Name: Nicht-invasive Bildgebung von Leukozyten Homing und Migration In vivo /em (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-05T17:10:00.000+00:00
Duration: 7 min 42 s
Description: Lernen Sie die nicht-invasive Zweiphotonenmikroskopie zur Visualisierung von Leukozyten-Homing und Migration in vivo an der Maus. Diese Methode ermöglicht die quantitative Analyse immunologischer Prozesse.

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Diese Arbeit wurde vom NIH R01-3155 bis 53.502 und Washington University-Pfizer Biomedical Research Agreement unterstützt.

1. Tierische Zubereitung: Dieses Protokoll verwendet erwachsenen weiblichen erwachsenen LysM-eGFP Mäusen, bei denen Neutrophilen und Makrophagen fluoreszierend sind durch die Expression von eGFP 1 bezeichnet. <ol class="lalpha"><li> Labeling Blutgefäße: Zur Visualisierung Blutgefäße, 15μl von nicht gezielten Quantenpunkte (655nm) werden in 100 ul PBS verdünnt und intravenös in die Maus 10-30 min vor Imaging injiziert. </li><li> Anästhesie: <ol><li> Platzieren Sie die Maus in die Induktion Kammer des Veterinär-Inhalationsnarkose System (Noble Medical Service, Inc). </li><li> Setzen Sie den Verdampfer auf 3-4% Isofluran und 100% Sauerstoff Gasstrom auf ~ 1 L / min. Um Fehlbedienungen zu vermeiden Anästhesie Überdosierung genau beobachten das Tier bis zum hinteren Fuß Prise Reflex ist verloren. </li><li> Anästhesie ist bei 1,5 gehalten ~ 2% Isofluran und feine während der Bildgebung abgestimmt, um die Atmung Artefakte wie nötig zu minimieren. Die Atemfrequenz der Maus ist sorgfältig in der Imaging-Session überwacht, um eine angemessene Ebene der Narkose zu versichern. </li><li> Puralube Veterinär Salbe ist für die Augen, um zu verhindern Trocknung angewendet. </li><li> Die Maus ist an einem geregelten 36 aufgesetzt ° C Heizkissen (Braintree Scientific) während der Injektionen und Bildbearbeitung, um eine Unterkühlung zu verhindern. </li><li> Um zu verhindern, Dehydratation, ist die Maus 100 ul PBS sc alle 1-2 Stunden gegeben. </li></ol></li><li> Delivering eine entzündliche Reize zu Leukozytenrekrutierung induzieren: <ol><li> Platzieren Sie die Maus auf dem OP-Bühne und Tupfer der Fußsohle mit 70% Ethanol. </li><li> Biegen Sie die Nadel einer Insulin-Spritze ~ 90 Grad in der Nähe der Schräge der Injektion zu erleichtern und verbessern die Genauigkeit der Lieferung Tiefe. </li><li> Legen Sie die Spritze mit 0,5 ug E.coli Biopartikeln in 1μl PBS verdünnt. Dies kann in den Deckel eines Mikrozentrifugenröhrchen zu erleichtern, um den Tropfen Last durchgeführt werden. </li><li> Halten Sie den Fuß mit einer gebogenen Pinzette und führen Sie die Nadel vorsichtig durch die Haut mit der Fase nach oben, bis sie knapp unter der Haut ist. </li><li> Injizieren Sie langsam und halten Sie ihn 5 Sekunden lang zu verhindern, dass wieder spülen. </li></ol></li></ol> 2. Imaging Bühnenaufbau: Die Imaging-Plattform besteht aus einer Aluminium-Platte mit einem kreisrunden Loch in der Mitte abgeschnitten. Ein großes Deckglas wird an der Unterseite der Platte und ein Gummi-O-Ring ist an der Oberseite geklebt, um eine flüssigkeitsdichte vertiefte Kammer zu schaffen, um die Hinterpfote Platz geklebt. Die Aluminiumplatte wird auf 36 ° C über zwei Heizelemente an der Oberseite der Platte erwärmt. <ol class="lalpha"><li> Legen Sie die Maus auf den vorgewärmten Bildgebung Bühne und halten Sie die Maustaste ist die Kerntemperatur des Körpers mit dem 36 ° C Erwärmung pad. </li><li> Sichern Sie die Pfote an den Deckglas des abbildenden Kammer mit einer dünnen Schicht von Sekundenkleber. </li><li> Waschen Sie die Pfote zweimal, um eine schwimmende Bits Kleber zu entfernen und füllen Sie dann die Kammer mit frischem PBS (bis 36 vorgewärmten ° C). </li></ol> Mäuse können für bis zu 4 Stunden ohne aus dem Tier die Lebensfähigkeit abgebildet werden. Der Fuß kann leicht mit wenig Aceton und Mäuse für die Längs-Imaging-Studien wieder freigegeben werden. Allerdings ist in diesem Fall empfehlen wir die Bildgebung Zeitraum bis &lt;2 Stunden und wartet 24-48 h zwischen den Sitzungen, um das Risiko der Narkose Überdosierung oder Austrocknung zu minimieren. 