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单个乳腺癌干细胞可形成一个称为原代乳腺球的细胞簇。为获得原代乳腺球,首先将乳腺癌细胞系培养至70%至80%汇合,以确保细胞处于生长阶段。加入胰蛋白酶-EDTA使细胞从培养瓶上脱离,然后加入含血清的培养基以终止胰蛋白酶的作用。
现在,将细胞转移至离心管中,离心以获得细胞沉淀。用无血清的乳腺球培养基重悬沉淀,并通过带细胞滤器的筛网帽过滤,以获得单细胞悬液。该悬液包含干细胞、前体细胞和已分化的细胞,其蛋白表达各不相同。
CD44 和 CD24 是乳腺癌干细胞特征性的细胞表面蛋白,这类细胞表现为 CD44 表达阳性而 CD24 表达阴性。使用荧光或磁激活细胞分选技术从细胞悬液中分离细胞。随后,取一份等分试样,加入台盼蓝染料对细胞进行染色,并利用血细胞计数板计算每毫升中的活细胞数量,以确定接种密度。
最后,将细胞接种于六孔超低黏附培养板中,以保持细胞悬浮状态。孵育5至10天,期间避免扰动培养板,直至形成直径为40微米的球体。在以下实验方案中,我们将从一种乳腺癌细胞系中生成原代乳腺球。
— 在无菌培养罩中操作,从融合度为70%至80%的MCF7或MDA-MB-231细胞开始本实验步骤。吸除培养瓶中的培养基,用PBS洗涤细胞两次,随后加入胰蛋白酶-EDTA,并孵育2至6分钟。待细胞脱离后,加入含10% FBS的乳腺球培养基终止消化反应。
待细胞脱落后,将其转移至15毫升锥形离心管中,在室温下以200 × g离心5分钟。离心后弃去上清液,然后用1至5毫升的乳腺球培养基重悬细胞。上下吹打10次以充分分散细胞沉淀。
接下来,将细胞悬液转移至带有40微米细胞滤网帽的过滤器中,收集滤过液至配套的收集管中,以获得单细胞悬液。用移液器吸取20微升 分装 将重悬的细胞取适量滴加到血细胞计数板上,用显微镜观察。若观察到细胞聚集成团(如图所示),则用注射器将细胞悬液反复通过25号针头吹打一至两次。
当细胞已如图所示分散为单细胞悬液后,继续通过荧光激活细胞分选或使用LS柱的磁性激活细胞分选法,分离CD44阳性、CD24阴性的细胞亚群,以正向筛选出CD44阳性细胞。由于目标细胞会结合在LS柱管壁上,弃去流穿液,然后从柱中洗脱细胞,加入5毫升缓冲液,并使用随柱提供的推杆推压,以冲洗出目标细胞。
接下来,使用LD柱通过阴性筛选进一步纯化细胞群体。在此过程中,CD24阳性细胞会结合到LD柱上。收集流穿部分,其中含有CD24阴性细胞。随后,利用流式细胞术确认所有分离细胞的表型。采用台盼蓝排斥法,计算活细胞的密度。
将细胞悬液适当稀释后,用完全型乳腺球培养基在六孔超低吸附培养板的每个孔中接种,每平方厘米接种500至4,000个细胞,体积为2毫升。将培养板置于培养箱中孵育,注意避免扰动,孵育5至10天直至观察到细胞球形成。继续培养,直至细胞球直径至少达到40微米,但尚未开始出现凋亡迹象为止。