Name: 帕金森氏病的小鼠模型:从6 - OH多巴胺病变行为测试 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-15T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: 学习通过立体定向手术使用6-OH-多巴胺诱导小鼠帕金森病模型的方法。该实验方案包括阿扑吗啡诱导旋转测试以评估运动损伤，为测试新疗法提供了可靠的神经科学研究工具。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

由里约热内卢州研究资助基金会（FAPERJ）和国家科学技术发展委员会（CNPq）提供支持。我们感谢匿名审稿人的宝贵意见，这些建议帮助我们改进了论文和视频内容。

所有以固体形式储存的化学物质，如6-OHDA和阿扑吗啡，均用无菌注射用水稀释，并在层流罩内过滤，以避免污染。此外，神经毒素和神经活性物质的储存、配制、操作和处置均依照国际指南6和当地生物安全委员会的规定进行。
1 - 麻醉与手术
成年雄性Swiss小鼠（25–30 g）预先皮下注射阿托品（0.2 mg/kg，s.c.）以降低迷走神经张力，随后通过腹腔注射氯胺酮（90–120 mg/kg）和赛拉嗪（10 mg/kg）进行麻醉。将动物置于电子控制的加热垫（Insight）上，以确保在麻醉诱导期间（需数分钟）维持体温在37°C。在整个操作过程中，通过检测是否缺失缩足反射来评估麻醉深度。不同品系或种群的小鼠应调整麻醉剂量。根据动物个体及手术持续时间，可能需要追加氯胺酮剂量。随后，在双眼表面滴加生理盐水（0.9% NaCl），防止角膜干燥，并在此阶段初步检测眨眼反射是否消失。使用剃毛器剃除整个头部的毛发，以尽量减少与非无菌区域的接触。在耳杆部位涂抹局部麻醉剂（利多卡因）以防止不适。只有当缩足反射和眨眼反射均消失，表明麻醉深度已达到适合手术的水平（第3阶段）时，才将动物固定于立体定位仪上，使用专为此物种设计的咬合板和耳杆（Insight）。固定后，涂抹眼用软膏（MARCA）以在整个手术过程中保护动物眼睛。确认眼睛已得到妥善保护后，开始对术区皮肤进行消毒：使用无菌棉签重复三次涂抹聚维酮碘，随后使用70%乙醇，每次均用无菌棉签操作。之后，通过测试头部侧向移动来确认耳杆是否正确固定（头部不应移动，以确保耳杆牢固固定）。头部的背腹向倾斜角度将在暴露颅骨标志后进一步验证。使用无菌手术刀（#15刀片）做矢状切口（1.5 cm）。用新刀片轻柔刮除目标区域的骨膜，并用无菌纱布和棉签擦拭骨骼，以暴露颅骨标志：前囟（bregma）定义为矢状缝与冠状缝的交点，后囟（lambda）定义为矢状缝与穿过左右鳞状缝后部最佳拟合线的交点。在手术显微镜下，将垂直对准的参考针尖首先在前囟处归零，然后移动至接触后囟点。若头部位置正确，后囟应与前囟处于相同的背腹水平，且两个标志点在前后轴上相距4.2 mm。若不符合此标准，应松开耳杆和鼻夹，沿双耳连线轴轻柔倾斜头部，直至达到理想位置，此位置即定义为立体定位测量的“平颅”参考。随后将参考针尖移至目标坐标：前后向（AP +0.5 mm）和外侧向（L -2.0 mm，左侧）。在颅骨上标记该位置，并使用灭菌钻头以间歇方式钻出一个小孔（直径1.2 mm），避免局部过热。用牙科刮匙小心清除骨碎片，并用无菌温热的0.9% NaCl冲洗。将灭菌的5 μl Hamilton注射器（26s规格；外径0.47 mm）装入6-OHDA溶液（对照组动物使用溶剂），并在立体定位仪中垂直对准。将针尖（类型2或12°斜面）插入钻孔，直至接触软脑膜表面，以确定背腹向坐标的参考点。确定该坐标后，缓慢下放针头至纹状体目标坐标（AP: +0.5 mm；L: -2.0 mm；DV: -3.0 mm，位于软脑膜表面以下7）。6-OHDA溶液（含10 μg 6-OHDA的0.9% NaCl溶液，含0.02%抗坏血酸）在超净工作台中配制并过滤，操作全程需用铝箔避光。溶液以0.1 μL/min的流速注射。对照组动物注射等体积的溶剂（含0.02%抗坏血酸和0.9% NaCl的无菌水）。待2.0 μL溶液完全注入后，注射器在原位保留5分钟，随后极其缓慢地从脑组织中撤出，撤出时间不少于5分钟。清理颅骨，使用#6-0尼龙缝线（Shalon）缝合切口。为加强感染预防，可在缝合皮肤处涂抹局部抗生素软膏（如新霉素）。手术完成后，将动物从立体定位仪上取下，皮下注射0.5 mL生理盐水以防止脱水，并保持温暖且密切观察直至完全苏醒。随后将动物置于自由饮水和进食的环境中。术后前两天在饮水中添加镇痛药（按平均每日饮水量5.5 mL、推荐剂量为0.03 mg布洛芬/g体重/天计算；将0.82 mL的20 mg/mL布洛芬-雅培混悬液加入100 mL饮用水中）。小鼠通常能迅速恢复，可自如走动并取食饮水颗粒。若出现明显不适或任何感染迹象，应依据当地指南实施安乐死。
2 - 行为学测试
尽管在损伤后一周即可观察到运动功能障碍，但为确保旋转测试结果的可靠量化，需在损伤后间隔一个月再进行测试。动物接受皮下注射多巴胺受体激动剂阿扑吗啡（0.5 mg/kg），随后置于直径为30 cm的不透明圆筒内，圆筒位于摄像机下方45 cm处。每次测试前，必须清除之前测试动物留下的任何残留物和气味。经过5分钟的适应期后，记录接下来5分钟内的运动情况。分别测量对侧和同侧的全身旋转次数，并与对照组（注射溶剂）进行比较。若操作正确，对照组动物不会出现旋转行为，而6-羟基多巴胺（6-OHDA）损毁动物则会开始向对侧旋转，因为该激动剂主要激活损伤侧去神经支配后出现超敏反应的纹状体。旋转速度超过7 rpm（即每分钟至少完成7次对侧全身旋转）的动物被视为损毁成功。测试结束后30分钟，动物可安全返回饲养笼，该测试可每周重复进行。据我们观察，少于5%的损毁小鼠表现出旋转速率不理想的情况。

