Name: 脊髓电 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: 学习新生小鼠脊髓分离与电生理记录技术，通过腹侧椎板切除术分离脊髓并连接电极记录神经活动。该方法适用于神经科学研究中的神经信号检测。

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Samuel L. Pfaff 是索尔克生物研究所基因表达实验室的教授，同时也是霍华德·休斯医学研究所的研究员。本工作由克里斯托弗和丹娜·里夫基金会资助。索尔克研究所多媒体资源部门的 Joe Belcovson、Kent Schnoeker 和 Mike Sullivan 在摄影和编辑方面提供了协助。

1. 准备人工脑脊液（aCSF）1。首先制备2 L不含镁和钙的10倍浓度aCSF储备液。试剂浓度以毫摩尔（mmol）列出。目录号参考Sigma/Aldrich公司。
<table border="1" cellpadding="0">
<tbody>
<tr><td colspan="4">2 升 10X aCSF（不含 Mg 或 Ca）</td></tr>
<tr><td>试剂</td><td>毫摩尔（mM）</td><td>克/2升（g/2L）</td><td>货号</td></tr>
<tr><td>KCl</td><td>40</td><td>5.96</td><td>P-9333</td></tr>
<tr><td>NaCl</td><td>1280</td><td>149.61</td><td>S-7653</td></tr>
<tr><td>NaHCO3</td><td>210</td><td>35.28</td><td>S-6297</td></tr>
<tr><td>NaH2PO4</td><td>5</td><td>1.38</td><td>S-9638</td></tr>
<tr><td>葡萄糖</td><td>300</td><td>108.12</td><td>D-9434</td></tr>
<tr><td colspan="4">加蒸馏水至 2L</td></tr>
</tbody>
</table>
我们还将在50 mL水中配制1 M的MgSO4和CaCl2溶液，以便在不同实验之间调整摩尔浓度，并确保钙保持在溶液中。
<table border="1" cellpadding="0">
<tbody>
<tr><td colspan="4">1M 钙和镁储备液</td></tr>
<tr><td>试剂</td><td>M</td><td>g/50mL</td><td>货号</td></tr>
<tr><td>CaCl2</td><td>1</td><td>7.35</td><td>C-5080</td></tr>
<tr><td>MgSO4</td><td>1</td><td>12.33</td><td>M-5921</td></tr>
</tbody>
</table>
aCSF 溶液在添加钙之前必须用碳酰气（95% O2 / 5% CO2）充气以降低 pH，否则钙会发生沉淀。 
<table border="1" cellpadding="0">
<tbody>
<tr><td colspan="2">1 升 aCSF</td></tr>
<tr><td>试剂</td><td>体积</td></tr>
<tr><td>10X aCSF</td><td>100 mL</td></tr>
<tr><td>1M CaCl2</td><td>1 mL（用于解剖）或 2 mL（用于记录）</td></tr>
<tr><td>1M MgSO4</td><td>1 mL</td></tr>
<tr><td colspan="2">加入约 800 mL 蒸馏水，加入钙之前用碳氧混合气（carbogen）通气 2 分钟</td></tr>
<tr><td colspan="2">用蒸馏水定容至 1 L。</td></tr>
</tbody>
</table>
使用前后应冲洗泵、管路和解剖皿。
解剖
解剖过程中，应持续用含碳氧混合气体的含1 mM钙的aCSF溶液进行充气。aCSF溶液可通过虹吸管从瓶中流入解剖皿，并从解剖皿泵回瓶中或排入废液。我们使用经弹性体（Sylgard，Dow Corning）包被的培养皿进行解剖操作。
用锋利的剪刀迅速将新生小鼠断头，并用剪刀沿腹侧胸部和腹部做一切口。然后去除内脏。将去内脏的小鼠用 aCSF 冲洗。随后用昆虫针穿过前肢及尾部基部，将小鼠固定在解剖皿中。
通过进行腹侧椎板切除术来移除脊柱。用小镊子夹住脊柱，将小剪刀的一侧刀片插入骨性脊柱后方紧邻处。在轻轻抬起骨性脊柱的同时，依次切断一侧和另一侧的椎板。沿脊柱全长重复此操作。
通过沿脊髓两侧切断脊神经根并剪开包绕脊髓的脑脊膜来取出脊髓。我们先在左右两侧进行切割，然后剪开附着在脊髓背侧的脑脊膜以游离脊髓。若需继续解剖其他动物，可将分离出的脊髓固定在灌流液（aCSF）入口附近的培养皿中，以确保充分供氧。
使用小勺或刮匙将分离的脊髓转移至记录用培养皿中。此处用含氧的2 mM钙aCSF灌注标本。将脊髓固定在涂有弹性体的培养皿中，并使用显微操作器将细胞外全根吸电极移至神经根附近。当电极尖端接近游离的神经根末端时，施加轻柔的负压，使神经根吸入吸电极内。此过程可重复进行，以同时记录多个神经根的信号。
<img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig1.jpg" alt="对称性概念图，展示生物体中的辐射对称和两侧对称。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 图 1. 切头与去内脏。 A. 用锋利的剪刀迅速将小鼠头部切除。根据切割位置的高低，可保留不同程度的脑干组织。B. 将剪刀的一侧刀片插入切头后形成的胸腔开口处，打开腹侧胸腔和腹腔直至尾部基底。取出内脏并用 aCSF 冲洗。
<img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig2.jpg" alt="脊柱和脊髓解剖图示；腹侧根、背根神经节、脊髓板层标注清晰。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 图 2. 脊柱的移除。 A. 将剪刀的左刀片插入脊柱与脊髓之间，位于脊髓右侧，剪断脊髓腹侧的骨骼；随后将剪刀的右刀片插入脊柱与脊髓之间，位于脊髓左侧，进行剪切。B. 在轻柔牵拉脊柱的同时重复此操作。操作时应保持剪刀角度较低，避免刺破脊髓。
<img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig3.jpg" alt="脊髓背根神经节示意图，显示腹侧根和肋骨位置。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 图3. 脊髓的取出。 A. 将剪刀的左 blade 插入脊髓与脊髓右侧骨骼之间的间隙，剪断位于脊髓外侧的脊神经根和脑膜。然后将剪刀的右 blade 插入脊髓与脊髓左侧骨骼之间的间隙，剪断位于脊髓外侧的脊神经根和脑膜。B. 最后，轻轻抬起脊髓头端，剪断连接脊髓背侧与椎板的脑膜。操作时务必保持剪刀角度较低，避免刺破脊髓。不要在过于靠近脊髓的位置切断神经根。

