Name: 斑马鱼整装高分辨率双荧光原位杂交 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-03-25T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 31 s
Description: 学习斑马鱼胚胎高分辨率双荧光原位杂交技术，用于分析基因表达模式与重叠表达域。该方法结合碘化丙啶核染色，可清晰显示亚细胞水平的mRNA分布，助力发育生物学研究。

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我们谨感谢 Dörthe Jülich、Jennifer Round 和 Andrew Mara 在本实验方案开发过程中所做出的贡献。本研究得到了美国国立儿童健康与人类发展研究所（NICHD）、美国癌症协会和美国出生缺陷基金会的资助支持。

1. 固定
<ol>
<li>在4°C下用含4%多聚甲醛（PFA）的PBS固定胚胎过夜。</li>
<li>去除固定液，用PBS洗涤2次，每次5分钟，室温进行。</li>
<li>在玻璃凹孔板中的PBS内，使用钟表匠镊子手动去除胚胎的卵膜。去膜后，使用火焰抛光的玻璃巴斯德移液管转移胚胎，因为胚胎可能粘附于聚丙烯移液管。</li>
<li>将胚胎依次转移至含25%、50%和75%甲醇的PBS溶液中，每步各5分钟。</li>
<li>将液体替换为100%甲醇，孵育5分钟后，再更换为新鲜甲醇。</li>
<li>将胚胎置于-20°C下至少1小时。（我们通常孵育过夜。标准原位杂交在储存超过一年的胚胎上仍可进行，但我们尚未考察荧光原位杂交的高分辨率是否因长期储存而降低。）</li>
<li>在室温下，依次用含75%、50%、25%甲醇的PBST各洗涤5分钟；随后在PBST中再洗涤2次，每次5分钟。</li>
<li>在室温下，用含4% PFA的PBS再次固定20分钟。</li>
<li>在室温下，用PBST洗涤2次，每次5分钟。</li>
</ol>
关于PFA的注意事项： 我们将4% PFA分装后保存于–20ºC（见试剂表）。进行初次固定时，仅使用从未冻融过的PFA。后续固定中，通常使用已冻融过的PFA。根据本实验方案，初次固定对成功染色尤为关键。
2. 蛋白酶处理与后固定
<ol>
<li>在室温下用蛋白酶K（5μg/ml，溶于PBST）消化3至12分钟，以通透胚胎。（孵育时间取决于胚胎的发育阶段，较年轻的胚胎更敏感；同时也取决于酶的不同批次。）对于体节形成期的胚胎，通常通透3-4分钟。在此孵育过程中，我们将微量离心管侧放。</li>
<li>用PBST短暂漂洗，再在PBST中洗涤一次，每次5分钟。</li>
<li>在室温下用4%多聚甲醛（PFA）溶于PBS中再次固定20分钟。</li>
<li>在室温下用PBST洗涤两次，每次5分钟。</li>
</ol>
3. 预杂交
<ol>
<li>在 HYB- 中于 65º C 孵育胚胎 5 分钟。</li>
<li>在 HYB+ 中于 65º C 预杂交至少 1 小时。</li>
</ol>
4. 杂交
<ol>
<li>除去预杂交液（preHYB）中除 50 μl 以外的全部液体，但需确保胚胎始终完全浸没。</li>
<li>向胚胎中加入 1–2 μl 的每种核糖探针（地高辛标记和荧光素标记的核糖探针），并通过轻轻弹动管壁混匀。通常每种探针的用量为 20 μl 探针合成反应产物中的 1–2 μl。</li>
<li>由于荧光素对光敏感，从此时起应将管子用铝箔包裹，或尽可能避免暴露于光照条件下。</li>
<li>在 65ºC 下将胚胎孵育过夜。</li>
</ol>
5. 探针移除
请注意，从此步骤开始的溶液中不再含有去污剂。去除去污剂似乎有助于染色反应，但会导致胚胎变得较为粘稠。
<ol>
<li>移除核糖探针。</li>
<li>在 65ºC 下用 50% 甲酰胺/2xSSC 溶液洗涤 2 次，每次 30 分钟。</li>
<li>在 65ºC 下用 2 x SSC 溶液洗涤 15 分钟。</li>
<li>在 65ºC 下用 0.2 x SSC 溶液洗涤 30 分钟。</li>
</ol>
6. 抗荧光素抗体孵育
<ol>
<li>在500μl含2%封闭试剂的1×马来酸缓冲液中，室温下封闭至少1小时（参见试剂表）。</li>
<li>按1:500比例，将罗氏公司提供的抗荧光素-POD抗体加入封闭液中。</li>
<li>4ºC下孵育过夜。孵育期间，我们将微量离心管侧放。</li>
<li>用1×马来酸缓冲液洗涤4次，每次20分钟；再用PBS洗涤2次，每次5分钟。</li>
</ol>
7. 荧光素标记探针的检测
<ol>
<li>在 TSA Plus Fluorescein 溶液中孵育 30–60 分钟。（配制染色液前需离心 TSA 底物。反应时，将酪胺试剂用 Perkin Elmer 放大稀释缓冲液按 1:50 稀释。）孵育期间，我们将微量离心管侧放。每种探针的反应时间需通过实验确定。由于底物具有荧光，染色反应过程中会观察到普遍的绿色荧光，因此无法通过肉眼监测反应进程。</li>
<li>分别用含 30%、50%、75% 和 100% 甲醇的 PBS 溶液各洗涤 10 分钟。</li>
