Name: Homarus Americanus Stomatogastric神经系统解剖 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-28T00:00:00.000+00:00
Duration: 26 min 22 s
Description: 学习美洲螯龙虾（Homarus americanus）胃神经系统的精细解剖技术，用于分离口胃神经节和神经。该方法为研究小型神经回路中的神经元功能提供了可靠的实验基础。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们谨向我们的导师 Eve Marder 博士致以谢意。本研究得到了美国国立卫生研究院基金项目 NS17813（授予 Eve Marder）和 NS059255（授予 A-E T）的支持。

在开始本方案之前，必须按照配套的 JoVE 文章（Bierman &amp; Tobin, 2009）所述方法将龙虾的胃从动物体内取出并进行预处理。以下所述的大部分步骤均需在解剖显微镜下进行。
第一部分 - 分离联合神经节
<ol>
<li>将培养皿摆放，使胃的前端（靠近唇部）朝远离操作者的方向，后端（靠近幽门）朝向操作者。 </li>
<li>确保胃已用图钉固定，使其尽可能平展地贴附在培养皿上。<ol>
<li>在唇部两侧固定食管。</li>
<li>如有必要，调整在大体解剖过程中放置的其他图钉。</li>
</ol></li>
<li>去除皮下组织。<ol>
<li>在 gm2/gm3 肌肉附近夹住皮下组织，将其从这些肌肉上分离，并轻轻向头端方向牵拉。</li>
<li>用剪刀剪断皮下组织与下方脂肪之间的连接部分。在中央动脉周围操作时需格外小心，该动脉包裹着口胃神经系统的重要部分。在口胃神经节周围约 0.5 cm 半径范围内的皮下组织应保持完整，口胃神经节位于 gm1b 肌肉之间。</li>
<li>剪除已分离的皮下组织。</li>
</ol></li>
<li>将脑组织与下方组织分离。<ol>
<li>辨认从脑前部向两侧延伸至胃前部的两个较大的连合神经。</li>
<li>保持这些神经完整，用镊子轻轻提起脑组织，并进行剪切，使脑与其余组织分离。操作时需谨慎，因口胃神经位于脑下方，必须保持完整。</li>
</ol></li>
<li>将连合神经节与周围组织分离。<ol>
<li>沿一侧连合神经追踪至其中一个连合神经节。</li>
<li>辨认 ion 和 son 神经——这些神经必须保持完整。连合神经节会发出多条放射状神经，除 ion 和 son 外，其余大部分可剪断，但需保留一条额外神经附着，以固定连合神经节位置，便于完成后续解剖。</li>
<li>对另一侧连合神经节重复相同操作。</li>
</ol></li>
<li>从外侧向内侧清理 ion 和 son 神经。保留唇神经完整，以将神经系统锚定于胃部。ion 神经交汇处即为食管神经节所在位置。可通过夹住下腹侧神经并向上牵拉，在其下方进行清理。</li>
</ol>
第二部分——分离口胃神经节（STG）及残留神经。
<ol start="7">
<li>将STG从周围组织中分离出来。<ol>
<li>STG 位于一条动脉内，该动脉走行于 gm1b 肌肉之间，并延伸至 gm2a、b 肌肉。在 gm2a、b 肌肉附近寻找该动脉的切断端。</li>
<li>将动脉的切断端向上方和前方牵拉，以暴露 dvn继续向上剥离，直至达到残留皮下组织的水平。分离后，可将动脉修剪至与残留皮下组织相接触的水平。</li>
<li>切除位于龙虾吻部的肌肉瓣。</li>
<li>抬起动脉上方的皮下组织，观察到动脉在位于舌下腺上方的脂肪内形成一个通道。将剪刀的一个刀片插入动脉内，剪开其上方的肌肉。检查是否能够看到 dvn 在切割时，确保位于颞上回（STG）上方的安全位置。继续沿动脉向前方切割。当在颞上回上方进行切割时，你将能够看到 stn 从颞浅筋膜（STG）向前延伸并深入肌肉。继续向前切割，以完全分离位于STG上方的肌肉。</li>
<li>清除组织周围杂物 stn.</li>
</ol></li>
<li>分离 agn来自周围组织。（即使您不打算从周围组织记录） agn，你需要保留一段完整的神经，以固定神经节进行细胞内记录。）<ol>
<li>为了更清楚地观察 agns，去除剩余的皮下组织及下方肌肉的一薄层。</li>
<li>在颞上回后方不远处，于脂肪和肌肉中辨识出两侧的暗色管状结构 dvn.</li>
<li>将一把剪刀的一侧刀片插入隧道内，剪断神经上方的组织。沿神经继续向侧方剪开，以分离神经。（暴露足够固定神经节的几毫米即可，但至少暴露5 mm的神经） agn 如果你计划对其进行记录。</li>
<li>分离 agn 通过切断连接，从其支配的肌肉中分离。</li>
<li>另一侧重复操作以分离对侧 agn.</li>
<li>一旦两者均 agn将所有连接STG与胃的肌肉和组织切断。</li>
</ol></li>
<li>分离 mvn它们是一对细小的神经，从两侧分出 lvn 并在脂肪下方横向穿行。<ol>
<li>使用剪刀或两把镊子从一侧切开脂肪组织 dvn，靠近其分为两条分支的位置 lvns. 在这里，你已远离 mvn且不会冒损坏它们的风险。</li>
<li>抬起脂肪层，辨认出小的 mvn 位于下方。这些神经在 gm1b 肌肉水平的后方，由内侧向外侧走行。</li>
<li>去除上方的脂肪层 mvn暂时保留神经完整，以免缠绕。在解剖结束时，将从胃部外侧切断其末端。</li>
<li>在另一侧重复该过程以分离另一侧 mvn.</li>
