Name: 收获和准备果蝇胚胎的电生理记录和其他程序 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-20T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 22 s
Description: 学习果蝇胚胎解剖与电生理记录技术，用于神经肌肉发育研究。该方法通过水聚合手术胶固定胚胎，暴露腹侧中枢神经系统和肌肉组织，适用于无法孵化的突变体分析。

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K.B. 获得美国国立卫生研究院（NIH）资助项目 GM54544 的支持。

第1部分：设备与试剂
<ol>
<li>进行胚胎解剖需要一台性能良好的解剖显微镜；建议使用40倍放大倍数，并配备25倍目镜以最大程度提高放大倍数。</li>
<li>手动挑选胚胎及去除胚胎卵黄膜时，需使用精细镊子（5号）。</li>
<li>需要配备制作和修整精细玻璃针的设备。解剖过程中需使用拉制的玻璃针。我们倾向于使用实心玻璃针（使用寿命更长），但标准的厚壁玻璃管（外径1–1.5 mm）同样适用。有些人使用精细的钨针，通过在1M NaOH溶液中电解 sharpen 至所需锋利度，电源为10安培以上的自耦变压器电池。 sharpened 钨解剖针的优点是相对坚韧且耐用。中空玻璃针（制备方式类似于膜片钳电极）连接塑料管，用于解剖过程中吸液和排出生理盐水，以及精确输送胶水。目前有多种玻璃拉针仪可用于制造玻璃针。计算机编程控制的拉针仪可预设多种形状和尺寸。Brown-Flaming型号（Sutter Instrument Co.）广受青睐。应配备一台复式显微镜（20–40倍物镜），用于在使用前检查和修整电极。</li>
<li>解剖过程中常用的两种溶液用于浸泡胚胎组织：1）“标准”（Jan 和 Jan，1976a）或“改良标准”（Broadie，2000）生理盐水，其配方基于其他无脊椎动物系统电生理记录中常用的溶液；2）“类血淋巴”（HL）生理盐水（Stewart 等，1994），介于标准生理盐水与实测的黑腹果蝇（Drosophila）血淋巴离子浓度之间的一种折中配方。需注意的是，这些生理盐水均不能准确模拟体内血淋巴的实际化学组成（Broadie，2000）。标准生理盐水成分如下（单位为 mM）：135 NaCl、5 KCl、4 MgCl2、1.8 CaCl2、72 蔗糖、5 TES，pH 7.2。研究者也可考虑使用市售昆虫生理盐水（例如Schneider’s Insect Media），该溶液不适合电生理记录，但很可能更有利于保护暴露组织的健康状态。</li>
</ol>
第2部分：胚胎分期与解剖
<ol>
<li>为了获得最佳的卵收集效果，应将年轻（&lt;7天）、健康且数量为20-40只的雄性和雌性果蝇置于新鲜的产卵杯中培养2-3天。产卵杯通常由100 ml塑料烧杯（Tri-Pour）制成，底部打孔以保证足够的空气流通，并覆盖一个60 mm的琼脂平板。琼脂平板中含有用琼脂固化的苹果汁或葡萄汁。配方有多种，其中一种示例如下：700 ml水，25-30克琼脂，300 ml果汁浓缩液（葡萄或苹果），0.5 g对羟基苯甲酸甲酯（p-hydroxymethylbenzoate），以及30 g蔗糖。将水和琼脂进行高压灭菌，另将对羟基苯甲酸甲酯与蔗糖和果汁一起煮沸。混合琼脂液与果汁溶液后迅速倒入60 mm培养皿中，并去除气泡。</li>
<li>在收集卵之前，需在新鲜培养皿中用酵母糊（7克面包酵母溶于9 ml水中，4°C保存）喂养果蝇，每天至少更换两次，持续至少两天。到第3天时，一个良好的产卵杯每小时应能产出100-200枚卵。将产卵杯侧放，并在琼脂表面划痕，可显著提高产卵效率。许多胚胎会产在划痕处或其附近。</li>
