Name: 双光子现场斑马鱼的胚胎干切断和时间推移共焦成像 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-02-16T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 21 s
Description: 学习双光子激光切断轴突技术，用于斑马鱼胚胎长期成像研究。该方法结合时间推移共聚焦成像，可实时观察轴突损伤与再生动态，为神经发育生物学提供重要研究工具。

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我们感谢 Mark Terasaki 在使用双光子显微镜制造局部组织损伤方面的初步建议，感谢 Kathy Joubin 在延时成像样品安装方面的建议，以及感谢 Sagasti 实验室和 Portera-Cailliau 实验室的讨论与帮助。最初的实验由 AS 作为马萨诸塞州伍兹霍尔海洋生物实验室的 Grass Foundation 研究员完成。Sagasti 实验室的工作得到了 Whitehall 基金会、Klingenstein 基金会以及生物科学领域 Burroughs Wellcome 基金职业奖的资助。

第1部分：斑马鱼胚胎的长期成像固定
<ol>
<li>准备1%低熔点琼脂糖溶液用于包埋。将琼脂糖溶于去离子水中，微波加热溶解后分装至小管中，并置于42摄氏度的加热块中保存。</li>
<li>选择用于成像的胚胎，并用镊子轻轻撕开绒毛膜以去除。可在受精后22-24小时（hpf）将胚胎置于含5% PTU的林格氏液中，以抑制色素形成。这有助于提高成像清晰度，对于执行感觉轴突的双光子轴突切断实验至关重要。若允许自然色素形成，则在双光子显微镜下自体荧光会遮蔽轴突。斑马鱼用林格氏液含有116 mM NaCl、2.9 mM KCl、1.8 mM CaCl2 和 5 mM HEPES，pH 7.2。</li>
<li>通过向PTU林格氏液中加入约0.02%三卡因对胚胎进行麻醉。在继续操作前，需确认动物对触碰无反应。</li>
<li>通过在玻璃或聚四氟乙烯环的一侧涂抹真空脂，将其固定在盖玻片上，以制备长期成像用培养室。</li>
<li>用玻璃移液管将一个胚胎转移至42摄氏度的琼脂糖溶液中，注意避免带入过多PTU林格氏液，然后将胚胎连同一滴琼脂糖转移至已准备好的盖玻片上。</li>
<li>在琼脂糖凝固过程中将胚胎调整至所需位置。请注意，操作完成后需将成像室翻转，使盖玻片成为顶部表面。</li>
<li>若使用电动载物台并需同时对多个位置成像，请对每个胚胎重复步骤1.4–1.6。</li>
<li>待琼脂糖完全凝固后，向环内加入含0.02%三卡因的PTU林格氏液。</li>
<li>在环的另一侧涂抹真空脂，然后用载玻片覆盖环。将密封的成像室翻转。这些成像室可用于正置或倒置显微镜的成像。</li>
</ol>
第二部分：使用定制的双光子显微镜结合Chameleon钛宝石激光器进行双光子轴突切割
<ol>
<li>准备成像。将固定好的胚胎置于显微镜载物台上的载玻片夹中。使用40倍（0.8 NA）水镜聚焦于其中一个胚胎。打开激光器。我们已能够使用以下参数稳定地观察并损伤表达GFP的神经元。为在不造成损伤的功率下观察轴突，请将激光波长设为910纳米（nm），功率设为30毫瓦（mW；所列功率值为样品处的实际功率）。启动成像软件。我们使用Karel Svoboda实验室开发的ScanImage软件2, 3。</li>
<li>按下聚焦按钮，使用双光子激光扫描胚胎，定位需要进行轴突切断的轴突，并采集该轴突的图像。标记Z轴扫描的起始与终止位置，获取图像，并对Z轴图像序列生成最大强度投影图。</li>
<li>将目标轴突分支区域放大至70倍，并停止扫描。将样品处的激光功率提高至损伤性功率180 mW，然后用激光进行一次单次扫描。我们通过将Z轴切片数设为1并点击“Grab”来实现此操作。该操作应足以切断轴突。有关针对您的显微镜系统和实验目标优化该步骤的方法，请参见讨论部分。</li>
<li>缩小倍数，将激光功率调回30 mW，并采集图像。</li>
</ol>
第3部分：在蔡司510共聚焦/双光子显微镜上进行双光子轴突切割
<ol>
<li>将固定好的胚胎放置于载物台上，使用25倍水镜或其他合适的物镜将其调至焦点。</li>
<li>在多通道模式下开启双光子激光（910 nm）和氩离子激光（488 nm），以便可在两者之间切换。尽管两种激光均用于检测GFP，但双光子发射以红色显示，而氩离子激光发射以绿色显示，以区分二者。</li>
<li>使用氩离子激光识别待损伤的轴突。在Z轴设置中标记第一和最后一个光学切片。采集共聚焦图像，并对Z轴图像序列生成最大投影图。</li>
<li>选择待损伤的轴突区域，并将该区域调至焦点。关闭氩离子激光，开启双光子激光。以约9%透射强度的双光子激光扫描样本，确保轴突仍处于焦点位置。</li>
<li>点击“停止”按钮，以启用裁剪工具。使用裁剪功能放大至目标区域。通常放大至约70倍（可在“模式”选项卡下查看放大倍数）。在“通道”选项卡下，将双光子激光的强度从约9%透射调整至15–20%透射。</li>