</ol></li>
<li>分离 lvn和后部神经。<ol>
<li>从以下位置开始 lvn侧向分支出 dvn，遵循一个 lvn 通过切除此神经上方的脂肪组织。根据制备情况，有时可将神经上方的整层脂肪完全剥离。</li>
<li>继续揭示 lvn 直到该点 psn 分出分支。</li>
</ol></li>
<li>分离 pyn.<ol>
<li>定位 pyn它是一条沿幽门后方走行的神经。</li>
<li>去除覆盖该区域的薄层膜。</li>
<li>分离 pyn 通过切割幽门的一小部分，连同其附着处 pyn.</li>
<li>轻轻提起幽门部分，并剪除其两侧的组织 pyn 直到到达连接到的分支 pdn.</li>
</ol></li>
<li>分离 pdn.<ol>
<li>定位 pdn它是一条位于幽门扩张肌后侧并向后走行的神经。</li>
<li>切取一小段附着于幽门扩张肌的组织 pdn.</li>
<li>轻轻提起幽门扩张肌组织部分，剪除其两侧的组织 pdn 直到到达连接到的分支 pyn.</li>
</ol></li>
<li>分离腹侧 lvn，连接 pyn 和 pdn 到 lvn.<ol>
<li>在三角形分支点处 pyn 和 pdn 连接至腹侧 lvn，分离出从腹侧分支的任何微小神经节段 lvn，例如 vpln。这将用作牵拉腹侧的把手 lvn.</li>
<li>提起手柄，剪除腹侧两侧的组织 lvn，向前侧方向操作，直至到达指定位置 psn 分出分支。</li>
</ol></li>
<li>重复步骤 10 至 13 以分离 lvn 另一侧的后部神经。 </li>
<li>将口胃神经系统从胃部剥离。<ol>
<li>完全解离 lvn 从胃部，拉动 psn 并切断所有与之相连的组织和神经 lvn 和腹侧 lvn，但以下情况除外 pdn 和 pyn. 在另一侧重复此步骤。</li>
<li>切取每侧的外侧端 mvn抬起外侧端，切断神经与下方胃组织之间的任何多余连接。</li>
<li>在前端，切断与连合神经节相连的任何多余组织，并在两侧分别切断唇神经。</li>
<li>目视扫描口胃神经系统，识别并切断与胃组织之间的任何额外连接。</li>
<li>抓住两条连合神经前端、连合神经节上方的位置，将口胃神经系统从胃部剥离并移至培养皿一侧。操作过程中，切断任何残留的连接组织，以完全游离该神经系统。</li>
</ol></li>
<li>准备小型Sylgard培养皿。<ol>
<li>在小培养皿的Sylgard表面充分摩擦一些胃组织。这将降低Sylgard的疏水性，使生理盐水能够在培养皿表面均匀分布。</li>
<li>用预冷的生理盐水冲洗并注满Sylgard培养皿。</li>
</ol> </li>
<li>用镊子夹住两侧的脑神经前段，将神经系统从大培养皿中提起，转移到已准备好的Sylgard小培养皿中。 </li>
<li>使用微型图钉和从钨丝上截取的较细图钉，将STNS固定在小培养皿中。<ol>
<li>通过检查腹侧室神经是否背离Sylgard，确保标本腹面朝上。</li>
<li>取出脑组织并固定连合神经。</li>
<li>轻轻牵拉神经系统的每一部分，使其绷紧并展平 psn向后方和侧方牵拉并固定。</li>
<li>移除幽门扩张肌 pdns，并固定 pdns.</li>
<li>移除幽门段 pyns，并固定 pyns.</li>
<li>固定任何残留的孤立神经，例如唇部神经， mvn和 agns.</li>
</ol></li>
<li>剥离STG的鞘膜。<ol>
<li>确保STG平整地贴在Sylgard上，并通过侧向拉紧固定 agns，前部 stn 和后部 dvn.</li>
<li>调整光照条件，以实现对轴突的清晰观察 dvn.</li>
<li>使用小针或细钨针，在包裹的鞘膜上制作一个微小的浅孔 dvn位于颞上回（STG）后方。</li>
<li>将针头沿 dvn在轴突背侧水平撕裂神经鞘。</li>
<li>抓住位于STG后方的神经鞘瓣膜，向前牵拉，以从STG背侧去除神经鞘。</li>
</ol></li>
</ol> 
<table border="1">
<tbody>
<tr>
<td colspan="2">缩写：</td>
</tr>
<tr>
<td>STNS</td>
<td>口胃神经系统</td>
</tr>
<tr>
<td>STG</td>
<td>口胃神经节</td>
</tr>
<tr>
<td>CoG</td>
<td>连合神经节</td>
</tr>
<tr>
<td>stn</td>
<td>口胃神经</td>
</tr>
<tr>
<td>mvn</td>
<td>内侧腹侧神经</td>
</tr>
<tr>
<td>ion</td>
<td>下食管神经</td>
</tr>
<tr>
<td>son</td>
<td>上食管神经</td>
</tr>
<tr>
<td>agn</td>
<td>前胃神经</td>
</tr>
<tr>
<td>dvn</td>
<td>背侧腹侧神经</td>
</tr>
<tr>
<td>lvn</td>
<td>外侧腹侧神经</td>
</tr>
<tr>
<td>psn</td>
<td>后胃神经</td>
</tr>
<tr>
<td>vpln</td>
<td>腹侧后外侧神经</td>
</tr>
<tr>
<td>pyn</td>
<td>幽门神经</td>
</tr>
<tr>
<td>pdn</td>
<td>幽门扩张神经</td>
</tr>
</tbody>
</table>

