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方法文章

新生儿缺血性缺氧性脑病的围产期缺血模型

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DOI:

10.3791/955

2008年11月19日

本文内容

摘要

新生大鼠缺氧缺血性脑损伤模型是研究人类新生儿缺氧缺血性脑病(HIE)的一种成熟模型。本文描述了新生大鼠幼崽中HIE模型的建立方法。

摘要

缺氧缺血性脑病(HIE)是围产期窒息所致的后果。25%的HIE新生儿会发展为严重的永久性神经心理后遗症,包括智力障碍、脑瘫和癫痫。HIE的结局极为严重且不可逆,因此迫切需要识别并开发有效的治疗策略,以减轻HIE新生儿的脑损伤。为此,研究人员建立了新生大鼠的缺氧缺血性脑损伤模型,以模拟人类这一病理状态。该HIE模型最早由Vannucci等人1验证,并已被广泛用于研究围产期缺氧-缺血所致脑损伤的机制2,以及评估潜在的治疗干预手段3,4。HIE模型分为两个步骤:首先结扎左侧颈总动脉,随后将动物暴露于低氧环境中。由于 Willis 环提供的侧支循环,结扎侧半球的脑血流量(CBF)在常氧状态下不会显著下降;但在低氧条件下,同侧半球的CBF显著减少,从而导致单侧缺血性脑损伤。使用2,3,5-三苯基氯化四氮唑(TTC)染色以标记和识别缺血脑组织,最初是为成年啮齿类动物脑缺血模型开发的5,现常用于评估缺血事件后72小时内早期脑梗死范围6。在本视频中,我们演示了新生大鼠脑缺氧缺血性损伤模型的建立,以及通过TTC染色评估脑梗死面积的方法。

方案

本方案已获得斯坦福大学机构动物护理和使用委员会的批准,并遵守美国国立卫生研究院关于实验动物使用指南。

新生大鼠缺氧缺血性脑病模型

  1. 出生后第7天(PND 7)的Sprague-Dawley大鼠幼崽(Charles River Laboratories, Inc., Wilmington, MA)使用异氟烷(Aerrane, Baxter, Deerfield, IL;诱导浓度3-4%,维持浓度1-2%)进行完全麻醉。
  2. 在颈部做一小切口(Extra Thin Iris Scissors #14088-10, Fine Science Tools Inc, Foster City, CA),以暴露左侧颈总动脉(CCA)。
  3. 使用5-0丝线(5-0 silk, Ethicon, Somer, NJ)结扎颈总动脉。
  4. 用氰基丙烯酸酯粘合剂(Elmers Products Inc, Columbus, OH)闭合切口,覆盖胶带后停止麻醉。将幼崽放回母鼠身边,恢复1-2小时。
  5. 随后将幼崽置于一个含有8%氧气和92%氮气的低氧舱中,在37°C条件下持续100分钟。8%氧气/92%氮气混合气体(Airgas, Sacramento, CA)通过导管流入配备塑料盖的小鼠笼中。该盖子与笼子紧密贴合,上有两个直径为2 cm的孔,其中一个用于连接8%氧气气源管,另一个用于排出气体。将低氧舱置于水浴中,使用前预热,并确保内部温度计显示为37°C后开始低氧处理。
  6. 低氧处理100分钟后,将幼崽再次放回母鼠身边进行恢复。
  7. 低氧处理结束后24小时,通过深度异氟烷麻醉处死幼崽。用冷生理盐水灌注脑组织,随后用冷的含1% TTC的磷酸盐缓冲液(pH 7.4)(Sigma Chemical Co, St Louis, MO)灌注。TTC需避光保存。
  8. 取出脑组织并在冰上冷却1-2分钟,从视交叉和漏斗部水平开始(相当于成年小鼠脑的前囟1.8 ~ 2.0 mm水平),向后每隔3 mm切取4个冠状切片(水平1-4)。
  9. 将脑切片浸入TTC溶液中,在37°C孵育8分钟,随后在4%多聚甲醛/PBS中固定过夜。由于TTC对光敏感,此过程中应避免光照。
  10. 对TTC染色的切片进行扫描并数字化。使用Image J软件(NIH, Bethesda, MD)测量每个水平的梗死面积(未染色区域)、同侧半脑面积和对侧半脑面积。每片的梗死面积百分比计算公式为:(梗死面积 / 同侧半脑面积),即A1、A2、A3和A4。梗死体积百分比计算公式为:(A1 + A2 + A3 + A4) × 3 mm。皮层或纹状体损伤区域也可采用类似方法分别定量。