<ol><li>Myers, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+input+is+required+during+embryonic+development+to+mediate+proper+assembly+of+spinal+locomotor+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits.</a> Neuron. 46, 37-49 (2005).</li>
<li>Goulding, M., Pfaff, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+circuits+that+generate+simple+rhythmic+behaviors+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Development of circuits that generate simple rhythmic behaviors in vertebrates.</a> Curr Opin Neurobiol. 15 (1), 14-20 (2005).</li>
<li>Gallarda, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+axial+motor+and+sensory+pathways+via+heterotypic+trans-axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling.</a> Science. 320, (2008).</li>
<li>Gosgnach, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((V1+spinal+neurons+regulate+the+speed+of+vertebrate+locomotor+outputs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">V1 spinal neurons regulate the speed of vertebrate locomotor outputs.</a> Nature. 440 (7081), 215-219 (2006).</li>
<li>Lanuza, G. M., Gosgnach, S., Pierani, A., Jessell, T. M., Goulding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+identification+of+spinal+interneurons+that+coordinate+left-right+locomotor+activity+necessary+for+walking+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic identification of spinal interneurons that coordinate left-right locomotor activity necessary for walking movements.</a> Neuron. 42 (3), 375-386 (2004).</li>
<li>Jiang, Z., Carlin, K. P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+functionally+mature+mouse+spinal+cord+preparation+for+the+study+of+spinal+motor+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">An in vitro functionally mature mouse spinal cord preparation for the study of spinal motor networks.</a> Brain Res. 816 (2), 493-499 (1999).</li>
<li>Ziskind-Conhaim, L., Gao, B. X., Hinckley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+dual+modulatory+actions+on+spontaneous+postsynaptic+currents+in+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Ethanol dual modulatory actions on spontaneous postsynaptic currents in spinal motoneurons.</a> J Neurophysiol. 89 (2), 806-813 (2003).</li>
<li>Tabak, J., Rinzel, J., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+activity-dependent+network+depression+in+the+expression+and+self-regulation+of+spontaneous+activity+in+the+developing+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of activity-dependent network depression in the expression and self-regulation of spontaneous activity in the developing spinal cord.</a> J Neurosci. 21 (22), 8966-8978 (2001).</li>
<li>Chub, N., Mentis, G. Z., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride-sensitive+MEQ+fluorescence+in+chick+embryo+motoneurons+following+manipulations+of+chloride+and+during+spontaneous+network+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chloride-sensitive MEQ fluorescence in chick embryo motoneurons following manipulations of chloride and during spontaneous network activity.</a> J Neurophysiol. 95 (1), 323-330 (2006).</li>
</ol>