<ol><li>Ungerstedt, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((6-hydroxy-dopamine+induced+degeneration+of+central+monoamine+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">6-hydroxy-dopamine induced degeneration of central monoamine neurons.</a> Eur. J. Pharmacol. 5, 107-110 (1968).</li>
<li>Akerud, P., Canals, J. M., Snyder, E. Y., Arenas, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroprotection+through+delivery+of+glial+cell+line-derived+neurotrophic+factor+by+neural+stem+cells+in+a+mouse+model+of+Parkinson%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuroprotection through delivery of glial cell line-derived neurotrophic factor by neural stem cells in a mouse model of Parkinson's Disease.</a> J. Neurosci. 21, 8108-8118 (2001).</li>
<li>Ghosh, A., Roy, A., Liu, X., Kordower, J. H., Mufson, E. J., Hartley, D. M., Ghosh, S., Mosley, R. L., Gendelman, H. E., Pahan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+inhibition+of+NF-kappaB+activation+prevents+dopaminergic+neuronal+loss+in+a+mouse+model+of+Parkinson%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Selective inhibition of NF-kappaB activation prevents dopaminergic neuronal loss in a mouse model of Parkinson's Disease.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104, 18754-18759 (2007).</li>
<li>Alvarez-Fischer, D., Henze, C., Strenzke, C., Westrich, J., Ferger, B., Höglinger, G. U., Oertel, W. H., Hartmann, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+striatal+6-OHDA+model+of+Parkinson%27s+disease+in+wild+type+and+a-synuclein-deleted+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Characterization of the striatal 6-OHDA model of Parkinson's disease in wild type and a-synuclein-deleted mice.</a> Exp. Neurol. 210, 182-193 (2008).</li>
<li>Ungerstedt, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((6-Hydroxydopamine-induced+degeneration+of+the+nigrostriatal+dopamine+pathway%3A+The+turning+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+and+Therapeutics+Part+B%3A+General+and+Systematic+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">6-Hydroxydopamine-induced degeneration of the nigrostriatal dopamine pathway: The turning syndrome.</a> Pharmacology and Therapeutics Part B: General and Systematic Pharmacology. 2, 37-40 (1976).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guidelines+for+the+Care+and+Use+of+Mammals+in+Neuroscience+and+Behaviour+Research%22">Guidelines for the Care and Use of Mammals in Neuroscience and Behaviour Research</a>. , National Academies Press. Comissão de Biosegurança, CCS-UFRJ. 209 (2003).</li>
<li>Franklin, K. B. J., Paxinos, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFranklin%2C+KBJ+%22The+Mouse+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. (1997).</li>
<li>Hudson, J. L., Horne, C. G. van, Strömberg, I., Brock, S., Clayton, J., Masserano, J., Hoffer, B. J., Gerhardt, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+apomorphine-+and+amphetamine-induced+turning+with+nigrostriatal+dopamine+content+in+unilateral+6-hydroxydopamine+lesioned+rats.+Brain+Res%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Correlation of apomorphine- and amphetamine-induced turning with nigrostriatal dopamine content in unilateral 6-hydroxydopamine lesioned rats. Brain Res.</a> , 626-6167 (1993).</li>
<li>Truong, L., Allbutt, H., Kassiou, M., Henderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developing+a+preclinical+model+of+Parkinson%27s+disease%3A+A+study+of+behaviour+in+rats+with+graded+6-OHDA+lesions%5BTitle%5D)+AND+%22Behav.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Developing a preclinical model of Parkinson's disease: A study of behaviour in rats with graded 6-OHDA lesions.</a> Behav. Brain Res. 169, 1-9 (2006).</li>
<li>Harvey, B. K., Wang, Y., Hoffer, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+rodent+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neurochir.+%28Wien.%29%22%5BJournal%5D)">Transgenic rodent models of Parkinson's disease.</a> Acta Neurochir. (Wien.). 101, 89-92 (2008).</li>
<li>Isacson, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ole+Isacson%3A+Development+of+New+Therapies+for+Parkinson%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Ole Isacson: Development of New Therapies for Parkinson's Disease.</a> JoVE. 3, (2007).</li>
</ol>