<li>为切断轴突，按下“快速XY”按钮约1秒钟，然后按停止按钮以避免过度损伤。若操作成功，轴突应呈现为弥散的碎片状。</li>
<li>为确认轴突已受损，切换回488 nm氩离子激光，采集另一幅共聚焦图像，并生成最大投影图。</li>
</ol>
第4部分：在Zeiss LSM 510上进行共聚焦延时成像
<ol>
<li>准备成像。如果使用加热载物台，请务必提前至少30分钟开启。将固定好的胚胎置于显微镜载物台支架上。使用所需的空气物镜对其中一个胚胎进行调焦。我们使用的是20倍、0.5数值孔径（NA）的物镜。打开蔡司LSM 510成像软件，开启相应的激光器并设置所需的配置。接下来将详细介绍使用蔡司LSM Multi Time软件进行长期成像的详细方案。这些方法可根据您的显微镜和成像软件进行相应调整。</li>
<li>在Multi Time窗口中定义第一个胚胎的位置和配置。打开扫描、载物台和Multi Time窗口。在扫描窗口中启用快速扫描模式。移动载物台至所需的XY位置。在扫描窗口中标记第一个和最后一个Z位置。按下“Stop”，然后按下“Mid”（同样在扫描窗口中）。等待中间Z层面扫描完成后，点击载物台窗口中的“Mark Position”（标记位置）。如果仅对一个胚胎成像，请在Multi Time窗口中点击“Single Location”（单个位置）选项卡。点击“Replace XYZ”，然后点击“Save Configuration”（保存配置）。当提示是否覆盖先前配置时，选择确认。随后进入步骤4.4。如果使用的是电动载物台，可设置多个位置以对多个胚胎进行成像。此时应在定义第一个位置的XYZ和配置前，选择“Multiple Locations”（多个位置）选项卡。同时，请确保“Multiple Locations”选项卡下方的下拉菜单处于“Location 1”（位置1），且配置部分的下拉菜单显示为“multi loc 1”，然后再点击“Save Configuration”。</li>
<li>在Multi Time窗口中定义其余胚胎的位置和配置。定位下一个胚胎，按下快速扫描，将载物台移至所需的XY位置，并在扫描窗口中标记第一个和最后一个Z位置。按下“Stop”，然后按下“Mid”。等待中间Z层面扫描完成后，点击载物台窗口中的“Mark Position”。点击“Replace XYZ”。检查“Multiple Locations”选项卡下方的下拉菜单是否为“Location 2”，且配置部分的下拉菜单是否显示为“multi loc 2”，然后点击“Save Configuration”。当提示是否覆盖先前配置时，选择确认。对剩余胚胎重复此过程。</li>
<li>在Multi Loc窗口中设置图像采集参数。在“List of Blocks”（区块列表）部分选择“GR-G-L”选项，然后输入所需的组重复次数，即共聚焦显微镜在每个位置采集图像的次数。在“Parameters”（参数）部分输入所需的等待间隔时间，即一次成像重复开始到下一次成像重复开始之间的时间间隔。在配置部分选择“ZStackXY”。在底部区域输入基础文件名。点击“Select Image DB”并选择您的mdb文件。点击“Options”（选项）按钮，选择用于保存临时文件的mdb文件夹。勾选“keep final image open”（保持最终图像打开）、“save final image”（保存最终图像）和“middle of the z stack”（Z堆栈中间层面）。选择等待间隔时间。点击“OK”关闭选项窗口。点击“start time”（开始时间）。在整个成像过程中保持Multi Time窗口处于打开状态。</li>
<li>分析数据。当延时成像完成后，Multi Time软件会将所有临时文件汇总为每个位置的汇总文件。如果需要在成像完成前停止拍摄，请务必点击“Finish”（完成）而非“Stop”（停止），以确保生成汇总文件。临时文件和汇总文件应自动保存至指定的mdb文件夹。在LSM软件菜单中，点击“3D View”（三维视图），然后选择“Projection”（投影）。在下拉菜单中选择您的汇总文件后，点击“Apply”（应用），这将为每个共聚焦图像生成Z堆栈的最大强度投影。在LSM软件菜单中点击“File”（文件），然后选择“Export”（导出），将最大强度投影保存为一系列tif文件。随后可使用ImageJ或QuickTime Pro将这些tif文件序列合成为视频。可使用图像分析软件（例如MicroBrightfield公司的NeuroLucida）对LSM图像中的轴突进行三维追踪，以获得有关轴突形态的详细定量信息。</li>
</ol>
第5部分：代表性结果
成功的实验将准确呈现轴突损伤后恢复的细胞动态过程。成像后的胚胎应保持健康，无可见的退化现象，且具有强有力的心跳。轴突切断应造成精确的损伤，仅切断指定的轴突分支。周围其他轴突不应受到损伤，细胞死亡应极少。我们发现在约50%的实验中，轴切位点正上方的一个表皮细胞会发生死亡。如果观察到更广泛的损伤，应按照讨论部分所述优化双光子实验方案。