<li>为收集大量胚胎，可用毛笔轻轻将胚胎从琼脂平板转移至筛篮中。筛篮可用15或50 ml离心管制作：剪去底部，保留足够面积以便在管盖与管口之间夹住一层筛网（70 µm孔径）。用dH2O冲洗胚胎后，将其放入含50%至100%次氯酸钠的新鲜漂白液的培养皿中，以去除外层卵壳（chorion）。或者，也可使用精细镊子逐个收集卵，并手动将其放入一滴漂白液中进行去壳处理。去壳时间通常为30秒至2分钟（新鲜漂白液作用更快），并在解剖显微镜下密切观察。去除卵壳后会暴露出光亮透明的卵黄膜（vitelline membrane）。去壳后的卵应迅速用生理盐水短暂冲洗或直接置于生理盐水中，因为漂白液会快速破坏去卵黄膜后的组织。</li>
<li>准确判定胚胎的发育阶段至关重要。虽然存在标准的Drosophila胚胎发育分期（1-17期；Campos-Ortega 和 Hartenstein, 1985），但由于所有功能性神经肌肉发育均发生在晚期16期或17期，因此这些分期并不实用。因此，通常以25°C恒温高湿培养箱中受精后或更常见的是产卵后（AEL）的时间（小时）来确定胚胎发育阶段。在此条件下，胚胎发育总时长约为21 ± 1小时（25°C）。</li>
<li>通过定时产卵（1-2小时）获得适当发育龄的卵后，需进一步通过形态学标准进行观察。在用dH2O充分清洗后，将去壳的卵置于塑料培养皿中的dH2O液滴下进行观察。可通过解剖显微镜下反射光观察形态学特征，确认胚胎发育阶段（Campos-Ortega 和 Hartenstein, 1985）。接近孵化的成熟晚期胚胎（22-24小时AEL）通常可通过表皮分节和气管充气等特征识别。此外，也可利用GFP平衡染色体结合配备适当滤光片的荧光解剖显微镜对胚胎进行基因型鉴定。</li>
<li>进行解剖时，将已去壳且发育阶段明确的胚胎固定在盖玻片上（背面向上），置于一滴生理盐水中（见步骤1.5）。使用玻璃微移液管或钨针在胚胎前端或后端附近刺破卵黄膜，从而将胚胎从膜中释放出来。为便于解剖，应将胚胎背面向上固定于盖玻片上（背面向上的解剖方式可暴露腹侧神经系统和神经肌肉系统以供实验使用。当然，也可根据需要采用其他方向固定胚胎，以便获取其他组织）。</li>
<li>早期胚胎（&lt;16小时AEL）可直接附着于洁净玻璃表面，或经多聚赖氨酸（poly-L-lysine hydrobromide；Broadie 和 Bate, 1993a, b）包被的玻璃表面。而较老的胚胎（&gt;16小时AEL），在形成表皮后必须使用胶水固定，理想情况下应固定于涂有Sylgard（Dow Corning）的盖玻片上。所用胶水为遇水聚合的氰基丙烯酸酯外科或兽用胶（Broadie 和 Bate, 1993c, d）。胶水通过连接橡胶管的小型玻璃电极移液管（内径10-20微米）输送，并通过口控压力调节胶水流速。输送胶水时需格外小心，因为胶水一旦接触生理盐水即迅速聚合。还需注意，若生理盐水中缺乏或仅有极低浓度的二价离子，则无法进行胶合，因为胶水聚合依赖于二价离子。首先使用少量胶水牢固固定胚胎的头部和尾部。</li>
<li>当胚胎两端被胶固定于盖玻片后，使用玻璃电极或磨尖的钨针沿背侧中线做一纵切口。可在正式切割前先轻轻穿刺切口线，以简化操作。随后用更多胶水将切口两侧固定于盖玻片上，使胚胎被轻柔地展平。接着使用连接橡胶管的玻璃移液管通过负压吸除内部器官，包括肠道、脂肪体以及可选的气管（Broadie 和 Bate, 1993a-c）。此时胚胎应平整地附着于盖玻片上，表皮朝下，腹侧中枢神经系统、外周神经及体壁肌肉完全暴露，可供后续实验操作。</li>
</ol>