<li>在含 1% H2O2 的甲醇溶液中孵育 30 分钟，以灭活第一种过氧化物酶。</li>
<li>分别用含 75%、50% 和 30% 甲醇的 PBS 溶液各洗涤 10 分钟，然后在 PBS 中洗涤两次，每次 10 分钟。必须确保完全去除所有甲醇。</li>
</ol>
关于酪酰胺信号放大技术的说明： 我们一直使用 Perkin Elmer 的 TSA 试剂盒。我们发现，Alexa-Tyramide 底物在使用 Perkin Elmer 的扩增稀释缓冲液时染色效果良好，但在使用 Invitrogen/Molecular Probes 试剂盒所提供的染色缓冲液时未能获得成功。最后，我们发现后续的甲醇/2O2 处理过程中荧光素和Alexa-647不受影响，而Cy3可能受到甲醇/H的不利影响。2O2 处理，因为其结构与Cy5相关。因此，在双重荧光原位标记实验中，Cy3和Cy5 TSA反应应仅用于第二轮染色反应。
8. 抗地高辛抗体孵育
<ol>
<li>在室温下，用含有2%封闭剂的1×马来酸缓冲液再次封闭胚胎，至少1小时。</li>
<li>按1:1000比例，将Roche公司提供的抗DIG-POD抗体加入上述封闭液中。</li>
<li>在4°C下孵育过夜。孵育期间，我们将微量离心管侧向放置。</li>
<li>用1×马来酸缓冲液洗涤4次，每次20分钟；再用PBS洗涤2次，每次5分钟。</li>
</ol>
9. 地高辛标记探针的检测
<ol>
<li>在TSA Plus Cy5溶液中孵育30-60分钟（配制染色液前需离心TSA底物。反应时，将酪胺试剂用扩增稀释缓冲液按1:50稀释）。孵育期间，我们将微量离心管侧放。每种探针的反应时间需通过实验确定。</li>
<li>用PBST洗涤三次，每次10分钟。</li>
</ol>
10. 碘化丙啶染色
<ol>
<li>用 2 x SSC 溶液洗涤两次，每次 5 分钟。</li>
<li>在 37°C 下，将胚胎在含有 10 μl RNA酶（终浓度为 100 μg/ml）的 50 μl 2 x SSCT 溶液中孵育 30 分钟。</li>
<li>在室温下用 2 x SSC 溶液洗涤六次，每次 3 分钟。</li>
<li>用含 330 µg/ml 碘化丙啶的 2 x SSC 溶液对胚胎染色 8 分钟。</li>
<li>在室温下用 2 x SSC 溶液洗涤六次，每次 3 分钟。</li>
<li>在室温下用含 4% 多聚甲醛的 PBS 溶液固定 20 分钟。</li>
<li>在室温下用 PBST 溶液洗涤两次，每次 5 分钟。</li>
</ol>
11. 封片
<ol>
<li>将胚胎分别在含25%和50%甘油的PBST中各孵育10分钟，随后在4ºC条件下用75%甘油透明过夜。</li>
<li>解剖并去除胚胎的卵黄，然后将其平铺在显微镜载玻片上。卵黄可能产生较强的背景荧光。胚胎经甘油过夜透明后，解剖操作会更容易进行。</li>
</ol>
溶液：
<table border="1">
<tbody>
<tr>
<td>PBST</td>
<td>PBS 加 0.1% Tween</td>
<td> </td>
</tr>
<tr>
<td>SSCT</td>
<td>SSC 加 0.1% Tween</td>
<td> </td>
</tr>
<tr>
<td>HYB-</td>
<td>50% 甲酰胺 5xSSC 0.1% Tween-20</td>
<td> </td>
</tr>
<tr>
<td>HYB+</td>
<td>HYB- 5 mg/ml 酿酒酵母（torula）RNA 50 μg/ml 肝素</td>
<td style="width: 300px;">酿酒酵母RNA通过蛋白酶K消化RNA，随后进行苯酚、苯酚-氯仿和氯仿抽提制备。RNA经沉淀后溶解于DEPC处理的水中。</td>
</tr>
<tr>
<td>1 x 马来酸缓冲液</td>
<td>150 mM 马来酸，100 mM NaCl（pH 7.5）</td>
<td> </td>
</tr>
</tbody>
</table>
<img src="/files/ftp_upload/1229/Brend_Holley_Fig1.png" alt="斑马鱼胚胎中 deltaC、her1 基因的荧光显微镜图像；基因表达模式。" width="600" height="688" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 1">
图1. 整体双荧光原位杂交的代表性结果。（A-C）图像显示了十体节期斑马鱼胚胎后部区域的单个共聚焦切片。视角为背侧观，上方为头端。用碘化丙啶染色的细胞核呈蓝色。（A）使用地高辛标记的核糖探针和TSA-Cy5试剂检测deltaC mRNA。（B）使用荧光素标记的核糖探针和TSA-荧光素试剂检测her1基因转录的mRNA。（C）合并绿色和红色通道可明确识别两个基因表达区域的独立或重叠分布。（D, E）her1表达的细节，展示了该方法的高分辨率。mRNA的亚细胞定位清晰可辨。箭头指示一个正在进行活跃转录的细胞，其细胞核内出现染色点状信号。箭头指示一个显示mRNA胞质定位的细胞。（F, G）对her1和deltaC的双重染色揭示了同时转录两个基因的细胞（白色箭头），或仅单独转录其中一个基因的细胞（红色和绿色箭头）。