<ol><li>Marder, E., Bucher, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+pattern+generators+and+the+control+of+rhythmic+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Central pattern generators and the control of rhythmic movements.</a> Curr. Biol. 11, R986-R996 (2001).</li>
<li>Nusbaum, M. P., Beenhakker, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small-systems+approach+to+motor+pattern+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A small-systems approach to motor pattern generation.</a> Nature. 417, 343-350 (2002).</li>
<li>Clemens, S., Massabuau, J. C., Legeay, A., Meyrand, P., Simmers, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+modulation+of+interacting+central+pattern+generators+in+lobster+stomatogastric+ganglion%3A+influence+of+feeding+and+partial+pressure+of+oxygen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In vivo modulation of interacting central pattern generators in lobster stomatogastric ganglion: influence of feeding and partial pressure of oxygen.</a> J. Neurosci. 18, 2788-2799 (1998).</li>
<li>Bierman, H. S., Tobin, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gross+dissection+of+the+stomach+of+the+lobster%2C+Homarus+americanus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Gross dissection of the stomach of the lobster, Homarus americanus.</a> J Vis Exp. 27, (2009).</li>
<li>Maynard, D. M., Dando, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure+of+the+stomatogastric+neuromuscular+system+in+Callinectes+sapidus%2C+Homarus+americanus+and+Panulirus+argus+%28Decapoda+crustacean%29%5BTitle%5D)+AND+%22Philos.+Trans.+R.+Soc.+Lond.+B+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">The structure of the stomatogastric neuromuscular system in Callinectes sapidus, Homarus americanus and Panulirus argus (Decapoda crustacean).</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 268, 161-220 (1974).</li>
<li>Herrick, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+history+of+the+American+lobster%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+U.S.+Bur.+Fish%22%5BJournal%5D)">Natural history of the American lobster.</a> Bull. U.S. Bur. Fish. 29, 219-252 (1909).</li>
<li>Marder, E., Bucher, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+circuit+dynamics+using+the+stomatogastric+nervous+system+of+lobsters+and+crabs%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Understanding circuit dynamics using the stomatogastric nervous system of lobsters and crabs.</a> Annu. Rev. Physiol. 69, 291-316 (2007).</li>
<li>Bucher, D., Taylor, A. L., Marder, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+pattern+generating+neurons+simultaneously+express+fast+and+slow+rhythmic+activities+in+the+stomatogastric+ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Central pattern generating neurons simultaneously express fast and slow rhythmic activities in the stomatogastric ganglion.</a> J. Neurophysiol. 95, 3617-3632 (2006).</li>
<li>Mizrahi, A., Dickinson, P. S., Kloppenburg, P., Fénelon, V., Baro, D. J., Harris-Warrick, R. M., Meyrand, P., Simmers, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+maintenance+of+channel+distribution+in+a+central+pattern+generator+neuron+by+neuromodulatory+inputs+revealed+by+decentralization+in+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Long-term maintenance of channel distribution in a central pattern generator neuron by neuromodulatory inputs revealed by decentralization in organ culture.</a> J. Neurosci. 21, 7331-7339 (2001).</li>
<li>Schulz, D. J., Goaillard, J. M., Marder, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variable+channel+expression+in+identified+single+and+electrically+coupled+neurons+in+different+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Variable channel expression in identified single and electrically coupled neurons in different animals.</a> Nat. Neurosci. 9, 356-362 (2006).</li>
<li>Schulz, D. J., Goaillard, J. M., Marder, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+expression+profiling+of+identified+neurons+reveals+cell-specific+constraints+on+highly+variable+levels+of+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Quantitative expression profiling of identified neurons reveals cell-specific constraints on highly variable levels of gene expression.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 13187-13191 (2007).</li>
</ol>