由于胚胎功能特性的成熟过程在短短数小时内迅速进行，因此精确的胚胎分期至关重要。然而，这一分期过程受到多个因素的复杂影响。首先，大多数研究人员采用定时产卵法来确定胚胎发育阶段，但不同条件下个体间的产卵时间可能存在极大差异（Broadie 等，1992）。特别是，饮食受限的雌性个体往往会在产卵前长时间滞留已受精的卵。因此，在收集卵子前，必须通过提供富含酵母的食物喂养雌性至少两天以“清除”其体内滞留的卵（Broadie 等，1992）。此外，年长的雌性个体在产卵前也会更长时间地保留卵子。年长雌性通常仅在卵孵化前几小时才产卵。因此，为了获得最一致的产卵时间，应使用年轻的雌性个体（&lt;7 天龄）（Broadie 等，1992）。其次，在胚胎发育的晚期阶段，仅依靠形态学标准进行分期较为困难。大多数明确的分期特征在 &lt;16 小时 AEL 时已基本完成（Campos-Ortega 和 Hartenstein，1985），而大多数功能性发育则发生在 &gt;16 小时 AEL 之后。晚期发育特征（例如气管充气、表皮鞣化）较少，且在时间上的限制性较弱。基于上述原因，我们建议采用组合方法：通过 1–2 小时的定时产卵收集卵子，根据持续时间 &lt;...

<table><tbody><tr><td>胚胎收集笼</td><td>Genesee Scientific</td><td>59-100（适用于60 mm培养皿；也可提供其他尺寸）</td><td>也可使用打孔的三口烧杯自制收集笼，视频中已展示</td></tr><tr><td>Sylgard 184</td><td>Dow Corning</td><td>可从多家公司获得</td><td>手术胶在涂有Sylgard的盖玻片上黏附效果更佳</td></tr><tr><td>细玻璃管，外径1.0–1.5 mm</td><td>Various</td><td></td><td>用于拉制精细玻璃针以进行解剖，以及制作胶水输送用的细管</td></tr><tr><td>塑料管，用于连接玻璃移液管以进行口吸和施加胶水</td><td>Tygon</td><td></td><td>塑料管内径需与玻璃管外径匹配</td></tr></tbody></table>

收获与制备 果蝇 用于电生理记录及其他实验操作的胚胎

Harvesting and Preparing Drosophila Embryos for Electrophysiological Recording and Other Procedures

Drosophila是研究胚胎发育和功能神经科学的首选遗传模型。传统上，这两个领域彼此孤立，拥有 largely 独立的历史和科学群体。然而，这些通常截然不同的领域之间的交汇点，正是在神经回路形成的最后阶段，功能性的电信号特性的获得以及功能性化学突触分化所依赖的发育程序。这一交汇点是研究中至关重要的领域。在Drosophila，这些功能发育阶段发生在胚胎发生最后三分之一时期的 &lt;8 小时内（25°C 下）。由于表皮分泌了一层坚韧且不可渗透的角质层，这一晚期发育阶段长期以来被认为难以进行研究。一项突破性进展是应用了可与水聚合的外科胶水，该胶水可局部施加于角质层，从而实现对晚期胚胎的可控解剖。通过背侧纵向切口，可将胚胎展平，暴露腹侧神经索和体壁肌肉，以便进行实验研究。该系统已被广泛用于分离和鉴定影响胚胎突触形成的遗传突变体，从而揭示调控突触连接特化、分化以及功能性突触信号特性的分子机制。