实验均按照《神经科学与行为研究中哺乳动物护理与使用的国际指南》进行。6，经机构动物护理和使用委员会（Comissão de Avaliação de Uso de Animais em Pesquisa：UFRJ/CAUAP 协议编号 #DAHEICB 027）批准后进行。已采取充分措施以尽量减少实验动物的疼痛与不适。

通过单侧立体定位法向纹状体注射6-OHDA，可在小鼠中可靠地造成黑质-纹状体通路的广泛单侧损伤。可通过酪氨酸羟化酶的免疫组织化学染色在死后验证损伤程度（酪氨酸羟化酶催化多巴胺合成的限速步骤，即L-酪氨酸转化为二羟基苯丙氨酸），视频中对此进行了说明。
在体内，阿扑吗啡诱导的对侧旋转比苯丙胺诱导的同侧旋转更能准确预测纹状体最大损伤程度8。因此，可通过简单测量阿扑吗啡诱导的对侧旋转来长期监测损伤后的功能变化，观察期可长达数月。
成功率约为95%。这一数值显著高于通常报道的大鼠实验结果（50–70%），因为在大鼠中，要实现广泛的多巴胺能神经元耗竭需要多次注射神经毒素，从而增加了死亡率。在小鼠实验中，应通过选择体重相近的动物并仅使用新鲜配制的6-OHDA溶液来标准化实验条件。尽管其他研究团队可能使用不同浓度和/或体积的神经毒素，但我们发现，2 ml浓度为5 mg/ml的6-OHDA生理盐水溶液（含0.02%抗坏血酸以防止氧化）对产生最大程度的损毁最为有效。 alternatively，亚最大剂量的注射可能有助于...