3. Imaging Acquisition Die Zwei-Photonen-Mikroskop (2P-Mikroskop) im Sinne dieses Protokolls ist eine custom-built Dual-Laser-Video-Rate-System bestehend aus einem aufrechten Mikroskop. Das System ist mit zwei Ti ausgestattet: Sapphire Laser, vier Haupt-on Bi-Alkali-PMTs für das simultane 3 und 4-Kanal-Akquisitionen und ein 20x Wasserimmersionsobjektiv (Olympus, 20x/0.95 NA). <ol class="lalpha"><li> Tune the Chameleon XR Ti: Saphir-Laser (Coherent Inc.), um 890-900nm. </li><li> Verwenden 480nm und 560nm dichroitische Spiegel (SemRoc) zu drei Kanäle trennen: blau (&lt;480 nm, Second Harmonic Generation-Signal), Grün (480-560nm, LysM-eGFP positiven Neutrophilen) und Rot (&gt; 560 nm, Quantenpunkt bezeichnet Blutgefäße ). Alternativ kann die 560nm-Filter mit einem 570nm Filter E. unterscheiden ersetzt werden coli Biopartikeln (576nm Biopartikeln erscheint orange) von 655nm Quantenpunkte (erscheint tiefrot). </li><li> Vorsichtig das Ziel in die PBS und konzentrieren sich auf ein Schiff der Zehe. </li><li> Mit der Aufnahmegeschwindigkeit, die bei Video-Rate (30f/sec) und mit der zweiten harmonischen Signals ausgehend von Kollagen als ein Gewebe Wahrzeichen, schnell Umfrage des Gewebes (bei Video-rate Aufnahmegeschwindigkeit), um ein Blutgefäß von Interesse (eine lokalisieren mit sichtbaren lysM-eGFP Neutrophile). </li><li> Stellen Sie den Gain auf der PMTs einer Farbtrennung zu optimieren und die Höhe der Laser benötigt, um ein ausreichendes Signal gegenüber dem Hintergrund zu erreichen (werdenAchten Sie darauf, um das Bild zu sättigen!). </li><li> Sobald Flächenbereich der Interessen befindet, beginnen Zeitraffer-Bildgebung. Zeitraffer-Imaging kann mit zwei verschiedenen zeitlichen Auflösungen durchgeführt werden. Für die Bildgebung Zellrollen und Adhäsion und in Echtzeit innerhalb von Blutgefäßen, so erwerben wir 30f/sec an einem z-Ebene. Zur Dokumentation Zelle Extravasation und Migration in das Parenchym führen wir 3D Zeitraffer-Bildgebung. Ein typisches Übernahme-Protokoll wird von durchschnittlich 15 Frames pro Z-Schritt und den Erwerb von 21 aufeinanderfolgenden 2.5μm z-Schritte mit einem Volumen von 200-225 50 um bei 30 Sekunden-Intervallen bestehen. </li><li> Sobald die Daten-Dateien auf dem Labor-Server gespeichert sind, können Imaris oder Volocity Software verwendet, um multi-dimensionale Darstellung und Zell-Tracking 2, 3 durchzuführen. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse 1.Real-Zeit (30f/sec) vorstellen, der neutrophilen Rollen entlang der Gefäße bei 200x. Zeitraffer-Aufnahme zeigt Neutrophilen, in grün, Rollen entlang des Endothels der Blutgefäße etwa 10 Minuten nach der Infektion mit Listeria monocytogenes, in rot dargestellt. Kollagenfasern im Bindegewebe erscheinen in blau. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/2062/2062_Miller_Movie1.mov">Bitte klicken Sie hier, um das Video zu sehen.</a> 2.Time Zeitraffer 3D-Bildgebung von neutrophilen Rekrutierung Dynamik bei 200x. Typische neutrophilen Rekrutierung aus dem Verkehr und Migration durch entzündetes Gewebe wird angezeigt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/2062/2062_Miller_Movie2.mov">Bitte klicken Sie hier, um das Video zu sehen.</a>

