2007年2月25日
好的。大家好,我叫Celeste Peterson,是哈佛大学的一名研究员,研究方向是微生物生物膜群落。我通过分析细菌群落的16S rRNA序列,来研究这些序列在时空变化中的动态特征。为此,我采用了变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术。
这并非我所在井的正常情况,运行时需保持在60°C,且缓冲液需持续泵送。因此,我们将缓冲液预热约一小时,直至达到60°C,然后便可运行该装置。现在,我将用稀释的uc溶液清洗此板,以去除杂质,并进行光照处理。
任何类似的情况都可能导致出现规律性条带。彻底擦去所有水分非常重要。因此,当我组装凝胶时,会将该芯片放在凝胶的外侧。
因此,凝胶将位于这两片玻璃之间,而芯片位于外侧,不会影响到中间的凝胶。现在我将把凝胶组装到这些夹具中,然后将其压紧,并通过向右旋转来固定。与任何凝胶一样,确保底部平齐非常重要。
为防止产生气泡,现在我们将凝胶翻转并放入此处,使其与垫圈密封。因此,在操作时需确保凝胶的玻璃板与此处的垫圈完全对齐。侧边的卡扣随后插入,并向下按压以完成密封。
这是一个30毫升的注射器。这部分和这部分随Bio-Rad试剂盒提供,只需如此安装即可。其作用是去除管中的多余水分。
因此,将导管连接到凝胶上以加样。首先,将一个接头插入导管中,然后连接带有该小型接头的针头,并将其准确置于凝胶的正中心位置,确保其位于底部玻璃板稍下方。接着,此导线接头将插入长导管中,并连接两个分别装有高密度和低密度溶液的等体积注射器。
这些是预先配制好的溶液。蓝色溶液中,我加入了一种染料,用于指示这是变性程度最高的溶液,而这个低密度溶液则是变性程度最低的溶液。这些溶液中已包含所有所需成分。
现在我将开始制备,实际上我要制备的量是原来的两倍。一旦混合完成,你大约有五分钟到七分钟的时间在凝胶上升之前完成灌胶。现在我们用该溶液填充注射器中的胶液。
因此,我将加入约15的溶液。然后,为了去除任何气泡,我会将容器倒置并轻轻挤压,直到顶部的气泡消失。现在,这个小螺丝将插入这个凹槽中。
该适配器将与此处的夹具对齐,并用C型夹紧密固定。然后将这段管路连接到注射器上。另一侧的高密度基质在需要递送时也以相同方式操作。
因此,我将平稳地顺时针转动这个旋钮。首先,蓝色溶液会先流出,因为它的密度较大,将形成凝胶的底层部分。随后一段时间,透明溶液将开始填充凝胶,从而形成梯度。
片刻之后,将凝胶轻轻倾斜一定角度,一旦倒完凝胶,立即冲洗试管,因为凝胶会迅速聚合。就是这个小组在这里。然后按压下去。这个小的,另一侧也进行同样的操作。好的。
大家好,我叫Celeste Peterson,是哈佛大学的一名研究员,研究方向是微生物群落。我通过分析细菌的16S rRNA基因序列,来研究这些序列在时间和空间上的变化情况,从而对细菌群落进行特征分析。为此,我采用了变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术。
因此,DGE 指的是变性梯度凝胶电泳(denaturing gradient gel electrophoresis)。其基本原理是,在凝胶中存在一个变性剂梯度,DNA 在电泳迁移过程中会逐渐发生变性。不同的 16S 物种将在梯度的不同位置停止迁移。
因此,它最终成为群落中不同硅藻物种的“指纹”。我的实验目标是确定群落中存在哪些物种,以及它们在时间和空间上的变化情况。我可以运行硅藻 DDD 凝胶电泳,然后切下条带,鉴定每个群落中所代表的物种。
因此,在进行A DDG凝胶实验时,最大的问题之一就是确定最佳的梯度。对于特定的研究体系,需要通过反复试验来摸索最适合的梯度类型。我今天使用的梯度为35%至55%的尿素。
该技术可能出现的一个主要问题是,在电泳图谱的稀疏区域会出现拖尾现象。我发现,无论出于何种原因,解决这一问题的最佳方法之一是将凝胶电泳运行较长时间,随后拖尾现象便会消失。目前我仅将其用于一般的细菌群落分析,但该方法也可用于特定细菌类群,以观察其随时间的变化情况,而这类分析通常能获得非常清晰的电泳图谱。
您还可以使用DDGE检测单个基因中的突变。
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本研究通过分析16S rRNA序列,重点研究微生物生物膜群落中的细菌群落组成。该研究采用一种专门技术,考察这些序列在时间和空间上的变化情况。
变性梯度凝胶电泳(Denaturing Gradient Gel Electrophoresis, DGGE)通过基于序列依赖性熔解行为分离16S rRNA基因变异体,实现对微生物群落结构的高分辨率分析。该方法可通过提供生物膜及其他与疾病相关体系中细菌种群的可重复遗传指纹图谱,支持抗菌药物发现中的靶点验证。该技术通过将群落结构变化与功能表型相关联,有助于机制层面的风险评估,为调节微生物组的治疗药物的先导化合物筛选策略提供依据。
DGGE 适用于从早期靶点识别到先导化合物优化的整个发现过程,特别是在群落水平效应至关重要的抗菌和靶向微生物组治疗领域。