<ol><li>Schulte-Merker, S., Ho, R. K., Herrmann, B. G., Nüsslein-Volhard, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+protein+product+of+the+zebrafish+homologue+of+the+mouse+T-gene+is+expressed+in+nuclie+of+the+germ+ring+and+the+notochord+of+the+early+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The protein product of the zebrafish homologue of the mouse T-gene is expressed in nuclie of the germ ring and the notochord of the early embryo.</a> Development. 116, 1021-1027 (1992).</li>
<li>Jowett, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Double+in+situ+hybridization+techniques+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Double in situ hybridization techniques in zebrafish.</a> Methods. 23, 345-358 (2001).</li>
<li>Jülich, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((beamter%2FdeltaC+and+the+role+of+Notch+ligands+in+the+zebrafish+somite+segmentation%2C+hindbrain+neurogenesis+and+hypochord+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">beamter/deltaC and the role of Notch ligands in the zebrafish somite segmentation, hindbrain neurogenesis and hypochord differentiation.</a> Dev Biol. 286, 391-404 (2005).</li>
<li>Mara, A., Schroeder, J., Chalouni, C., Holley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Priming%2C+Initiation+and+Synchronization+of+the+Segmentation+Clock+by+deltaD+and+deltaC%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Priming, Initiation and Synchronization of the Segmentation Clock by deltaD and deltaC.</a> Nat Cell Biol. 9, 523-530 (2007).</li>
<li>Lecuyer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+mRNA+localization+reveals+a+prominent+role+in+organizing+cellular+architecture+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Global analysis of mRNA localization reveals a prominent role in organizing cellular architecture and function.</a> Cell. 131, 174-187 (2007).</li>
</ol>

