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方法文章

通过在上丘表面施加氟金逆行标记视网膜神经节细胞

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DOI:

10.3791/819

2008年6月17日

本文内容

摘要

本视频介绍了通过将荧光金(fluoro-gold, FG)施加于上丘(superior colliculus, SC)表面,逆行标记视网膜神经节细胞(RGC)的方法。该技术包括钻开颅骨、吸除皮层,并在整个SC背侧表面覆盖明胶海绵。

摘要

视网膜神经节细胞(RGC)计数对于评估视网膜变性(尤其是青光眼)至关重要。可靠的RGC标记是评价任何治疗效果的基础。已知在大鼠中约98%的RGC投射至对侧上丘(SC)(Forrester and Peters, 1967)。将氟金(fluoro-gold, FG)应用于SC表面可标记几乎全部RGC,从而可针对青光眼中最易受损的视网膜神经元进行研究。FG被视网膜神经节细胞的轴突末梢摄取,并通过逆行运输双侧转移至其在视网膜中的胞体。与将FG置于横断视神经残端2天以逆行标记RGC的方法相比,该方法对RGC存活的干扰最小。与能够染色RGC、无长突细胞以及视网膜神经节细胞层中血管内皮细胞的焦油紫(cresyl violet)染色相比,该标记方法对RGC更具特异性。本视频介绍了通过将FG应用于SC表面实现RGC逆行标记的方法。手术步骤包括颅骨钻孔、吸除皮层以暴露SC,以及将明胶海绵覆盖于SC整个背侧表面。视频还提供了避免严重颅内出血和误吸SC的实用技巧。 关键词:视网膜神经节细胞,RGC计数,逆行标记,氟金,上丘,青光眼,大鼠,视网膜变性,明胶海绵,颅骨钻孔

方案

  1. 通过腹腔注射氯胺酮(80 mg/kg)和赛拉嗪(8 mg/kg)(体积比为2:1)对大鼠进行麻醉。手术期间涂抹无菌眼用润滑软膏,以防止角膜干燥。
  2. 剃除头部毛发(从眼睛至耳部水平),使用头夹将头部固定于头架上,并将门齿固定于门齿杆中。
  3. 用10%聚维酮碘溶液对术区进行消毒,随后使用70%酒精脱碘。
  4. 切开皮肤和肌肉组织,暴露颅骨及颅缝(矢状缝、冠状缝和横缝)(图1)。在切口区域滴加局部镇痛药布比卡因作为浸润处理(剂量不超过2 mg/kg)。
  5. 在矢状缝两侧各钻一个颅骨孔(直径2×2 mm,距离矢状缝和横缝均为0.5 mm)。操作时避免损伤脑膜及位于颅缝下方的静脉窦。

    颅骨缝示意图;标注了前囟、后囟、冠状缝、矢状缝和横缝。
    图1. 活体大鼠颅骨标志。

  6. 使用弹簧剪小心剪开脑膜,避免撕裂。
  7. 使用真空泵小心吸除覆盖在上丘背侧表面的脑组织,在此过程中可观察到三个关键点:
    1. 脑组织颜色由灰色变为白色,再变回灰色
    2. 当无色脑脊液流出时,停止吸引
    3. 小心地在水平方向上逐步扩大最低吸力范围,以暴露被硬脑膜覆盖的淡黄色上丘
  8. 继续吸除上丘上方的脑组织,直至在显微镜下可直接观察到上丘的四个边缘。切除的脑皮层范围应尽可能小,以避免产生不良副作用(如运动功能障碍)。操作时注意不要触碰静脉窦。
  9. 使用无菌细棉条吸干骨孔内的液体,使上丘表面尽可能干燥。然后将预先用6% Fluoro-Gold浸泡过的明胶海绵薄层覆盖于上丘表面(Fluoro-Gold可被视网膜神经节细胞的轴突末梢摄取,并通过逆行运输双侧传递至其在视网膜中的胞体)。
  10. 用明胶海绵填塞骨孔,并使用缝合夹闭合皮肤切口。
  11. 将动物置于白炽灯下恢复体温并保持温暖。在上丘标记后5天内,通过饮水口服给予镇痛药布伦诺啡(100 mcg/kg)。

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讨论

  1. 为何使用这种手术方法进行视网膜神经节细胞计数?

    在大鼠中,约98%的视网膜神经节细胞(RGC)已知投射至对侧上丘(SC)。将氟金(fluoro-gold)施加于SC表面,几乎可标记所有RGC,从而使我们能够专注于青光眼中最易受损的视网膜神经元。与将氟金置于横断视神经残端进行为期两天的逆行标记相比,该方法对RGC存活的干扰最小。与焦油紫(cresyl violet)染色相比,后者会染色视网膜神经节细胞层中的无长突细胞、RGC以及血管内皮细胞,而本方法对RGC具有更高的特异性。

  2. 如何避免过度出血?

    首先,通过检查肌肉张力和角膜反射,确保大鼠已充分麻醉。麻醉不足将导致大量出血。其次,避免可能损伤静脉窦的操作,例如钻孔位置过于靠近缝合线,或撕裂脑膜进入静脉窦壁。第三,需特别注意保持覆盖于SC表面的硬脑膜完整,尤其是在鼻侧区域。

  3. RGC被标记需要多长时间?

    在SC标记后四天,RGC即可被标记。我通常等待七天以获得更佳的标记效果。

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致谢

作者感谢美国健康助手基金会国家青光眼项目提供的支持。

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参考文献

  1. Ahmed, A. K. M. F., Dong, K., Sugioka, K., Yamadori, T. Retrograde double labeling of retinal ganglion cells in the newborn and adult albino rat. Neurosci. Protocols. 1, 1-11 (1996).
  2. Chan, H. C., Chang, R. C. C., Ip, A. K. C., Chiu, K., Yuen, W. H., Zee, S. Y., So, K. F. Neuroprotective effects of Lycium barbarum Lynn on protecting retinal ganglion cells in an ocular hypertension model of glaucoma. Experimental Neurology. 203, 269-273 (2007).
  3. Forrester, J., Peters, A. Nerve fibers in the optic nerve of rat. Nature. 214, 245-247 (1967).
  4. Ji, J. Z., Elyaman, W., Yip, H. K., Lee, V. W. H., Yick, L. W., Hugon, J., So, K. F. CNTF promotes survival of retinal ganglion cells after induction of ocular hypertension in rats: the possible involvement of STAT3 pathway. European Journal of Neuroscience. 19, 265-272 (2004).
  5. Li, R. S., Chen, B. Y., Tay, D. K., Chan, H. H. L., Pu, M. L., So, K. F. Melanopsin-Expressing Retinal Ganglion Cells Are More Injury-Resistant in a Chronic Ocular Hypertension Model. Investigative. Ophthalmology & Visual Science. 47, 2951-2958 (2006).

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荧光金标记颅骨钻孔皮层吸除明胶海绵应用荧光染料应用视网膜平铺紫外显微镜