龙虾胃部和 STNS 的解剖结构此前已有详细描述5,6，该解剖方法的多种变体已在众多研究中被应用。我们建议在开始解剖操作前，先熟悉胃部5-7和 STNS5,8的解剖结构。掌握这些解剖知识将降低神经和组织意外受损的风险。
为保持制备物的健康状态，维持较低的温度至关重要。可通过每30分钟用保存在冰箱中的4˚C生理盐水更换一次溶液，轻松实现降温。当浸没在冷生理盐水中时，分离的STNS制备物可维持活性数小时。相关记录见下文 Homarus gammarus 已证明在5天内从STG记录到稳定的节律性活动 体外9；在类似情况下也观察到了稳健性 H. americanus（个人观察）.
来自联合神经节的调节性输入对于维持胃幽门神经节（STG）持续的运动模式至关重要。因此，为了保持正常的节律性活动，必须保留联合神经节以及 ion、son 和 stn 神经。我们所描述的解剖方法保留了多条运动神经（内含运动神经元轴突）：agns（包含胃磨肌（GM）轴突）、mvns（包含侧胃神经（LG）和下心脏神经（IC）轴突）、pyns（包含幽门神经元（PY）轴突）、pdns（包含幽门扩张神经（PD）轴突），以及 lvns（包含侧幽门神经（LP）、内侧胃神经（MG）、LPG 轴突，以及来自 GM、PD 和 PY 的轴突）。通过解剖额外（或不同的）神经，也可记录其他类型的运动神经元轴突。每种特定类型的运动神经元轴突均可通过分离并记录其支配相应肌肉的神经来进行单独记录。
该制备样品可用于多种聚焦于神经系统功能的研究。神经元的活动可通过细胞内记录方式，使用尖锐电极从胞体或轴突进行记录，也可通过细胞外记录方式从神经中记录电脉冲信号。STG神经元中的多种离子通道已实现部分克隆，并可从人工分离的胞体中检测其mRNA水平10,11。