本文所述方案适用于在典型的碱性磷酸酶介导反应中染色30-45分钟后产生清晰强信号的探针。在进行荧光原位杂交实验前，我们始终使用标准的非荧光检测方案（补充材料中提供了该方案以及探针合成方案）对探针进行测试。当使用较弱的探针时，荧光原位杂交方案的成功率较低，但在某些情况下仍可能实现。我们已成功将荧光原位杂交方案与β-catenin的免疫定位技术结合使用3。在进行此项改进时，我们将HYB-、HYB+及杂交孵育步骤的温度设为55°C而非65°C，因为在较低温度下表位的保存效果更佳。免疫定位孵育步骤在TSA反应之后进行。
由于荧光素标记的探针通常比同一基因的地高辛标记探针信号较弱，因此我们通常先检测荧光素标记的探针。只有在两种基因中某一基因表达水平较低的情况下，才可能需要优先检测地高辛标记的探针。此时，应对表达较弱的基因使用地高辛标记的核糖探针，并优先进行染色，以最大化信噪比。需要注意的是，如果随后再检测荧光素探针，则不应使用荧光素TSA法来检测地高辛探针，因为抗荧光素抗体会同时识别TSA染色产物和荧光素标记的核糖探针。

<table><tbody><tr><td>16% 甲醛溶液，电镜级</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15710</td><td>用 1.33x PBS 稀释至 4%（终浓度为 1x）。分装成 2 ml 每份，于 &amp;#8211;20&amp;#x00B0;C 保存</td></tr><tr><td>蛋白酶 K，重组 PCR 级</td><td>Roche Group</td><td>03115879001</td><td>用去离子水配制成 20 mg/ml 的储存液。分装成 1 ml 每份，于 &amp;#8211;20&amp;#x00B0;C 保存</td></tr><tr><td>封闭试剂</td><td>Roche Group</td><td>11096176001</td><td>用 1x 马来酸缓冲液配制成 10% 储存液。分装成 50 ml 每份，于 &amp;#8211;20&amp;#x00B0;C 保存。可耐受多次冻融循环。</td></tr><tr><td>抗荧光素-POD，Fab 片段</td><td>Roche Group</td><td>11426346910</td><td>分装后于 -20&amp;#x00B0;C 保存。取一份作为工作液置于 4&amp;#x00B0;C 使用。</td></tr><tr><td>抗地高辛-POD，Fab 片段</td><td>Roche Group</td><td>11207739910</td><td>同上。</td></tr><tr><td>TSA Plus 荧光素系统</td><td>PerkinElmer, Inc.</td><td>NEL741001KT</td><td>仅在需要时配制 TSA 试剂。用 60&amp;#x03BC;l DMSO 溶解。4&amp;#x00B0;C 保存。</td></tr><tr><td>TSA Plus 花菁5系统</td><td>PerkinElmer, Inc.</td><td>NEL745001KT</td><td>同上</td></tr><tr><td>TSA Plus 花菁3系统</td><td>PerkinElmer, Inc.</td><td>NEL744001KT</td><td>同上</td></tr><tr><td>TSA 试剂盒 #16 AlexaFluor647 酪胺（含 HRP-羊抗兔 IgG）</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td>T20926</td><td>将酪胺试剂溶于 150&amp;#x03BC;l DMSO 中，分装后于 &amp;#8211;20&amp;#x00B0;C 保存。</td></tr><tr><td>RNase，无 DNase</td><td>Roche Group</td><td>11119915001</td><td>以 500&amp;#x03BC;g/ml 溶液形式提供</td></tr><tr><td>碘化丙啶</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td>P-3566</td><td>以 1 mg/ml 水溶液形式提供</td></tr></tbody></table>