<ol><li>Sagasti, A., Guido, M. R., Raible, D. W., Schier, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repulsive+interactions+shape+the+morphologies+and+functional+arrangement+of+zebrafish+peripheral+sensory+arbors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Repulsive interactions shape the morphologies and functional arrangement of zebrafish peripheral sensory arbors.</a> Curr Biol. 15, 804-814 (2005).</li>
<li>Pologruto, T. A., Sabatini, B. L., Svoboda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ScanImage%3A+flexible+software+for+operating+laser+scanning+microscopes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Eng+Online%22%5BJournal%5D)">ScanImage: flexible software for operating laser scanning microscopes.</a> Biomed Eng Online. 2 (13), (2003).</li>
<li>Svoboda, K., Yasuda, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+two-photon+excitation+microscopy+and+its+applications+to+neuroscience%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience.</a> Neuron. 50, 823-839 (2006).</li>
<li>Sacconi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+multiphoton+nanosurgery+on+cortical+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">In vivo multiphoton nanosurgery on cortical neurons.</a> J Biomed Opt. 12, 050502-050502 (2007).</li>
<li>Galbraith, J. A., Terasaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+damage+in+thick+specimens+by+multiphoton+excitation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">Controlled damage in thick specimens by multiphoton excitation.</a> Mol Biol Cell. 14, 1808-1817 (2003).</li>
<li>Yanik, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurosurgery%3A+functional+regeneration+after+laser+axotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neurosurgery: functional regeneration after laser axotomy.</a> Nature. 432, 822-822 (2004).</li>
<li>Quinto-Su, P. A., Venugopalan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+laser+cellular+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of laser cellular microsurgery.</a> Methods Cell Biol. 82, 113-151 (2007).</li>
</ol>