<ol><li>Faust, N., Varas, F., Kelly, L. M., Heck, S., Graf, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insertion+of+enhanced+green+fluorescent+protein+into+the+lysozyme+gene+creates+mice+with+green+fluorescent+granulocytes+and+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Insertion of enhanced green fluorescent protein into the lysozyme gene creates mice with green fluorescent granulocytes and macrophages.</a> Blood. 96, 719-726 (2000).</li>
<li>Zinselmeyer, B. H., Lynch, J. N., Zhang, X., Aoshi, T., Miller, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Video-rate+two-photon+imaging+of+mouse+footpad+-+a+promising+model+for+studying+leukocyte+recruitment+dynamics+during+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Inflamm+Res%22%5BJournal%5D)">Video-rate two-photon imaging of mouse footpad - a promising model for studying leukocyte recruitment dynamics during inflammation.</a> Inflamm Res. 57, 93-96 (2008).</li>
<li>Zinselmeyer, B. H., Dempster, J., Wokosin, D. L., Cannon, J. J., Pless, R., Parker, I., Miller, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+16.+Two-photon+microscopy+and+multidimensional+analysis+of+cell+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Chapter 16. Two-photon microscopy and multidimensional analysis of cell dynamics.</a> Methods Enzymol. 461, 349-378 (2009).</li>
<li>Gray, D. F., Jennings, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allergy+in+experimental+mouse+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+Rev+Tuberc%22%5BJournal%5D)">Allergy in experimental mouse tuberculosis.</a> Am Rev Tuberc. 72, 171-195 (1955).</li>
<li>Lin, A., Loughman, J. A., Zinselmeyer, B. H., Miller, M. J., Caparon, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Streptolysin+S+inhibits+neutrophil+recruitment+during+the+early+stages+of+Streptococcus+pyogenes+infection.+Infect+Immun%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Streptolysin S inhibits neutrophil recruitment during the early stages of Streptococcus pyogenes infection. Infect Immun.</a> 77, 5190-5201 (2009).</li>
<li>Smith, C. J., Zhang, Y., Koboldt, C. M., Muhammad, J., Zweifel, B. S., Shaffer, A., Talley, J. J., Masferrer, J. L., Seibert, K., Isakson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+analysis+of+cyclooxygenase-1+in+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Pharmacological analysis of cyclooxygenase-1 in inflammation.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 13313-13318 (1998).</li>
<li>Wipke, B. T., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+role+of+neutrophils+in+the+initiation+and+progression+of+a+murine+model+of+rheumatoid+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Essential role of neutrophils in the initiation and progression of a murine model of rheumatoid arthritis.</a> J Immunol. 167, 1601-1608 (2001).</li>
<li>Baez, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+open+cremaster+muscle+preparation+for+the+study+of+blood+vessels+by+in+vivo+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">An open cremaster muscle preparation for the study of blood vessels by in vivo microscopy.</a> Microvasc Res. 5, 384-394 (1973).</li>
<li>Mempel, T. R., Scimone, M. L., Mora, J. R., von Andrian, U. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((in+vivo+imaging+of+leukocyte+trafficking+in+blood+vessels+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Immunol%22%5BJournal%5D)">in vivo imaging of leukocyte trafficking in blood vessels and tissues.</a> Curr Opin Immunol. 16, 406-417 (2004).</li>
<li>Miller, M. J., Wei, S. H., Cahalan, M. D., Parker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomous+T+cell+trafficking+examined+in+vivo+with+intravital+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Autonomous T cell trafficking examined in vivo with intravital two-photon microscopy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 2604-2609 (2003).</li>
</ol>