该技术用于暴露果蝇胚胎的神经肌肉系统，以便进行免疫组织化学或电生理记录。它适用于研究神经肌肉发育的早期事件，或对无法孵化的突变体进行电生理实验。

果蝇是研究胚胎发育和功能神经科学的首选遗传学模型。传统上，这两个领域相距甚远……

为了在果蝇胚胎中进行电生理记录，首先需要收获胚胎并对其进行排列和解剖。通过使用遇水聚合的外科胶水将胚胎固定在盖玻片上，可实现稳定和可控的解剖。随后从固定的胚胎中移除内脏器官，以暴露腹侧中枢神经系统、外周神经和躯体肌组织。大家好，我是来自芝加哥大学生物科学系的 Dave Featherstone。大家好，我是来自芝加哥大学生物科学系Dave Featherstone实验室的Ton。今天我们将向您展示如何从果蝇中收集并手动解剖晚期胚胎。我们使用该实验方法作为常规实验步骤，为果蝇神经肌肉系统发育与功能的电生理检测做准备，相关内容我将在另一期即将推出的JoVE演示中进行介绍。那么我们开始吧。本实验方案从胚胎收集开始，这是多种果蝇实验中常用的步骤，接下来我们将对此进行回顾。在一个产卵瓶中放入20至40只年轻的雄性和雌性果蝇，建立混合群体。将它们置于25摄氏度的加湿培养箱中饲养。为了准确评估胚胎的发育阶段，温度和湿度应保持恒定。尽管有商用产卵杯可供使用，但也可使用带孔的100毫升三角塑料烧杯自制，这种烧杯可适配60毫米苹果琼脂培养皿。苹果钻孔食谱可在书面实验方案中找到。烧杯上的穿孔可使用加热的探针制备，孔径应小于成年果蝇的尺寸。在培养板中加入一团酵母糊，以刺激雌蝇产下大量卵；将酵母与水混合至类似花生酱的稠度，然后用刮刀涂抹于培养板上。每天更换两次培养板，轻敲果蝇使其脱离培养板。现在我可以换上新的培养板，然后将其放回培养箱。但与此同时，我可以检查到第三天时这里已产下多少枚卵。一个良好的产卵装置每小时应产出 100 至 200 枚卵，且产卵高峰通常出现在黎明至上午晚些时候。为便于收集，可在收集板的螺旋输送器上刻划或凿出划痕，大多数卵将产在划痕处或其附近。让果蝇产卵一至两小时，以便收集晚期胚胎，但具体时间需根据实验需求进行调整。胚胎收集方法将根据实验所需胚胎数量的不同而有所差异。对于解剖和电生理实验，所需胚胎数量相对较少，此时可用精细镊子从培养板上轻轻夹取胚胎。为去除外层卵壳，先用蒸馏水冲洗胚胎，然后将其置于含有新鲜50%至100%次氯酸钠溶液的培养皿中，每次操作均需在解剖显微镜下观察胚胎状态。30 到 120 秒后，卵壳将溶解，暴露出闪亮透明的胚膜。由于次氯酸钠可迅速破坏活体组织，去氯后的卵应短暂漂洗或立即放入生理盐水中。将去氯后的卵置于含有蒸馏水的塑料培养皿中。此时，可通过荧光体视显微镜并配合适当的滤光片观察GFP标记，对样本进行可视化的基因型鉴定；在筛选出目标个体后，继续进行解剖操作。由于胚胎体积过小，无法使用解剖针直接操作，因此需要进行一些前期准备工作。对于已发育出角质层的较晚期胚胎，必须使用氰基丙烯酸酯外科或兽用胶水（即组织胶，histo aal）将其粘附于Sohar包被的盖玻片上。蓝色试剂效果良好，因为它在接触含有二价离子的溶液时会发生聚合。开始解剖时，将感兴趣的胚胎转移至涂有石蜡的盖玻片上，在一滴生理盐水中使其背侧朝上。用玻璃微量移液管或钨针在膜上做一小切口，以去除卵黄膜。然后轻轻地将胚胎从膜上分离。早期胚胎会直接附着在洁净的玻璃或涂有聚-L-赖氨酸的玻璃上。对于较晚期的胚胎，通过连接在橡胶管上的细玻璃移液管滴加外科胶水，将其附着在涂有明胶的盖玻片上。胶水的流量通过嘴部控制。使用少量胶水将头部和尾部牢固粘合。操作时需小心谨慎，因为胶水在生理盐水中会迅速混合。解剖固定好的胚胎时，使用玻璃电极或锋利的钨针沿背侧中线轻轻穿刺出一条线。用同一工具沿穿刺孔切开组织形成切口。解剖针必须始终保持较低的角度，以避免损伤腹侧神经肌肉组织。接下来，使用连接橡胶管的玻璃移液管通过轻柔的口吸去除内脏器官。利用更多的胶水将切口两侧固定在盖玻片上，使胚胎展平。当所有内脏器官被吸除后，腹侧中枢神经系统、周围神经及躯体肌群即暴露出来，可供实验操作。此时，胚胎已准备好进行电生理记录，或者可以固定后用于免疫组织化学及后续的常规显微镜检查。我们刚刚向您展示了如何分离和解剖较晚期至软化期的胚胎。手术胶水的应用以及胚胎的解剖在初期可能会令人感到挫败，但并无任何秘技可言。您需要通过数周的练习来培养精细的运动技能，但成功解剖的比例会逐渐提高。请查看我们的另一段 JoVE 视频，其中详细介绍了从肌肉细胞和运动神经元进行记录的配置方法。就这些。感谢观看，祝您的实验顺利。