我们已采用所述方法精确切断外周感觉轴突，并直接观察活体斑马鱼胚胎中的轴突发芽再生过程。在斑马鱼中进行长期延时共聚焦成像可用于在体（in vivo）观察多种发育过程。文中描述的双光子轴突切断技术可根据多种不同的实验目标进行调整。我们曾采用相同的基本方法，通过将激光聚焦于细胞体而非外周轴突分支，实现了对整个三叉神经感觉神经元胞体的消融。任何可通过荧光识别的细胞类型，均可利用飞秒激光的聚焦能量实现精确损伤或消融。此前在其他多个生物系统中利用脉冲激光造成局部损伤或细胞消融的研究4,5,6，启发了我们进一步完善斑马鱼体系中的这些技术。在对照实验中，我们证实轴突切断具有极高的精确性：即使相邻轴突属于同一细胞的分支，我们也从未对其造成损伤；仅偶尔损伤紧邻轴突的上皮细胞。这种特异性可归因于双光子激光激发的强度随离焦距离呈平方反比衰减3,7。此外，由于激发态荧光分子释放的能量会参与光损伤过程，因此周围未标记的细胞更可能免受损伤。
损伤轴突所需的激光功率可能因激光设备的设置、组织深度以及实验目的的不同而有所变化。如果需要损伤胚胎中更深层的...

双光子轴突切除与活体斑马鱼胚胎的延时共聚焦成像

Two-photon axotomy and time-lapse confocal imaging in live zebrafish embryos

长期以来，斑马鱼被用于通过活体透明胚胎的延时成像来研究发育过程中的细胞和分子机制。本文描述了一种用于长期成像的斑马鱼胚胎装片方法，并演示了如何利用共聚焦显微镜自动采集延时图像。我们还介绍了一种利用安装在双光子显微镜上的飞秒激光聚焦能量，在斑马鱼中对周围感觉轴突的单个分支造成可控且精确损伤的方法。成功的双光子轴突切断实验所需参数必须针对每台显微镜进行优化。我们将分别在一台自行搭建的双光子显微镜和一台蔡司510共聚焦/双光子显微镜上演示双光子轴突切断操作，以提供两个示例。

利用在感觉神经元特异性启动子驱动下表达绿色荧光蛋白（GFP）的转基因品系，可对斑马鱼三叉感觉神经元进行可视化观察1。我们已对该斑马鱼三叉神经模型进行改进，以直接观察活体斑马鱼胚胎中感觉轴突的再生过程。实验中，将胚胎用三卡因麻醉后置于凝固的琼脂糖液滴中固定。固定后的胚胎被密封于充满苯硫脲（PTU）林格氏液的成像室中。我们发现，这些胚胎可在成像室内持续成像12至48小时。首先采集单张共聚焦图像，以确定轴切所需的靶位点。在双光子显微镜下以低功率（非损伤性）成像定位目标感觉轴突区域。在放大至预定轴切位点后，提高激光功率，对该特定区域进行单次扫描即可切断轴突。随后在共聚焦显微镜上设置多点时间序列成像，以直接观察轴突损伤后的恢复过程。