斑马鱼全胚胎高分辨率双荧光标记 原位 杂交

Zebrafish Whole Mount High-Resolution Double Fluorescent In Situ Hybridization

整体装片in situ杂交技术是发育生物学中应用最广泛的技术之一。在这里，我们介绍一种高分辨率的双荧光in situ用于分析单个基因的精确表达模式以及确定两个基因表达区域重叠的杂交实验方案。该方案是标准版本的改良版in situ使用碱性磷酸酶及NBT/BCIP和Fast Red等底物进行杂交1,2. 本方案采用标准的地高辛和荧光素标记探针，并结合酪胺信号放大技术（TSA）3. 市售的TSA试剂盒支持灵活的实验设计，可将从绿色到远红光范围的荧光发射与多种核染料（如碘化丙啶）或蛋白质的荧光免疫组织化学染色联合使用。TSA产生一种反应性荧光底物，可快速共价结合至标记反义核糖探针附近区域的基团（通常是酪氨酸残基）。由此产生的染色模式具有高分辨率，可通过激光扫描共聚焦显微镜观察mRNA的亚细胞定位。3,4. 可以观察到染色体位点上的新生转录本，区分细胞核与细胞质的染色，并可视化其他模式，例如 mRNA 的皮层定位。相关研究在Drosophila表明大约70%的mRNA表现出特定的亚细胞定位模式，这些模式通常与所编码蛋白质的功能相关联5. 当与计算机辅助的三维共聚焦数据集重建相结合时，本方案可实现对整个脊椎动物胚胎中 mRNA 分布进行亚细胞分辨率的详细分析。

整体原位杂交是发育生物学中最常用的技术之一。本文中，我们介绍一种高分辨率的双荧光原位杂交实验方案，用于分析单个基因的精确表达模式，并确定两个基因表达区域的重叠情况。我们同时包含碘化丙啶核复染步骤，以突出显示组织结构。