<table><tbody><tr><td>盐酸氯胺酮</td><td>K&amp;#246;nig</td><td></td><td>90-120 mg/Kg</td></tr><tr><td>盐酸赛拉嗪</td><td>K&amp;#246;nig</td><td></td><td>10 mg/Kg</td></tr><tr><td>硫酸阿托品</td><td>Isofarma</td><td></td><td>Isofarma</td></tr><tr><td>6 &amp;#8211; 羟基多巴胺盐酸盐</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>5 &amp;#x03BC;g/&amp;#x03BC;L</td></tr><tr><td>L-抗坏血酸</td><td>USB Corp., Affymetrix</td><td></td><td>0.2%</td></tr><tr><td>利多卡因（盐酸利多卡因）</td><td>AstraZeneca</td><td></td><td>5%&lt;br/&gt;50 mg</td></tr><tr><td>Nebacetin（硫酸新霉素 + 杆菌肽）</td><td>Altana Pharma</td><td></td><td>5 mg/g + 250 Ul/g</td></tr><tr><td>R-(-)-阿扑吗啡盐酸盐</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>0.5 mg/Kg</td></tr><tr><td>GenTeal 眼用软膏（羟丙甲纤维素）</td><td>Novartis AG</td><td></td><td>&lt;br/&gt;0.33%</td></tr><tr><td>布洛芬</td><td>Abbott Laboratories</td><td></td><td>4 mg/100 ml 饮用水</td></tr><tr><td>聚维酮碘</td><td>Johnson Diversey</td><td></td><td></td></tr><tr><td>R-(-)-阿扑吗啡盐酸盐</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>0.5 mg/Kg</td></tr></tbody></table>

帕金森病小鼠模型：从6-羟多巴胺损毁到行为学检测

Murine Model for Parkinson's Disease: from 6-OH Dopamine Lesion to Behavioral Test

帕金森病（PD）影响全球至少650万人，不受性别、社会、种族、经济或地理界限的限制。当黑质中的多巴胺能细胞丢失约四分之三，无法维持纹状体运动回路的平滑协调调节时，便会逐渐出现震颤、僵直和运动迟缓等主要症状。抑郁和幻觉较为常见，最终有20%的患者会发展为痴呆。目前尚无能够延缓或阻止帕金森病进展的治疗方法，现有药物主要旨在缓解这些症状。新的外科策略可能通过深部脑结构的电刺激，可逆地恢复功能受损回路的活动；尽管深部脑刺激是一项重大进展，但并不适用于所有患者。因此，仍有必要在临床前模型中测试新的细胞治疗策略。
选择性破坏多巴胺能通路的神经毒性效应可通过注射6-羟基多巴胺（6-OHDA）或MPTP（1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶）来复制，而耗竭类药物及氧化损伤性化学物质也可在啮齿类动物中复制帕金森病（PD）的某些特定特征。与MPTP不同，6-OHDA造成的损毁会导致大量不可逆的神经元丢失，且可表现为单侧或双侧损伤。6-OHDA损毁模型具有可靠性高、可引发显著运动功能缺陷的优点，是大鼠研究中经过40年验证后应用最广泛的模型1。由于目前在小鼠中比在大鼠中更便于深入研究移植物细胞与宿主之间的相互作用，该模型已被成功移植至小鼠2,3，最近已对此进行了表征4.
在本视频中，我们演示了如何通过立体定位插入的微量注射器针头缓慢注入 2.0 μL 的 6-OHDA，以损毁麻醉小鼠的左侧黑质-纹状体通路。多巴胺能输入的丧失在数天内发生，术后数周至数月可通过评估多巴胺能药物诱导的动物旋转行为来监测功能损伤5。此处展示的是损毁一个月后，单次皮下注射阿扑吗啡 10 分钟时记录到的全身对侧旋转行为。结果与局限性将在下文讨论。