本文介绍了一种用于斑马鱼胚胎的固定方法，适用于长期成像、双光子成像和组织损伤技术，以及延时共聚焦成像。

斑马鱼长期以来被用于通过活体透明胚胎的延时成像来研究发育的细胞与分子机制。

使用活体双光子成像技术切断轴突时，将麻醉后的斑马鱼胚胎置于特制腔室中的阿罗斯（aros）液滴内，待其凝固。该腔室由聚四氟乙烯（TEFLON）制成，并配有盖玻片。在进行轴突切断前，将一块玻璃盖片置于腔室上方，然后将整个装置翻转至倒置状态。在切断前，先以40倍放大倍率拍摄你希望切断的轴突图像，再对目标区域以70倍放大倍率进行成像。关闭激光后，调高激光功率。短暂开启激光，在轴突的残余图像中，如果横切术成功，您将看到散在的轴突碎片。大家好，我是 Georgia O'Brien。大家好，我是 Sandra Rigo。我是 Shauma Martin。我们来自加利福尼亚大学洛杉矶分校分子细胞与发育生物学系的 Alvarez TI 实验室。今天我们将向您展示一种在活体斑马鱼胚胎中进行双光子外显微术和延时共聚焦成像的实验方法。在我们的实验室中，该方法被用于研究外周躯体感觉轴突的退化与再生过程。那么，让我们开始吧。首先，我们将配制1%的低熔点琼脂糖溶液用于包埋。将琼脂糖加入双蒸水中，通过微波炉加热使其溶解，随后分装至小管中，并置于42摄氏度的加热块中保存。受精后22至24小时，可将胚胎放入含5% PTU的林格液中，以抑制色素形成；该色素具有强自发荧光，会遮蔽双光子显微镜下的轴突信号。随后，我们挑选适合成像的胚胎，并用镊子轻轻将其卵膜撕除。选定胚胎后，通过向PTU林格液中加入约0.02%三卡因（trica）进行麻醉。在继续操作前，请确保动物对触碰无反应。通过在玻璃或聚四氟乙烯环的一侧涂抹真空脂，并将其固定在玻璃盖玻片上，以制备长期成像室。注意不要转移过多的PTU林格液。用玻璃移液管将一个胚胎转移至42度的农杆菌溶液中。然后将胚胎连同一滴农杆菌溶液转移到预先准备好的盖玻片上。转移后，在农杆菌溶液凝固过程中将胚胎调整至所需位置。请注意，成像完成后需将成像室翻转，使铜片位于顶部表面。如果使用的是电动载物台且可同时对多个位置进行成像，请针对每个胚胎重复上述步骤。让农杆菌玫瑰完全凝固。然后用0.02%三卡因PTU林格液填充环形区域。最后，在环的另一侧涂抹真空润滑脂，再用玻璃盖片覆盖。将密封室翻转过来。现在我们已准备好进行两次四吨重的全身成像。为成像做准备，将固定好的胚胎放置在显微镜下载玻片架上。使用40倍、数值孔径0.8的水镜聚焦于一个胚胎。然后打开激光器，将激光波长设置为910纳米，功率设置为30毫瓦。打开成像软件。我们使用的是由Boar实验室为珊瑚研究开发的Scan Image软件。在此功率下，可扫描视野以寻找待切断的候选轴突。找到目标轴突后，拍摄其图像。标记Z轴堆栈的第一和最后一个位置，采集图像并生成Z轴堆栈的最大投影。接着，将目标轴突的分支区域放大70倍进行详细观察。将功率调至180毫瓦，设置Z轴切片数为1。通过按下“grab”键，使用激光进行一次单次扫描。此操作通常足以切断轴突，但需根据您的显微镜设备和实验目标对该步骤进行优化。最后，缩小视野。将功率降低至 30 毫瓦，并对新切断的轴突进行成像。如果实验室中没有自建的双光子显微镜，也可使用 Zes five 10 共聚焦双光子显微镜来切断轴突。首先将固定好的胚胎放置在载物台上，并使用25倍水镜将其调至焦点。接着，在多通道模式下开启氩激光器中的双光子激发光源，以便能够在两者之间切换。尽管两种激光器均用于检测GFP，但双光子激发发射以红色显示，而氩激光器发射以绿色显示。为了区分两者，使用阿贡激光在Z设置下识别出一条轴突。标记出第一和最后一个光学切片。采集共聚焦图像，并创建Zack的最大投影图像。关闭氩离子激光器，并开启双光子激光扫描，透射率约为9%。为确保轴突仍处于焦点位置，点击停止按钮，以启用裁剪工具。使用裁剪功能放大目标区域。通常我们将放大倍数调整至约 70 倍。选择需要损伤的轴突区域，并将该区域调至清晰对焦。