整体原位杂交是发育生物学中最常用的技术之一。本文中，我们介绍一种高分辨率的双重……

该实验方法可用于高分辨率地确定斑马鱼胚胎中的基因表达模式。将一条反义核糖探针与互补的目标 mRNA 进行杂交。标记的核糖探针可被一种连接了过氧化物酶的抗体识别，随后向胚胎中加入荧光素四（fluoro four）偶联的酪酰胺。过氧化物酶将 IDE 转化为高活性化合物，从而稳定地沉积荧光素四。未结合的 IDE 经洗涤去除，最终揭示 mRNA 分布的精细亚细胞定位模式。使用带有不同荧光标记的探针和另一种荧光染料，可以观察第二个基因的表达，从而实现对基因表达的详细比较。大家好，我是来自耶鲁大学分子、细胞与发育生物学系 Scott Holly 实验室的 Tim Brent。今天我们将向您展示在本实验室中进行斑马鱼胚胎全 mount 高分辨率双荧光原位杂交的实验步骤。我们使用此方法研究斑马鱼的体节形成。现在开始操作。从在冷的多聚甲醛中固定过夜的胚胎开始进行该实验步骤。使用新解冻的多聚甲醛溶液进行此固定步骤对成功染色至关重要。移除固定液，并在室温下用 PBS 洗涤胚胎两次，每次五分钟。接着，去除胚胎的卵壳。将胚胎置于玻璃凹孔培养皿中。使用钟表匠镊子，从此去除珊瑚绒。用火焰抛光的玻璃巴斯德移液管转移胚胎。否则，胚胎会粘附在普通的聚丙烯吸头上。去氯后的胚胎需经过一系列甲醇浓度递增的洗涤步骤。最后一次洗涤使用100%甲醇。最后，将胚胎置于新鲜的甲醇中，并在零下20摄氏度下过夜保存。第二天，将胚胎依次通过甲醇浓度递减的系列洗涤液进行洗涤，并用PBST缓冲液洗涤两次，每次五分钟。接着，用甲醛固定胚胎20分钟。用 PBST 洗涤两次，每次五分钟，结束短暂的固定。现在我们已准备好对胚胎进行通透处理。通过将固定后的胚胎与蛋白酶 ACE K 共同孵育，使其具有通透性。务必将微量离心管侧放。消化步骤的时长取决于胚胎的发育年龄。例如，体节发生阶段的胚胎需在PBST中孵育三到四分钟。用PBST短暂漂洗一次，再用PBST洗涤五分钟。用多聚甲醛固定胚胎。最后用PBST清洗胚胎两次，每次五分钟。此时胚胎已准备好与RNA探针进行杂交。在完成胚胎的固定和通透处理后，我们开始进行杂交过程，首先在65摄氏度下用高盐缓冲液（high minus）孵育5分钟。使用前请务必预热HIIN溶液。接着，将胚胎在高盐缓冲液（high plus）中孵育1小时。再次提醒，需预先将高浓度杂交液预热。现在吸除大部分高浓度杂交液，但保留 50 微升，确保胚胎完全浸没。每种探针各加入 1 微升，并通过轻轻弹动管壁混匀。从现在开始用铝箔将试管覆盖。由于荧光素对光敏感，需在65摄氏度下避光孵育过夜，以完成杂交。接下来，让我们去除多余的探针。为了提高染色效果，需去除洗涤剂。但请注意，胚胎在无洗涤剂的情况下会变得黏稠。用50%甲酰胺、2×SSC溶液洗涤两次，每次30分钟。用1倍XSSC溶液洗涤一次，15分钟。最后，用0.2倍SSC溶液洗涤两次，每次30分钟。接下来，我们将对每个探针进行可视化。现在我们可以开始检测杂交的探针。首先检测荧光素探针，因为其稳定性及信号强度均低于地高辛探针。首先在室温下用500微升含2%封闭试剂的马来酸缓冲液封闭1小时。接下来，将辣根过氧化物酶标记的抗荧光素抗体以1:500的比例溶于封闭液中加入。在4°C下孵育过夜。务必将微量离心管侧向放置。接下来，使用酪胺信号放大系统（TSA）开始检测，其中TYROM IDE与荧光素四（fluoro four）偶联。抗体上的辣根过氧化物酶将TY IDE转化为高活性中间产物。该活性TY IDE与抗体附近区域的残基形成共价键，从而导致荧光素四在局部沉积。首先在室温下用一倍浓度的马来酸缓冲液洗涤四次，每次20分钟，随后用PBS洗涤两次。荧光素TY IDE此前已溶解于DMSO中保存。将此TSA底物短暂离心。接下来，用扩增稀释缓冲液将TSA底物按1:50稀释。将稀释后的溶液加入胚胎中，孵育45分钟。将微量离心管侧放。在此孵育步骤中，将胚胎依次经过一系列甲醇浓度递增的10分钟洗涤。最后一次洗涤为在100%甲醇中孵育10分钟，随后在含1%过氧化氢的溶液中孵育30分钟，以灭活抗体上的过氧化物酶。否则，该酶可能会干扰后续对地高辛的检测。将胚胎依次通过甲醇浓度递减的一系列洗涤液，并用 PBS 缓冲液洗涤两次，每次 10 分钟，以确保完全去除甲醇。地高辛标记探针的抗体杂交步骤始于封闭，方法与之前抗体操作相同。接下来，加入抗地高辛抗体，按1:1000比例稀释。将微量离心管侧放，在低温环境中过夜孵育。次日，用马来酸缓冲液在室温下洗涤。然后用PBS快速固定，加入SCI五种酪氨酸底物。将其稀释1:50后加入胚胎中。将离心管侧放，于37℃孵育45分钟。最后，用PBST洗涤三次。用碘化丙啶进行最终染色以标记细胞核。先用2×SSC溶液洗涤两次，每次五分钟。接下来，在37摄氏度下用RNAs处理30分钟。在2×SSC溶液中于室温下洗涤六次，然后加入碘化丙啶溶液，染色8分钟。再用2×SSC溶液洗涤六次。用多聚甲醛固定胚胎 20 分钟。最后，用 PBST 洗涤两次，每次五分钟。胚胎封片观察的步骤首先包括在 25% 和 50% 甘油中分别孵育 10 分钟。接下来，将样品放入75%甘油中，并在4摄氏度下孵育过夜。这一过夜透明步骤可使胚胎解剖更加容易。最后，解剖并去除胚胎中的卵黄。为了降低背景荧光，将胚胎平铺在显微镜载玻片上，并在显微镜下观察。这些图像显示了10体节期斑马鱼胚胎后端末端的单个共聚焦切片。红色染色显示的是利用地高辛标记的探针和TSA Cy3试剂检测到的delta C mRNA。绿色染色表示用荧光素标记的探针检测到的 her one mRNA。TSA 荧光素试剂与碘化丙啶共染的细胞核在双重染色胚胎中呈蓝色。可以明确确定表达区域是独特还是重叠。该实验步骤揭示了 mRNA 的亚细胞定位，如这些 HER1 染色的局部放大图像所示。基因的活跃转录通过细胞核内染色的点状信号得以显现。其他细胞则表现出mRNA的细胞质定位。在双重染色的胚胎中，我们可以观察到同时转录两个基因或仅转录其中一个基因的细胞。此外，我们刚刚向您展示了如何对斑马鱼胚胎进行整体高分辨率双重荧光原位杂交。进行此操作时，重要的是要记住，我们首先使用标准的碱性磷酸酶介导的染色探针来测试探针的效果，能够产生清晰且强信号的探针在荧光原位杂交中表现良好。我们还成功地使用了β-catenin的免疫定位来替代碘化丙啶染色。当我们进行这种变异时，杂交反应在55摄氏度下进行，而不是65摄氏度。就这样。感谢观看，祝您的实验顺利。