帕金森病是由于纹状体的多巴胺能神经支配丧失所致，可通过6-羟基多巴胺在实验中诱导产生。本文描述了如何在小鼠中进行立体定位损毁以及如何监测阿朴吗啡诱导的旋转行为。该模型对于测试帕金森病的新疗法具有良好的实用性和可靠性。

帕金森病（Parkinson's disease, PD）影响着全球至少650万人，不受性别、社会、种族、经济或地理界限的限制。关键……

大家好，我是Fab sva，来自赫尼科联邦大学生物医学科学实验室的一名毕业学生。在本视频中，我将进行立体定位手术，注射六羟基多巴胺神经毒素以诱导小鼠脑部损伤，建立帕金森病研究的关键动物模型。我还将展示如何通过上肢吗啡诱导旋转实验来评估运动功能障碍的程度。材料与仪器：开始操作前，必须佩戴手套并穿上适当的防护服。打开加热垫，并将其温度设置为37摄氏度。确保立体定位仪的所有部件以及所需材料和器械均已清洁并灭菌，所有可能需要保温的凝胶和溶液（如麻醉剂和无菌生理盐水）也应提前准备好。对于以无水形式保存的试剂，例如6-羟多巴胺（six hydroxy dopamine）和阿扑吗啡（apo-morphine），应使用无菌注射用水稀释，并在层流罩中进行过滤。对动物实施麻醉并完成术前准备。称重动物，并计算通过腹腔注射给予的镇静剂用量，同时使动物进入镇静状态。将动物置于加热垫上以维持体温，并通过剃毛去除毛发。在立体定位仪的耳杆上涂抹局部麻醉剂（如利多卡因），以防止动物遭受痛苦及术后不适。通过测试后肢的回缩反射来确认动物已得到适当的镇静。只有在此之后，才可将动物小心地放置在立体定位仪上。将上门齿插入咬齿器中，然后将其夹紧。接下来轻轻插入耳杆，将耳杆居中，并检查颅骨是否已正确固定。为此，可尝试上下和左右移动头部。如果颅骨放置正确，则不应发生移动。滴加一滴眼用溶液至眼睛，以防止角膜干燥。进行立体定向手术时，先用聚维酮碘对皮肤进行消毒，随后使用70%乙醇。重复整个过程三次。通过测试动物的回缩反射再次确认其处于良好镇静状态。使用无菌手术刀做一个1.5厘米的矢状切口，然后使用新刀片刮除骨膜。为暴露颅缝，请定位人字缝（lambda）和前囟（bregma）。如果动物位置正确，这两个参考点应处于相同的垂直水平，且在头端方向相距4.2毫米。否则，应调整鼻夹的角度。接下来，调节已灭菌的Hamilton针针尖，使其几乎接触bgma。注意该参考点的前、后以及内侧-外侧坐标。抬起针头，并将其移至所需位置，在此情况下为前囟前0.5毫米、外侧2.0毫米处，即向左半球方向。在颅骨上标记此点，然后完全抬起Hamilton针头，开始钻孔。钻孔时须采用间歇操作，以防止产热。钻孔完成后，使用温热的生理盐水和无菌棉签清除骨残留物。用牙科刮匙小心取出任何骨颗粒，并再次使用温热的生理盐水和棉签进一步清洁该区域。根据需要重复挑取和拭子操作，以清除该区域的所有松散颗粒。检查六羟基多巴胺溶液是否澄清。如果溶液呈现黄褐色，则应弃去，并重新配制一份，用于总量为10 µg的注射。用浓度为每微升5微克的溶液向汉密尔顿注射器中加入2微升。同时请注意，一旦汉密尔顿注射器中装入了6-羟基多巴胺，应立即用铝箔包裹注射器，以防止溶液氧化。在观察显微镜下，将针尖置于硬脑膜上，并读取背腹向参考值。然后缓慢将哈密尔顿注射器插入脑组织。当到达皮层表面下方

murine-model-for-parkinson-s-disease-from-6-oh-dopamine-lesion-to

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

帕金森氏病的小鼠模型：从6 - OH多巴胺病变行为测试

本文描述了一种在小鼠中进行单侧内侧前脑束6-羟基多巴胺（6-OHDA）损毁的实验方案。该方法死亡率较低（13.3%），存活小鼠中有89%表现出纹状体多巴胺含量减少&gt;95%，且对侧旋转偏差达90.63±4.02%，偏向损毁侧。...