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生物学

收获和准备果蝇胚胎的电生理记录和其他程序

本视频展示了从中肠胚期果蝇胚胎制备原代神经元培养物的方法。活细胞培养物的图像显示了接种后1小时的细胞状态，以及在碳酸氢盐为基础的限定培养基中生长2天后的分化神经元。这些神经元具有电兴奋性，并能形成突触连接。...

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电生理记录在 果蝇 胚胎

我们描述了一种用于晚期Drosophila胚胎的固定、包埋、切片及成像方法，以进行胚胎心脏管的透射电子显微镜观察。该技术可实现对心脏管腔以及衬于管腔内壁的基底膜的可视化观察。...

用于胚胎电子显微镜观察的样本制备 黑腹果蝇 胚胎心脏管

此处我们描述一种整体荧光标记方法 原位 杂交（FISH）方案，用于确定果蝇胚胎发育期间表达的RNA的表达与定位特性， 黑腹果蝇.

完整组织 RNA 荧光 原位 杂交检测 Drosophila 胚胎

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中等规模制备 果蝇 用于蛋白质组学实验的胚胎提取物

本研究描述了一种生成高分辨率图像的实验方案 原位 紧密分期的原肠胚形成前Hi-C文库 黑腹果蝇...

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逆行示踪 果蝇 使用亲脂性荧光染料标记胚胎运动神经元

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利用自动化高内涵分析仪进行活细胞显微成像的果蝇胚胎制备与显微注射

肌球蛋白收缩力在细胞和组织形态发生中起着重要作用。然而，调控肌动球蛋白收缩力具有挑战性 体内 急性地。本方案描述了一种光遗传学系统，可快速抑制由 Rho1 介导的肌动球蛋白收缩力 果蝇 胚胎，揭示肌动球蛋白失活后上皮张力的立即丧失 体内.

光遗传学抑制Rho1介导的肌动球蛋白收缩力并结合上皮张力测量 黑腹果蝇 胚胎

学习果蝇胚胎解剖与电生理记录技术，用于神经肌肉发育研究。该方法通过水聚合手术胶固定胚胎，暴露腹侧中枢神经系统和肌肉组织，适用于无法孵化的突变体分析。

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