ggplot2和enrichplot进行,网络表示则使用igraph和ggraph23。所有浓集分析和可视化均在R Studio(v4.3.1)中实现,采用可重复代码和标准化的生物导体工作流程,确保可靠识别与MOS-DEG相关的富集功能类别和生物通路。
基于ROC的乳腺癌预测性生物标志物验证
为验证MOS-DEGs的临床预测能力,使用ROCplotter在线工具(https://www.rocplot.org/)进行了受试者工作特征(ROC)曲线分析24。ROCplotter是一个集成的基于网络平台,结合了基因表达数据与来自3,104名乳腺癌患者的临床注释治疗反应数据集,包括接受化疗、激素治疗或抗HER2药物治疗的患者。
分析采用“病理性完全反应”作为结局变量,“任何化疗”作为治疗类别。根据平台内的临床注释,Affymetrix微阵列数据集中得出的基因表达值自动分为响应组和非响应组。
受试者工作特征(ROC)曲线(AUC)、曼-惠特尼U检验、折叠变化和卡方检验被应用于评估每个基因区分响应者与非响应者的能力。曲线下面积(AUC)被用作评估判别性能的主要指标。AUC值大于0.55且ROC p值<0.05被视为显著,代表转录组生物标志物典型的中等预测表现,并采用假发现率(FDR)修正以保持分析严谨性。
所有选定的MOS-DEG均使用对应的Affymetrix探针ID进行查询。在临床乳腺癌队列中评估了各基因的区分潜力,表达数据被分层为响应组和非响应组。ROC曲线、箱形图及相关统计输出由ROCplotter平台直接生成,并导出用于下游可视化和比较。该分析量化了参与线粒体氧化应激的氧化还原和代谢调控因子的预测价值。在临床样本中表现出一致预测显著性的基因被保留,纳入最终预测面板。
肿瘤、正常和转移组织中的差异表达分析(TNMplot分析)
使用TNMplot网络工具 v2 (https://tnmplot.com/analysis/)25,分析了正常、肿瘤和转移乳腺组织中主要MOS-DEGs的表达模式。同时分析了RNA-Seq(TCGA + GTEx + MET500)和基因芯片数据集,以确保跨平台验证。“多基因分析”模块被用于乳腺浸润性癌,作为26号组织的选择类型。表达值进行了log₂转化,并在肿瘤组与正常组(TvsN)、转移组与肿瘤组(MvsT)及转移组与正常组(MvsN)间进行比较。TNMplot 利用 Mann–Whitney U 检验自动计算了折叠变化(FC)和 p 值,以评估统计显著性。表达分布被可视化为直接从TNM图界面生成的箱形图和密度图,绿色、红色和灰色分别代表正常组织、肿瘤组织和转移组织。所有图表均以高分辨率导出,以便整合进结果部分。这一双平台分析使得与乳腺癌进展相关的关键线粒体氧化还原代谢调控因子的可靠识别和验证成为可能27。
使用Kaplan–Meier绘图仪的存活与预后分析
为评估MOS-DEGs在乳腺癌中的预后相关性,使用Kaplan–Meier在线绘图仪工具(https://kmplot.com/analysis/)28进行了生存分析。该数据库整合了来自多个GEO、EGA和TCGA数据集的4900多名乳腺癌患者的基因表达和生存数据。分析采用对应优先基因的单个Affymetrix探针ID:225609_at(GSR)、201761_at(MTHFD2)、201619_at(PRDX3/AOP1)和201128_s_at(ACLY)进行无复发生存(RFS)。患者根据中位表达阈值分为高表达组和低表达组,并采用Kaplan–Meier方法估算生存概率。使用对数秩检验评估生存曲线间的统计显著性,工具自动计算了带有95%置信区间(CI)的危险比(HR)。所有分析均采用RFS终点,未基于激素受体或HER2状态(ER、PR、HER2=全部)进行限制。删除了冗余样本,并验证了比例风险假设以确保统计稳健性。质量控制滤镜排除了偏置微阵列。多次测试未采用手动探针选择或p值校正,符合KM绘图仪的默认设置。统计显著性定义为p. < 0.05。存活图被可视化并下载为高分辨率,以便进一步解读,比较各候选MOS基因29,30的高低表达体结局。
本分析仅使用HER2+ 乳腺癌样本的数据集,用于鉴定差异表达基因(DEGs)和枢纽基因。随后,进行了不限于HER2状态(ER、PR、HER2=全部)的生存分析,以评估已识别基因的更广泛预后相关性和可推广性。该方法被用作次级验证步骤,而非重新定义研究重点。因此,对已识别中枢基因的预后影响需谨慎解读,主要结论仍限于HER2+ 乳腺癌。
MTHFD2-201(ENST00000394053.7)和PRDX3-201(ENST00000298510.4)的典范转录本序列检索自Ensembl基因组浏览器(https://www.ensembl.org)31,32。变异注释和分类使用Ensembl变异效应预测器(VEP)(https://www.ensembl.org/vep),该工具为每个已识别变异提供了详细的基因组背景、密码子变化和氨基酸替换。仅选择错义变体(非同义SNP)进行下游分析。
致病性预测与变异优先排序
每个nsSNP的功能后果通过多种计算预测工具的组合进行了评估。应用SIFT(https://sift.bii.a-star.edu.sg)评估氨基酸保护,将得分≤0.05的变异归类为有害33。PolyPhen-2(http://genetics.bwh.harvard.edu/pph2)估算了替代的结构和进化影响,得分≥0.85表示可能的损害34。CADD(https://cadd.gs.washington.edu)提供了整合多个注释的综合有害性评分,值≥20表示高致病潜能35。MetaLR36、Mutation Assessor和REVEL的辅助指标通过VEP接口整合,以增强预测信度37。符合MetaLR ≥0.70、突变评估者≥3.5和REVEL≥0.75阈值的变异被优先考虑为可能致病。