<table><tbody><tr><td>细钨丝（0.001 英寸直径）</td><td>工具</td><td>California Fine Wire Company</td><td></td><td>切成 1-2 毫米的小段，用作细针。</td></tr><tr><td>5 号镊子</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>91150-20</td><td></td></tr><tr><td>微型针</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Moria 弹簧剪刀（7 毫米刀片）</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>15370-52</td><td>此类为高端产品。同一家公司也提供更经济的弹簧剪刀。</td></tr><tr><td>培养皿（100×15 毫米）</td><td>工具</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-757-12</td><td>加入 2-4 毫米厚的 Sylgard 182。</td></tr><tr><td>Sylgard 182</td><td>其他</td><td>Dow Corning</td><td>182</td><td></td></tr><tr><td>针 holder</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>26018-17</td><td>可选。仅使用剪刀和精细镊子也可完成去鞘操作。</td></tr><tr><td>超细镊子 #5SF</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-00</td><td></td></tr><tr><td>钨针</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td>10130-05</td><td>可选。去鞘操作可使用剪刀，或使用细钨丝切割制成的针完成。</td></tr><tr><td>解剖显微镜</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

homarus americanus 口胃神经系统解剖

Homarus Americanus Stomatogastric Nervous System Dissection

为了理解神经系统如何产生活动并对外界环境作出反应，神经科学家们采用一些能够表现出感兴趣活动、且便于进行实验操作的模型系统。美国龙虾的口胃神经系统（STNS）Homarus americanus；也被称为大西洋龙虾或缅因龙虾，已被确立为研究节律产生网络及神经网络神经调制的模式系统。STNS 包含3个前部神经节（2个连合神经节和1个食管神经节），其中含有投射至口胃神经节（STG）的调节性神经元。STG 包含约30个神经元，组成两个中枢节律产生网络，即幽门网络和胃网络，这些网络是甲壳动物摄食行为的基础1,2. 虽然研究该系统是可行的in vivo3，当被分离时，STNS 仍能持续产生节律性活动in vitro. 在培养皿中将STNS进行物理分离，可方便地接触神经节中的胞体以进行细胞内电生理记录，同时便于接触STNS神经以进行细胞外记录。分离STNS分为两个步骤。第一步是将胃从动物体中解剖出来，该步骤在配套的视频文章中有详细描述。4. 在本视频文章中，采用精细解剖技术从胃部分离出STNS。该操作可获得可用于电生理记录的神经系统制备样本。