动物护理 
 
动物实验均依照索尔克生物研究所 AIACUC 制定的指南与规定进行。

分离的新生脊髓为研究神经系统发育提供了一种可行的方法1,2。在新生啮齿类动物腰段脊髓中，中枢模式发生器回路可在神经递质存在的情况下产生拟态行走活动。这种拟态行走表现为节律性活动增强，即频率为0.2至0.5 Hz的簇状放电。这些放电活动在脊髓纵向上呈现左右交替模式，并在同侧L2与L5节段之间形成屈肌-伸肌交替放电。已有研究表明，多种小鼠基因突变可导致行为异常3-5。阐明脊髓神经回路在发育过程及遗传干扰下的改变机制，将有助于推动对中枢神经系统其他部位神经回路的研究。 
值得注意的是，目前有几种常规使用的标准 aCSF 溶液。以下是常用 aCSF 配方的对照表。
表1：常用aCSF配方
<table border="1" cellspacing="0">
 <tbody>
 <tr>
 <td>实验室</td>
 <td>aCSF（人工脑脊液）成分（单位：mM）</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Pfaff, O’D...

<table><tbody><tr><td>KCl</td><td></td><td>P-9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td>S-7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-6297</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-9638</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖</td><td></td><td>D-9434</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>C-5080</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>M-5921</td><td></td></tr><tr><td>大型剪刀</td><td>Fine Science Tools</td><td>14070-12</td><td></td></tr><tr><td>镊子</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>精细剪刀</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>昆虫针</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 (Dow-Corning)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1L 容量瓶</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100mL 容量瓶</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

脊髓电生理学

Spinal Cord Electrophysiology

新生小鼠脊髓是研究神经回路发育和运动功能的模型。我们演示了用于运动研究的脊髓分离技术以及记录浴液人工脑脊液的制备方法。脊髓分离后，可将腹侧神经根连接至记录电极，以记录腰段脊髓内中枢节律生成电路的电生理信号。

用于电生理研究的新生小鼠脊髓分离示例。

新生小鼠脊髓是研究神经回路发育和运动功能的模型。我们展示了脊髓……

好的。大家好，我叫Alan Meyer，是索尔克研究所faf实验室的一名研究助理。今天我将向您演示如何进行腹侧椎板切除术以分离小鼠的脊髓，同时我还将展示如何将脊髓连接到电极上。为了记录其神经活动，您需要为脊髓准备两种溶液：一种用于解剖，另一种用于记录浴槽。两种溶液的唯一区别在于氯化钙的浓度。首先需要配制10 X-A-C-S-F溶液。这将需要以下所列的试剂。首先，将100毫升的10 X-A-C-S-F加入一个1升的容量瓶中。接着，用水填充容量瓶，但需留出空间以防止溢出。然后用气体混合物通气，使溶液中气体浓度达到5% CO2和95% O2。为了降低 pH 值并使溶液充氧，加入一毫升一摩尔的硫酸镁。接着，向灌流液中加入一毫升一摩尔的氯化钙溶液，并向记录液中加入两毫升一摩尔的氯化钙。在这些实验中可使用胚胎 16.5 天至出生后 4 天的小鼠。首先用锋利的剪刀迅速将小鼠断头，开始解剖。接着沿腹侧中线剪开，直至尾部。然后用镊子取出小鼠的内脏，并用 A CSF 溶液冲洗。使用一毫摩尔氯化钙人工脑脊液进行解剖。将小鼠置于解剖皿中，用针分别固定其四肢和尾根部。本步骤的目标是沿红色虚线剪开，分离包裹脊髓的椎板，从而分离出脊髓。这将使您能够暴露脊髓。接下来，沿着该线剪除脑膜和脊神经根，游离出脊髓。找到脊柱，用一只手使用镊子牢固地夹住脊柱，另一只手使用小剪刀进行操作。为取出脊髓，应保持剪刀呈低角度。为避免剪刀尖刺破脊髓，现在我们将分离脊髓。沿红色线条切开脑膜和脊神经根。为取出脊髓，可沿脊髓两侧剪开，然后沿腹侧中线剪开。操作时应保持剪刀角度较低，以免刺破脊髓。应注意避免在靠近脊髓处将神经根剪得过短。接下来，将脊髓转移至记录浴槽中，并将电极连接到脊髓根部。将电极置于靠近神经根的位置，然后利用负压轻轻将神经吸入电极内。感谢观看，希望本视频对您未来的实验有所帮助。

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

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研究躯体刺激对大鼠脊髓背角心脏锁定神经元反应的编码特征

学习新生小鼠脊髓分离与电生理记录技术，通过腹侧椎板切除术分离脊髓并连接电极记录神经活动。该方法适用于神经科学研究中的神经信号检测。

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