结构与机制影响预测
为评估氨基酸替换如何影响结构完整性和生化功能,采用MutPred2(http://mutpred.mutdb.org)38 和DynaMut(http://biosig.unimelb.edu.au/dynamut)39进一步分析了每个排名前列的nsSNP。MutPred2估算功能破坏的概率,包括催化活性改变、金属结合残基的增减、溶剂可及性变化及变构调节,评分≥0.80被归类为高度致病性。DynaMut计算了野生型与突变蛋白之间的吉布斯自由能变化(ΔΔG),评估了稳定性变化的方向和大小,并生成了原子位移和氢键重排的可视化。
二维和三维结构建模与溶剂可及性剖面
通过实验分辨的MTHFD2和PRDX3晶体结构来自蛋白质数据库(PDB),并使用PyMOL V:3.1 (https://pymol.org)40 处理,以可视化有害残基的空间分布。通过引入相应的氨基酸替换,随后进行结构精细和能量最小化,创建了突变体模型。三维比较分析显示了次级元素的变化、原子间接触的变化以及nsSNPs与催化和辅因子结合域的空间接近,揭示了氧化还原和代谢功能的潜在干扰。
二级结构和溶剂暴露分析使用PSIPRED V: 3.2 (http://bioinf.cs.ucl.ac.uk/psipred)41,42和NetSurfP 3.0 (https://services.healthtech.dtu.dk/service.php?NetSurfP-2.0)43进行。这些工具预测了α螺旋、β股、线圈和无序区域,并预测了相对溶剂可及性(RSA)得分。对具有中高RSA值和结构顺序的残基进行了绘制,以识别暴露于溶剂和功能关键的位置。受影响位点通过二维拓扑图可视化,以确定有害突变是否发生在刚性催化核心或柔性环区,从而预测其对蛋白质折叠动态和酶效率的可能影响。
数据库交叉验证、函数集成与稳定性验证
每个优先级nsSNP均与包括dbSNP、1000 Genomes、ExAC和gnomAD在内的群体级基因组数据库交叉比对,以确认变异频率、全球等位基因分布及先前报告的临床关联。进化保守、结构建模和基于机器学习的功能预测的整合,使得识别出MTHFD2和PRDX3中高置信度的有害变异。这些高影响突变随后被定位到功能域,阐明其在线粒体氧化应激失衡、代谢信号改变及乳腺癌治疗耐药性中的潜在作用。为进一步确认每次有害置换的热力学影响,使用iMutant 3.0 (https://folding.biofold.org/i-mutant/i-mutant3.0.html)44 ,利用序列和结构数据预测突变对蛋白质稳定性的影响。分析计算了ΔΔG值(kcal/mol),表示野生型与突变蛋白之间自由能的变化。ΔΔG值为负的变异被归类为不稳定突变,表明蛋白质稳定性降低和展开概率增加。将iMutant预测与DynaMut和MutPred2结果整合,为识别可能影响氧化还原功能、催化完整性和整体蛋白质构象稳定性的结构关键残基提供了交叉验证。
综合功能性解释与治疗相关性
通过与dbSNP、gnomAD和ExAC群体数据库交叉比对,验证所有识别出的有害nsSNP,以验证次要等位基因频率及先前报告的癌症表型关联。进化保守、结构建模和稳定性数据的整合解读表明,高影响突变rs1471336772(MTHFD2)和rs747786383(PRDX3)对蛋白质构象和催化效率的有害影响最为显著。计算结果综合表明,MTHFD2的突变使NADPH依赖的氧化还原代谢不稳定,而PRDX3的突变则削弱过氧化物酶介导的氧化应激防御,导致线粒体功能障碍和肿瘤侵袭性。基于nsSNP的结构和功能分析为未来治疗筛查和突变验证提供了计算基础,强调MTHFD2和PRDX3作为氧化还原靶向乳腺癌治疗的精准生物标志物。为提高清晰度并全面概述分析策略, 图2展示了总结研究主要步骤的工作流程示意。该工作流程集成了差异基因表达分析、线粒体基因过滤、蛋白质-蛋白质相互作用网络构建、利用ROC分析进行临床验证以及基于nsSNP的结构表征。该分阶段框架强调了从转录组数据处理到生物标志物鉴定和功能解释的逻辑进程。

图2。HER2+ 乳腺癌中线粒体氧化应激相关生物标志物的识别和验证整合多步工作流程。本示 意图总结了本研究所采用的分析流程。首先,对RNA测序数据集(GSE231524和GSE231525)进行了差异基因表达(DEG)分析,以识别显著改变的基因。这些DEGs与经过筛选的线粒体氧化应激相关基因交叉,获得MOS-DEGs。随后,利用STRING和Cytoscape进行了蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络分析,以识别枢纽基因和功能模块。随后,利用ROCplotter平台应用受试者工作特征(ROC)曲线分析,评估临床队列中选定基因的预测表现。最后,进行了非同义SNP(nsSNP)分析和结构建模,以评估优先基因(MTHFD2和PRDX3)关键变异的潜在功能和结构影响。这一整合工作流程将转录组、网络、临床和结构分析相结合,以识别潜在的生物标志物和治疗靶点。 请点击此处查看该图的放大版本。