我们描述了从美洲龙虾（Homarus americanus）胃部精细分离口胃神经系统的方法。

Homarus americanus 口胃神经系统解剖

以理解神经系统如何产生活动并响应环境为目标，神经科学家们采用具有以下特征的模式系统：

从龙虾中分离胃神经系统的操作可分为两个部分：粗略解剖和精细解剖。本视频介绍从胃部精细解剖体壁胃神经系统的过程，包括被称为STG的肝胃神经节（stomatogastric ganglion）以及被称为COGs的连合神经节（commissural ganglia）。本质上，需要将神经和神经节从周围组织中分离出来，首先分离CGs，然后分离STG。该操作的最终结果是将胃神经系统完整地固定在培养皿中，可用于开展多种针对神经系统功能的研究。大家好，我是安纳利斯·托宾（Annalise Tobin），来自布兰迪斯大学（Brandeis University）生物学系伊芙·马蒂尔（Eve Martyr）博士的实验室。大家好，我是希拉里·伯曼（Hillary Burman），也来自马蒂尔实验室。今天我们将向大家展示一种从美洲螯龙虾（Homarus americanus）胃部分离体细胞胃神经系统的方法，以观察胃是如何被取出的。请参阅我们在 JoVE 上的配套视频方案。我们在实验室中使用此方法研究神经元在小型神经回路中产生节律性行为的功能。现在让我们开始吧。首先，需要制备龙虾胃部以观察其具体操作过程。请先观看随附的视频，由Beerman和Tobin演示：首先调整培养皿方向，使靠近唇部的内端远离操作者，后端朝向操作者。该步骤的起始阶段需对制备样本进行更精确的固定。在唇部两侧固定食管，如有必要，调整大体解剖过程中放置的其他大头针，使胃部平展。接下来，先抓住靠近gm、两块GM三肌肉处的皮下组织，将其从这些肌肉上分离，并轻轻向前方牵拉以去除皮下组织。使用镊子小心剪断皮下组织与下方脂肪之间的连接，操作时需注意保护中央动脉周围区域，该区域包绕着躯体胃神经系统的一部分，应保持皮下组织的完整性。现在可以在体细胞胃神经节周围约0.5厘米半径范围内进行切割，该神经节位于GM one B肌肉之间，将已分离的下皮层切除。下一步是将脑组织从其下方的组织中分离。首先识别从脑前部向两侧延伸至胃前部连合神经节的两条大型连合神经。保持这些神经完整，用镊子轻轻提起脑组织，并进行剪切以将脑与其余组织分离。操作时需小心，因为躯体胃神经位于脑下方，必须保持完整。为分离周围组织中的连合神经节，可先沿一条连合神经追踪至神经节以确定其位置。现在识别 ION 和 SON。这些神经必须保持完整。每个联合神经节都会有多条神经向外辐射。切掉大部分神经，但保留 ION 和 SON。在完成解剖时，留出一条额外的神经连接，以固定连合神经节的位置。现在以相同方式定位并修剪另一侧连合神经节的神经。接下来，从外侧向内侧清理 ION 和 SON。保留唇部神经完整，以将制备物固定在胃部。食管神经节位于 iOS 交叉处。可通过抓取下方的室下神经并向上挑起，以在其下方进行剪切。下一步是将STG与其周围组织分离。STG位于一条动脉内部，该动脉走行于GM one B肌与下方的GM two a B肌之间。在臀肌附近寻找动脉的切断端。两条AB肌将动脉向上和内侧牵拉，以暴露背外侧神经。继续向上牵拉至剩余的下皮层。分离后，可将动脉修剪至其与残留的皮下组织接触的水平位置。接着，切除位于龙虾吻部的肌肉瓣。然后，提起动脉上方的皮下组织。动脉在脂肪内形成一条通道，位于舌上腺上方。将剪刀的一侧刀片插入动脉内，剪开其上方的肌肉。切割时请确认可见DVN，以确保操作安全。在STG上方，沿动脉继续向前方切开。当在STG上方进行切割时，您将能够看到STN从STG向前发出，并向下深入肌肉。继续向前方切割，以完全分离位于喉上神经上方的肌肉。清除环甲肌周围的组织。现在我们可以继续分离其他几条神经。接下来需要从周围组织中分离的神经是外侧胃神经（AGNs）。即使您不打算从A GN记录信号，也需要保留其一部分用于固定神经节。为了更清楚地观察AGNs，需去除STG后方残留的皮下组织以及其下层的一薄层肌肉。在背侧阴道神经（DVN）棒状结构两侧的脂肪和肌肉中寻找一条深色的隧道，将剪刀的一侧刀片插入隧道内，剪断神经上方的组织。沿神经继续向侧方剪开，以分离该神经。固定神经节时暴露几毫米即可，但若计划记录A型神经节（A GN）的信号，则应至少暴露五毫米。通过切断连接，将一个支配其靶肌肉的神经节（GN）分离下来。然后在另一侧重复此操作，以分离另一个A型GN。在两侧A型GN均解剖完毕后，切断所有连接胃幽门窦（STG）与胃之间的肌肉和组织。接下来，分离M型腹神经（M vns）。