Alle Experimente wurden nach Protokollen von der Animal Studies Ausschuss der Washington University in St. Louis genehmigt durchgeführt.

In diesem Video zeigen wir, Protokoll der Verfahren für nicht-invasive Bildgebung von 2P Leukozytenrekrutierung in Reaktion auf Entzündungen. Die Fußsohle ist ein klassisches physiologischen Ort für das Studium Entzündungen wie Allergien, Infektionen und Autoimmunerkrankungen 4-7. 2P Bildgebung liefert ein detailliertes Bild über verschiedene Schritte in Leukozyten Menschenhandel Wege, von Walz-und Haftung in den Blutgefäßen die Chemotaxis zu den Orten der Effektor-Funktion. Wir h...

<table><tbody><tr><td>Isofluran, USP</td><td>Butler Animal Health Supply</td><td>029405</td><td></td></tr><tr><td>655 nm Quantenpunkte ohne Targeting</td><td>Invitrogen</td><td>Q21021MP</td><td></td></tr><tr><td>Tetramethylrhodamin-konjugierte &lt;em&gt;E. coli&lt;/em&gt; BioPartikel</td><td>Invitrogen</td><td>E2862</td><td></td></tr><tr><td>Listeria monocytogenes (Lm)</td><td>Referenz 2</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Schnellgel</td><td>Duro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puralube Vet Salbe</td><td>Pharmaderm Animal Health</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Insulinspritzen</td><td>BD Biosciences</td><td>08290-3284-38</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>SH30256.02</td><td></td></tr></tbody></table>

nicht-invasive bildgebung von leukozyten homing und migration in vivo</em

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Zwei-Photonen (2P)-Mikroskopie ist eine hochauflösende bildgebende Verfahren, die im Großen und Ganzen wurde von Biologen angepasst. Der Wert der 2P-Mikroskopie ist, dass es reiche raumzeitlichen Informationen über Zell Verhaltensweisen innerhalb intakte Gewebe und in lebenden Mäusen liefert. Rekrutierung von Leukozyten spielt eine bedeutende Rolle in Immunabwehr gegen Infektionen und wenn deaktiviert, kann zu entzündlichen und Autoimmun-Erkrankungen beitragen. Studieren Leukozytenrekrutierung in vivo ist technisch anspruchsvoll, da die Zellen schneller sind, die innerhalb Schiffe tief im Lichtstreuung Gewebe entfernt. Bis heute verlangen die meisten intravital bildgebende chirurgische Vorbereitung auf die Blutgefäße und Gewebe freizulegen. Um zu vermeiden, die Gewebeschäden und Entzündungen, die durch Operation selbst induziert, hier beschreiben wir eine nicht-invasive Single-Cell-Imaging-Ansatz, mit dem Leukozyten-Handel mit der Maus Fußballen und Phalangen Studie werden können. Wir besprechen die technischen Aspekte unserer 2P Bildgebung Vorbereitung und gehen den Leser durch ein typisches Experiment von der ersten bis zur Ausführung und Datensammlung eingestellt.