放大倍数可在模式选项卡下进行确认。接下来，在通道选项卡下，将双光子的强度从约 9% 透射率调整至 15% 到 30% 透射率。为启用新设置，请单击快速 XY 按钮，随后立即单击停止。为避免过度损伤，若操作成功，轴突应呈现为分散的碎片状。最后，为了确认轴突确实已受损，切换回 488 纳米氩离子激光器。再获取一张共聚焦图像，并对 Z 轴堆栈创建最大投影。现在我们已经向您展示了使用双光子激光显微镜切断轴突的两种方法，接下来将使用 Zeiss LSM 510 共聚焦显微镜进行再生过程的时间序列成像。为准备延时成像，请确保在设置延时录像前至少30分钟打开加热载物台。将固定好的胚胎置于载物台上的载玻片架中，并放置于显微镜下。使用所需的空气物镜对准其中一个胚胎进行调焦。我们使用数值孔径为20 × 0.5的物镜，打开蔡司LSM 510成像软件，然后开启相应的激光器并设置所需的配置。打开扫描载物台和多时间窗口。如果具备多时间点软件，在多时间窗口中定义第一个胚胎的位置和配置。在扫描窗口中激活快速扫描，然后将载物台移动到所需的 XY 位置。在扫描窗口中标记第一个和最后一个 Z 位置。按下停止按钮，然后在扫描窗口中按下中间按钮，等待中间 Z 层扫描完成。然后在载物台窗口中按“标记位置”。如果仅对一个胚胎成像，请在多时间点窗口中点击“单个位置”选项卡。点击替换 X、Y、Z，然后点击保存配置。当提示是否覆盖先前配置时，请选择同意。现在您可以在多点窗口中设置图像采集的参数。如果您使用的是电动载物台，可以设置多个位置以对多个胚胎进行成像。在此情况下，您应在定义第一个位置的 X、Y、Z 坐标和配置之前，先选择“多个位置”选项卡。同时，请确保“多个位置”选项卡下方的下拉菜单处于位置一，且配置部分的下拉菜单显示为 multi lo one。在点击保存配置之前，需在多时间窗口中定义其余胚胎的位置和配置。找到下一个胚胎压片的快速扫描位置，然后将载物台移动到所需的 XY 位置，并在扫描窗口中标记扫描的起始和终止 Z 位置。按下停止。随后在扫描窗口中选择中间 Z 层面，等待该中间层面的扫描完成。然后按标记位置，在载物台窗口中点击替换 X、Y、Z。确认“多位置”选项卡下方的下拉菜单处于位置二，且配置部分的下拉菜单显示为 multi lobe two。然后点击保存配置。确认。当提示是否覆盖先前配置时，对剩余胚胎重复此过程。在多通道窗口中设置图像采集参数。在模块区域列表中选择 GR GL 选项，然后输入所需的组重复次数。这是共聚焦显微镜在每个位置采集图像的次数。在参数部分输入所需的时间间隔，即从一次成像重复开始到下一次成像重复开始之间的时间长度。在配置部分选择 Zack XY。在底部区域输入您的基础文件名。单击选择图像数据库，然后选择您的数据库。单击选项按钮，然后选择您的 MDB 文件夹以同时保存临时文件。勾选“保留最终图像打开”选项。保存最终图像，位于 Zack 中间位置，并选择权重区间。单击“确定”关闭选项窗口，然后单击“开始时间”。在成像期间保持多时间点窗口处于打开状态。现在可以开始分析您的数据了。当延时成像结束后，多时间点软件会将所有临时文件汇总为每个位置的摘要文件。如果需要在视频完成前停止拍摄，请务必按下“完成”而非“停止”，以确保生成摘要文件。临时文件和汇总文件将自动保存到指定的 MDB 文件夹中。以下是一个在受精后 54 小时进行外切术的时间延时共聚焦显微电影的代表性示例。第一帧显示了外切术前轴突的背侧视图，黄色箭头指向下一个时间点的外切术位置。延时成像在去眼手术后一小时内开始，持续12小时。每20分钟采集一次共聚焦图像序列。该延时共聚焦成像在受精后78小时以相同参数记录。第一帧显示了轴突在双光子损毁前的侧面视图，黄色箭头指向双光子损毁位点。我们刚刚向您展示了如何利用双光子损毁技术和延时共聚焦成像来产生精确的组织损伤并观察活体斑马鱼胚胎。在进行该操作时，重要的是要优化双光子激光损毁所用的功率，以避免造成过度损伤。以上就是全部内容。感谢观看，祝您的实验顺利成功。