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科研

JoVE Journal

Biology

生物学

斑马鱼整装高分辨率双荧光原位杂交

使用整体封片法 原位 将分子生物学与生物体生物学相联系的杂交技术

斑马鱼是一种小型热带鱼，已成为研究脊椎动物发育和疾病过程中基因功能的常用模型。通过以下方法可确定目标基因的时间和空间表达模式： 原位...

高分辨率整体成像 原位 斑马鱼胚胎杂交技术用于研究基因表达与功能

当胚胎被包埋在低浓度琼脂糖的光学透明聚合物管中时，可通过光片显微镜在数天内连续观察斑马鱼的发育过程。...

斑马鱼长期光片显微镜成像的多层封片技术

本文介绍了一种对斑马鱼胚胎中组织特异性荧光进行半自动化成像的实验方案。...

斑马鱼胚胎中组织特异性荧光的半自动化成像

斑马鱼胚胎是发育生物学研究的理想模型。在胚胎发育过程中，斑马鱼胚胎带有卵黄团，给样本的观察与分析带来了三维结构上的挑战。本实验方案描述了如何制备整体样本的二维平面封片 原位 经 (WISH)...

用于整体染色斑马鱼胚胎标本观察与分析的平铺制备 原位 杂交

斑马鱼的间肾腺是哺乳动物肾上腺的硬骨鱼类对应器官。本方案介绍了如何进行3-β-羟基类固醇脱氢酶（Δ5-4...

可视化斑马鱼肾间组织类固醇生成组织及其血管微环境

纤毛发育对正常器官形成至关重要。本方案描述了一种优化的方法，用于标记和观察斑马鱼的纤毛细胞。...

通过整体荧光标记联合方案可视化斑马鱼中的多纤毛细胞 原位 杂交与免疫荧光

本文介绍了一种利用荧光抗体在斑马鱼胚胎和幼鱼整体样本中检测蛋白质的实验方案。...

斑马鱼胚胎和幼鱼的整体免疫组织化学染色

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原位 杂交联合免疫组织化学在冰冻切片斑马鱼胚胎中的应用

本文描述了一种在完整卵膜内利用光片显微镜对早期斑马鱼胚胎进行成像的样品制备策略。该方法分析了胚胎在原肠胚形成70%期和胚芽期时于卵膜内所采取的不同方位，并详细阐述了如何利用光片显微系统在整个胚胎范围内获得细胞尺度分辨率的成像策略。...

早期斑马鱼胚胎的光片显微成像与样品制备策略

在此，我们介绍一种在斑马鱼幼鱼中用荧光蛋白标签标记蛋白质的实验方案，该方案为新近开发并经过改进的方法 体内...

荧光标记法用于可视化斑马鱼中低表达蛋白

学习斑马鱼胚胎高分辨率双荧光原位杂交技术，用于分析基因表达模式与重叠表达域。该方法结合碘化丙啶核染色，可清晰显示亚细胞水平的mRNA分布，助力发育生物学研究。

斑马鱼全胚胎高分辨率双荧光标记原位杂交

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斑马鱼全胚胎高分辨率双荧光标记 原位 杂交

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