Hier beschreiben wir eine nicht-invasive Zwei-Photonen (2P)-Mikroskopie Ansatz zur Untersuchung Leukozyten homing in der Maus Fußballen. Wir besprechen die technischen Aspekte unserer Tissue Imaging Vorbereitung und gehen den Leser durch ein typisches Experiment von der ersten bis zur Ausführung und Datensammlung eingestellt.

Nicht-invasive Bildgebung von Leukozyten Homing und Migration In vivo</em

Die Zwei-Photonen-Mikroskopie (2P-Mikroskopie) ist eine hochauflösende Bildgebungstechnik, die von Biologen in weitem Umfang übernommen wurde. Der Wert der 2P-Mikroskopie liegt darin, dass sie ...

Die Rekrutierung von Leukozyten spielt eine bedeutende Rolle bei der Abwehr von Infektionen durch den Wirt, und wenn sie unkontrolliert abläuft, kann sie zu entzündlichen und autoimmunen Erkrankungen beitragen. Hier wird die Rekrutierung und Migration von Leukozyten veranschaulicht, indem zunächst Quantenpunkte in eine Maus injiziert werden, um das Lumen der Blutgefäße fluoreszenzmarkiert darzustellen, gefolgt von einer subkutanen Injektion von Bakterien in die Fußsohle. Anschließend wird die Maus auf eine vorgewärmte Probenebene überführt, wo ihre Pfote an der Deckglasplatte der Bildgebungskammer fixiert wird.Mithilfe der Zweiphotonenmikroskopie werden anschließend Bilder der in-vivo-Neutrophilenrekrutierung und -migration aufgenommen, und die verschiedenen Schritte der Leukozytenrekrutierung – vom Rollen und Adhäsion bis zur Diapedese und Chemotaxis – werden quantitativ analysiert. Hallo, ich bin Wan aus der Abteilung für Pathologie und Immunologie von Dr. Mark Miller an der Washington University in St. Louis. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur nichtinvasiven Zweiphotonen-Bildgebung von Leukozyten, Homing und Migration in vivo.Mein Name ist Jeremiah McDowell. Ich stamme ebe

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Papier beschreibt die Methodik auf die chemotaktische Reaktion von Leukozyten an spezifische Liganden zu bestimmen und zu identifizieren Wechselwirkungen zwischen den Rezeptoren auf der Zelloberfläche und zytosolischen Proteinen unter Verwendung von Live Cell Imaging Verfahren.

Real-time Imaging von Leukotrien B 4 Vermittelte Zellmigration und BLT1 Wechselwirkungen mit β-Arrestin

Wir beschreiben ein Protokoll von Hellfeld Intravitalmikroskopie zur Messung dynamischer Neutrophilen-Endothel-Zell-Interaktionen während der neutrophilen Granulozyten Rekrutierung in Reaktion auf die Quelle eines neutrophilen Lockstoff in vivo. Neutrophile intraluminale Krabbeln, transendotheliale Migration und Chemotaxis in Maus cremaster Muskelgewebe visualisiert mit Zeitraffer-Video Fotografie und verfolgt mit ImageJ.

Tracking-Neutrophil Intraluminale Crawling, transendotheliale Migration und Chemotaxis in Tissue durch Intravital Video-Mikroskopie

Wir beschreiben eine allgemeine Protokoll für die in-vivo-Zellortung mittels MRT in einem Mausmodell mit Ex-vivo-markierten Zellen. Ein typisches Protokoll für die Zellmarkierung, Bildaufnahme und Verarbeitung Quantifizierung ist inbegriffen.

In-vivo-19 F-MRT für die Zellverfolgung

Leukozyten überqueren die endothelialen Monolayer mit Hilfe der parazellulären oder transzelluläre Route. Wir haben einen einfachen Test zu folgen die Verteilung endogener junctional VE-Cadherin und PECAM-1 während Leukozyten transendotheliale Migration unter physiologischen Fluss zwischen den beiden Seelenwege unterscheiden.