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生物学

双光子现场斑马鱼的胚胎干切断和时间推移共焦成像

在本视频中，我们演示了一种利用共聚焦显微镜在单细胞分辨率下对活体斑马鱼胚胎中发育中的脊椎动物大脑进行分析的方法。该方法包括对单细胞斑马鱼胚胎进行显微注射，随后对发育中的大脑进行固定和成像的技术流程。...

活体斑马鱼胚胎大脑的共聚焦显微镜成像

多光子显微镜能够调控低能量光子，实现深层光学穿透并降低光毒性。我们介绍了该技术在斑马鱼胚胎活细胞标记中的应用。该方案可轻松适用于多种光响应分子的光诱导实验。...

活体斑马鱼胚胎中的双光子诱导光激活

在本视频中，提供了多色共聚焦延时成像和靶向细胞消融的技术。延时成像用于监测多种目标细胞类型的行为...

多色延时成像转基因斑马鱼：可视化通过靶向神经元细胞消融激活的视网膜干细胞

本视频展示了一种方法，该方法结合了电穿孔技术和共聚焦显微镜技术，用于对发育中的斑马鱼前脑中的单个神经前体细胞进行活体成像。体内水平上对前脑神经前体细胞在克隆水平的发育过程分析可通过此方法实现。...

延时活体成像观察发育中斑马鱼前脑内克隆相关神经前体细胞

本视频介绍了使用双光子激光轴突切断术损伤斑马鱼胚胎中的轴突，并观察轴突损伤后恢复过程的方法。...

双光子激光轴突切割：一种在斑马鱼胚胎中损伤轴突并观察轴突修复的方法

来源：Williams, A. L., et al. 利用多光子延时成像技术实时可视化发育过程：斑马鱼胚胎中迁移的神经嵴细胞的可视化. J. Vis. Exp.

利用多光子延时成像技术观察斑马鱼胚胎中神经嵴细胞的迁移

延时共聚焦成像是一种用于表征胚胎发育的有力技术。本文中，我们描述了该方法，并对野生型以及 pdgfra, smad5, 和 smo...

利用4D共聚焦显微镜分析斑马鱼颅面形态发生

有丝分裂对每一种生物都至关重要，其缺陷常导致癌症和发育障碍。利用本成像方案并以斑马鱼作为模型系统，研究人员可以在活体脊椎动物中观察有丝分裂过程，以及当有丝分裂过程出现异常时所产生的多种缺陷。...

活体斑马鱼胚胎中观察有丝分裂及其动态过程

结合激光扫描显微镜的先进光学技术与长波长多光子荧光激发，对 Tg(sox10:EGFP) 和 Tg(foxd3:GFP)...

多光子延时成像实时可视化发育过程：斑马鱼胚胎中迁移性神经嵴细胞的可视化

本方案描述了一种对斑马鱼早期眼部发育进行整体标记和多维成像的方法。我们介绍了利用激光扫描共聚焦显微镜进行标记、包埋和四维（4D）成像的操作步骤，并讨论了优化数据采集的注意事项，以深入解析视杯形态发生机制。...

斑马鱼视杯形态发生的四维成像

我们展示了一种利用快速扫描共聚焦显微镜对发育中斑马鱼视顶盖内的小胶质细胞进行活体成像的方法，从而实现对这些细胞动态行为的分析 体内.

活体成像与斑马鱼胚胎小胶质细胞动态的表征

学习双光子激光切断轴突技术，用于斑马鱼胚胎长期成像研究。该方法结合时间推移共聚焦成像，可实时观察轴突损伤与再生动态，为神经发育生物学提供重要研究工具。

双光子轴突切除与活体斑马鱼胚胎的延时共聚焦成像

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