它们是一对细小的双侧神经，从LVN分出，横向穿行于脂肪组织下方。可使用剪刀或两把镊子，在DVN分出两条LVN位置的一侧，剪开该侧的脂肪组织。此处远离M VNS，不会误伤它们。抬起脂肪层，观察其下方是否存在一条细小的神经。迷走神经感觉主核（M VNS）的走行位于股后肌群（GM one B 肌）水平稍后外侧。去除 MVN 上方的脂肪层，但暂时保留神经完整，以免其发生缠绕。在神经系统解剖的最后阶段，你将切断其外侧端以及该端与主腹侧神经索（M VNS）之间的任何连接。重复此操作以分离另一侧的主腹神经节（MVN）。接下来需要分离的是后部神经中的侧腹神经节（LVNs）。从背侧椎旁神经（DVN）发出的外侧椎旁神经（LVN）开始。通过切开其上方的脂肪组织来追踪一条LVN。根据标本的具体情况，有时可将神经上方的整层脂肪组织剥离掉。继续暴露 LVN，直至 PSN 分支处。现在定位 PYN，它是一条向后穿行于 pori 表面的神经。去除覆盖该区域的薄层膜。通过切割一小部分与PYN罐相连的多孔部分，分离PYN。接着轻轻提起pric部分，并剪除PYN两侧的组织，直至到达与PDN相连的分支处。继续分离向后走行至虹膜开大肌的PDNA神经。首先剪取一小段附着于PDN的虹膜开大肌，然后轻轻提起该虹膜开大肌组织片。切除 PDN 两侧的组织，直至到达与 PYN 相连的分支。现在找到腹侧 LVN，该神经在 PYN 和 PDN 与腹侧 LVN 相连的三角分支点处连接 PYN 和 PDN，分离从腹侧 LVN 分出的任何一小段分支神经，例如 VPLN。该小段神经将用作牵拉腹侧 LVN 的手柄，通过提起该手柄来操作。沿前方向切除外侧腹侧肝支（LVN）两侧的组织，直至找到腹腔神经（PSN）分支的位置。此时，你已成功分离出胃一侧的后支神经。接下来，分离另一侧的腹侧肝支（LVN）和后支神经。完全将左迷走神经（LVN）从胃部分离。牵拉门静脉神经（PSN），切断所有与左迷走神经及腹侧左迷走神经相连的组织和神经，但保留胰腺神经（PDN）和胰尾神经（PYN）。在另一侧重复此操作。接下来，切断每个前庭内侧核（MVN）的外侧端。提起外侧端，并切断前庭内侧核前部的所有连接组织。切断与交感神经节的所有连接，并在每一侧切断唇神经。目视扫描躯体性胃神经系统，识别并切断与胃组织之间的其他连接。当所有连接均被切断后，即可用镊子夹住联合神经节上方两条联合神经的前端，将躯体性胃神经系统从胃组织上剥离下来，并移至培养皿的一侧。操作过程中，需切断任何残留的附着物，以彻底游离该神经系统。解剖现已完成。首先准备用于固定神经系统的萨格尔培养皿。取少量胃组织，在小培养皿中的萨格尔表面充分擦拭。这将降低培养皿的疏水性，使盐水能够均匀分布在皿内。用冰冷的盐水冲洗并装满培养皿。通过夹住两侧连合神经的前端，将神经系统转移至准备好的培养皿中。将神经系统从大培养皿中取出并放入小培养皿中。固定神经系统时，使用微细镊针和更细的针组合进行固定。首先从钨丝上截取制针，通过观察下室神经是否背离筛状板，确认标本的背侧朝上。现在取出脑组织，并将连合神经固定。通过向后外侧轻轻牵拉每侧的躯体神经索（PSN），将神经系统拉直并展平，然后用针固定。接着，从周围神经系统（PNS）上移除喷水孔扩张肌，并将这些神经固定下来。然后从胃神经节（GYNs）上移除幽门段，并将胃神经节固定。最后，固定任何残留的孤立神经，例如唇神经、m vns 和 AGNs。下一步是剥离 S st。首先，确保S型导板紧贴S型保护装置，并由外侧AGN牢固固定。前部STN和后部DVN调整照明，以实现对DVN内轴突的清晰观察。然后使用一根细小的针或精细的钨针。在STG后方、DVN周围鞘膜上制作一个微小且浅的孔。将针头从染色的DVN背侧穿过轴突，以在神经鞘上制造一个水平撕裂。然后抓住STG后方的一片神经鞘瓣，向前牵拉并剪切，以去除STG背侧的鞘膜。一旦去除鞘膜，只要将标本保存在约 4 至 15 摄氏度的低温环境中，即可用于实验。该标本已被证实可在实验条件下保持稳定长达五天。完整的佐藤胃神经系统应使用大头针固定于 Syl 保护皿中。如图所示，神经应无损伤，并便于进行细胞外记录。完整胃神经节（STG）的细胞体应清晰可见，并便于进行细胞内记录。我们刚刚向您展示了如何分离美洲螯龙虾（Homa Americana）的体部胃神经系统。进行此解剖操作时，必须充分熟悉解剖结构，以避免损伤任何组织和神经。此外，至关重要的是将标本保持在4至15摄氏度的低温环境中。在解剖过程中，可通过每半小时更换一次生理盐水来轻松实现降温，即将标本置于冷却的生理盐水中，而备用的生理盐水则存放于4摄氏度的冰箱中，以确保标本始终处于低温状态。它可以保持数小时到数天的活性。以上就是全部内容。感谢您的观看，祝您的实验顺利成功。