帕金森病单侧损毁6-OHDA小鼠模型的建立

本视频演示了通过向大鼠脑内注射神经毒素6-羟基多巴胺（6-OHDA）来建立帕金森病动物模型的操作步骤。将神经毒素注入内侧前脑束（MFB）可特异性地靶向控制运动功能的多巴胺能神经元，导致这些神经元被破坏，从而模拟帕金森病的症状。...

建立帕金森病的6-羟基多巴胺大鼠模型

在帕金森病及一般的运动障碍疾病中，敏感且可靠的动物行为学检测方法对于评估新型潜在治疗手段至关重要。本文介绍了一套适用于小鼠的可操作性感觉运动功能测试组合，该测试组合对黑质纹状体系统的不同程度损伤具有不同程度的敏感性，可用于临床前研究。...

帕金森病小鼠模型中感觉运动功能的评估

我们描述了使用MPTP建立帕金森病小鼠模型的方法，并通过圆筒实验和开放旷场实验进行行为学评估，以测量运动功能。随后，我们以左旋多巴（L-DOPA）为例，展示如何应用该模型研究帕金森病药物。...

小鼠MPTP诱导帕金森病模型中自发运动行为评估

本文介绍了RatWalker系统，该系统通过重新设计MouseWalker装置，以适应大鼠更大的体型和体重。该系统采用全内反射失配（FTIR）技术、高速视频采集以及开源分析软件，用于追踪并量化步态参数。...

应用 RatWalker 系统对帕金森病遗传性大鼠模型进行步态分析

6-羟基多巴胺（6-OHDA）模型已被使用数十年，以促进对帕金森病的理解。在本方案中，我们演示如何通过在内侧前脑束注射6-OHDA，在大鼠中建立单侧黑质纹状体损伤，评估运动功能缺陷，并利用步态测试预测损伤程度。...

帕金森病的6-羟基多巴胺大鼠模型

L-多巴诱导的运动障碍啮齿类动物模型是识别治疗干预措施以减轻或缓解因反复给予L-多巴而引发的运动障碍发生与表现的宝贵工具。本方案展示了如何在单侧6-羟基多巴胺（6-OHDA）损毁的帕金森病大鼠模型中诱导并分析类似运动障碍的动作。...

评估帕金森病单侧6-OHDA损毁大鼠模型中L-DOPA诱导的运动障碍

本文介绍了一种在帕金森病大鼠模型中诱导和评估左旋多巴诱导的运动障碍的方法。该方案提供了关于多种运动障碍行为（包括肌张力障碍和多动性运动障碍）的强度和频率的详细信息，为针对这一尚未满足的医疗需求的治疗手段提供了可靠的测试工具。...

帕金森病大鼠模型中左旋多巴诱导异动症的诱导与评估

本实验方案描述了在腹侧间脑（Dn）区域对成年斑马鱼进行脑室内（ICV）注射神经毒素6-羟基多巴胺（6-OHDA），并利用敞口水箱实验评估损毁后游泳行为的损伤及后续恢复情况，同时结合视频追踪软件进行分析。...

6-羟基多巴胺诱导的成年斑马鱼帕金森病模型的运动功能评估

为了研究禾谷镰刀菌子囊孢子的发育过程，本实验拍摄了在无菌条件下收集子囊孢子的操作流程，以期为实验方案的描述提供尽可能详尽的信息。这将有助于提高实验的可重复性，尤其是在进行全基因组表达谱检测时，这一点至关重要。...

玉米赤霉菌子囊孢子的产生与收集用于微阵列实验

学习通过立体定向手术使用6-OH-多巴胺诱导小鼠帕金森病模型的方法。该实验方案包括阿扑吗啡诱导旋转测试以评估运动损伤，为测试新疗法提供了可靠的神经科学研究工具。

帕金森病小鼠模型：从6-羟多巴胺损毁到行为学检测

探索更多视频