代表性结果

小鼠脑损伤进展示意图;脑组织损伤程度1至4级的研究。
图1. 经TTC染色的代表性HIE冠状面切片1-4级。

TTC 染色的冠状切面显示梗死区域(呈白色)。

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讨论

啮齿类动物出生后缺氧缺血性脑病(HIE)模型是一种成熟的模型,可重现新生儿围产期发生的脑缺氧情况。大量组织学和免疫细胞化学表征研究表明,出生7天的啮齿类动物大脑发育成熟度与人类胎儿第三孕期相当7。该啮齿类HIE模型在揭示围产期缺氧所致脑损伤机制方面具有重要价值2,一些干预措施(如低温疗法)已在该模型中得到验证3。该模型最初在大鼠中建立,近年来已成功应用于小鼠8

有一些特定的技术细节需要说明:

  1. 结扎颈总动脉(CCA)前,务必清除可能缠绕CCA的结缔组织和迷走神经。成功结扎后,结扎部位上方的血管颜色应变为白色。也可采用双重结扎法,即在两个结扎点之间剪断血管。将幼鼠放回母鼠身边之前,应用标签胶带覆盖结扎侧切口。
  2. 每只幼鼠的麻醉时间最长不应超过10分钟,以确保CCA结扎操作顺利并获得理想的实验结果。
  3. CCA结扎后的恢复期应为90–120分钟。若时间过短,幼鼠存活率降低;若时间过长,则梗死范围变异性增大,且倾向于形成较小的梗死灶。

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致谢

由美国心脏协会和美国出生缺陷基金会资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
斯普拉格-道利大鼠幼崽动物Charles River Laboratories
异氟烷手术Baxter Internationl Inc.
8% 氧气 / 92% 氮气手术Airgas
2,3,5-三苯基氯化四氮唑试剂Sigma-AldrichT8877
磷酸盐缓冲液 (PBS) pH 7.4试剂GIBCO,由 Life Technologies 生产
多聚甲醛试剂Sigma-AldrichP6148

参考文献

  1. Rice, J. E. 3rd, Vannucci, R. C., Brierley, J. B. The influence of immaturity on hypoxic-ischemic brain damage in the rat. Annals of neurology. 9 (2), 131-141 (1981).
  2. Vannucci, R. C., Vannucci, S. J. Perinatal Hypoxic-Ischemic Brain Damage: Evolution of an Animal Model. Dev Neurosci. 27 (2-4), 81-86 (2005).
  3. Bona, E., Hagberg, H., Loberg, E. M. Protective effects of moderate hypothermia after neonatal hypoxia-ischemia: short- and long-term outcome. Pediatric research. 43 (6), 738-738 (1998).
  4. Trescher, W. H., Ishiwa, S., Johnston, M. V. Effects of hypothermia and hyperthermia on attentional and spatial learning deficits following neonatal hypoxia-ischemic insult in rats. Behavioural brain research. 151 (1-2), 209-209 (2004).
  5. Mishima, K., Ikeda, T., Yoshikawa, T. Brief post-hypoxic-ischemic hypothermia markedly delays neonatal brain injury. Brain development. 19 (5), 326-326 (1997).
  6. Young, R. S., Olenginski, T. P., Yagel, S. K. The effect of graded hypothermia on hypoxic-ischemic brain damage: a neuropathologic study in the neonatal rat. Stroke; a journal of cerebral circulation. 14 (6), 929-929 (1983).
  7. Bederson, J. B., Pitts, L. H., Germano, S. M., et al. Evaluation of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride as a stain for detection and quantification of experimental cerebral infarction in rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 17 (6), 1304-1304 (1986).
  8. Cai, J., Kang, Z., Liu, W. W. Hydrogen therapy reduces apoptosis in neonatal hypoxia-ischemia rat model. Neuroscience letters. 441 (2), 167-167 (2008).
  9. Grow, J., Barks, J. D. Pathogenesis of hypoxic-ischemic cerebral injury in the term infant: current concepts. Clinics in perinatology. 29 (4), 585-585 (2002).
  10. Aden, U., Halldner, L., Lagercrantz , H., et al. Aggravated brain damage after hypoxic ischemia in immature adenosine A2A knockout mice. Stroke; a journal of cerebral circulation. 34 (3), 739-739 (2003).

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