homarus-americanus-stomatogastric-nervous-system-dissection

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

Homarus Americanus Stomatogastric神经系统解剖

通过使用 Jonah 螃蟹（C. borealis）的口胃神经系统（STNS），可开展电生理学、免疫组织化学以及细胞培养研究。STNS...

Cancer Borealis 胃神经系统的解剖

龙虾胃部的大体解剖，Homarus americanus

本实验的主要目的是了解初级感觉神经元如何将关节运动和位置信息作为本体感觉信息传递给动物。本报告的另一个目的是通过解剖并在解剖显微镜下观察神经元，展示制备样本的解剖结构。...

小龙虾腹部的肌肉感受器器官：本体感觉教学实验

本文介绍了利用荧光电压敏感染料对蟹类口胃神经节神经元的详细活动进行快速、高分辨率成像的方法。...

使用电压敏感性染料对蟹类口胃神经节中神经元进行光学成像

我们描述了在麻醉后对海洋海兔Aplysia的神经系统进行解剖，分离神经元用于短期组织培养，并通过膜片钳技术记录单细胞离子电流。...

Aplysia californica 感觉神经元的分离及其谷氨酸能电流的膜片钳记录

七鳃鳗在完全脊髓损伤后能够恢复运动功能。然而，某些脊髓投射神经元具有良好的再生能力，而另一些则不然。本文阐述了海七鳃鳗幼体（以及近期完成变态的成体）的饲养技术、完全脊髓横断手术的实施方法，以及全脑和脊髓整体装片的制备方法。 原位...

完全性脊髓损伤及脑组织解剖后续整体染色操作方案 原位 幼体海七鳃鳗的杂交

本文介绍了小龙虾腹部神经索的解剖方法。同时，我们还演示了一种电生理学技术，用于记录泳足运动神经元的虚拟运动活动。...

小龙虾的腹肢系统：神经索解剖与运动模式细胞外记录的实用指南

行为学实验为理解神经元功能提供了强有力的工具。本文介绍了几种用于量化模式线虫Pristionchus...

检测Pristionchus及其他线虫的捕食性摄食行为

本文介绍了一种对海洋软体动物Aplysia...

一种用于Aplysia californica齿舌内在肌的微创损伤技术

本方案介绍了一种利用吸收型电压敏感染料和光电二极管阵列，在非转基因无脊椎动物物种中以单细胞分辨率成像神经元群体活动的方法。该方法可实现快速的工作流程，可在一天内完成成像与分析。...

基于光电二极管的光学成像技术用于在非转基因无脊椎动物中以单神经元分辨率记录神经网络动态

学习美洲螯龙虾（Homarus americanus）胃神经系统的精细解剖技术，用于分离口胃神经节和神经。该方法为研究小型神经回路中的神经元功能提供了可靠的实验基础。

Homarus americanus 口胃神经系统解剖

探索更多视频