Echtzeit-Bildgebung von Zell-Zell-Endothelial Junctions Während Neutrophile Transmigration unter physiologischen Fluss

Monozyten sind Schlüsselregulatoren der angeborenen Immunität und spielen eine entscheidende Rolle bei der Erneuerung des peripheren mononukleären phagozytischen Systems und im Falle von Entzündungen. Dieses Manuskript beschreibt das Verfahren der Echtzeit-Bildgebung des Schädeldachknochenmarks der Maus, um den Mobilisierungsmechanismus der Monozyten zu untersuchen.

Tracking-Maus-Knochenmark-Monozyten<em&gt; In-vivo-</em

Diese vereinfachte Anwendung der Intravitalmikroskopie von Mesenterialvenen bei Mäusen kann in verschiedenen Entzündungsmodellen verwendet werden, um Leukozyten-Endothel- und Thrombozyten-Leukozyten-Wechselwirkungen zu beobachten.

Intravitalmikroskopie der Leukozyten-Endothel und Plättchen-Leukozyten-Wechselwirkungen in Mesenterialvenen in Mice

Wir beschreiben ein Protokoll zur Überwachung des Verhaltens von Neutrophilen und Monozyten in Mesenterialvenen unter stationären und entzündlichen Bedingungen mittels intravitaler konfokaler Mikroskopie an anästhesierten Mäusen.

Abbilden Neutrophilen und Monozyten in Mesenterialvenen von Intravitalmikroskopie an narkotisierten Ratten in Echtzeit

Die Mechanismen, die die interstitielle Motilität von CD4 Effektor T-Zellen an Entzündungsstellen bestimmen, sind relativ unbekannt. Wir stellen eine nicht-invasive Ansatz zu visualisieren und in vitro -geprimte CD4 - T - Zellen in den entzündeten Ohr Dermis, so dass für das Studium des dynamischen Verhaltens dieser Zellen in situ zu manipulieren.

Imaging CD4 T-Zell-Interstitial Migration in den entzündeten Dermis

Die hier vorgestellte Protokoll ermöglicht Charakterisierung von homing Lungenkapazität von primären menschlichen Lymphozyten unter in-vivo entzündlichen Erkrankungen. Pulmonale Infiltration der adoptively übertragenen menschlichen Immunzellen in einem Mausmodell der allergische Entzündung kann abgebildet und durch Licht-Blatt Fluoreszenzmikroskopie von chemisch ausgeglichenen Lungengewebe quantifiziert werden.

Erweiterte Bildgebung der Lunge Homing menschlichen Lymphozyten in einem experimentellen In Vivo Modell der allergische Entzündung basierend auf Licht-Blatt Mikroskopie

Die Migration von Neutrophilen beruht auf dem schnellen und kontinuierlichen Umbau der Plasmamembran als Reaktion auf den Chemolockstoff und seine Wechselwirkungen mit der extrazellulären Mikroumgebung. Hierin wird ein Verfahren beschrieben, das auf der Intravitalen Subzellulären Mikroskopie basiert, um die Dynamik des Membranumbaus bei Neutrophilen zu untersuchen, die in das Ohr von anästhesierten Mäusen injiziert werden.

Bildgebung der Migration von Neutrophilen in der Maushaut zur Untersuchung des subzellulären Membranumbaus unter physiologischen Bedingungen

Die In-vivo-Bildgebung der Gelenke ist eine wertvolle Technik, um das Migrationsverhalten der Leukozyten und die molekulare Dynamik in den entzündeten Gelenken aufzudecken. Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll für die in vivo Bildgebende der Gelenke mit einem Mausmodell der Typ-II-Kollagen-induzierten Arthritis (CIA) vor.

Im lebenden Organismus Die Bildgebung deckt das Wanderverhalten der Leukozyten in den Gelenken auf

Lernen Sie die nicht-invasive Zweiphotonenmikroskopie zur Visualisierung von Leukozyten-Homing und Migration in vivo an der Maus. Diese Methode ermöglicht die quantitative Analyse immunologischer Prozesse.

Nicht-invasive Bildgebung von Leukozyten Homing und Migration In vivo

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