蚊子养育的议定书"（冈比亚按蚊）
July 4th, 2007
该视频演示了在实验室中使用背面按蚊的一般技术。为照顾实验室蚊子的方法证明通过从幼虫到蛹吸血成年人机体的生命周期的所有阶段。
我叫 Shish，是约翰霍普金斯大学公共卫生学院 George OU 博士实验室的博士后。在分子微生物学和免疫学系，我将展示如何饲养蚊子 phis Gambi。在实验室中，我们将它们保存在室内室，通常保持在 27 摄氏度和 80% 湿度。
室内房间也保持着 12 小时的昼夜循环，以便我们可以模仿自然条件中的条件。这就是我们拥有的 Insectory 室，这是这里的核心设施，饲养着这只昆虫。正如你所看到的，这些有所有不同的托盘，里面有处于所有不同阶段的蚊子、卵、幼虫和窥视者的不同阶段。
这些托盘有幼虫，它们大约是 11 或 12 天大的，这是一个笼子，我们在这里收集成蚊，并保留 10% 的蔗糖溶液。要开始穿蚊子，我们需要给蚊子喂血，因为蚊子需要血液中的蛋白质来产卵。所以第一天是将成虫收集在笼子中并保持 10% 蔗糖之后。
第一天是用血喂蚊子，这就是为什么人工膜要喂血。这是一个玻璃喂食器，我们用它来喂食蚊子的膜。我们通过您看到的小孔将血液放入体内，它包含在其中。
侧面底部是两个喷嘴，它们连接到一个保持 37 度的水生。为了将血液保持在 37 度，为喂食器准备喂食，我们冒了一点风险。我们从两端从所有四个侧面向上拉伸，然后将其放在玻璃进料器的开口侧，以便形成一层薄薄的膜，就像模仿皮肤一样。
这就是所谓的膜饲养。这是一个循环水浴，将水保持在 37 度，并通过玻璃进料器使水循环，以便血液在 37 度时凝固为温暖。因此，我们通过小毛细管连接玻璃进料器，将其连接到循环水浴槽，然后打开水浴，使水循环，水和血液永远不会混合，因为它们位于两个独立的腔室中。
这是一笼 Phis Gambi 成年蚊子。这是玻璃喂食器，它被连接到循环浴槽，我们在笼子的顶部放了一个夹子，加入 200 微升血液。笼子里有雄性和雌性蚊子。
只有雌性才会来吸血。喂食持续约 30 分钟。喂血两天后，我们将卵杯放在蚊子的笼子里，让它们吃蛋。
这就是它的完成方式。我们取一小块，部分装满一些蒸馏水，取一杯并装满纸，然后包成圆锥形，放入装有蒸馏水的烧杯中，确保 inda 辣椒变香。现在我们慢慢地打开蚊笼，注意不要让任何蚊子出来，把蛋杯放进去。
第二天，也就是第四天，杯子被放入笼子后，慢慢地从笼子里取出。这些是蛋，黑色的，还有一些死蚊子。准备好鸡蛋后，将它们放在塑料托盘上。
过去，塑料托盘里装满了蒸馏水。将过滤辣椒和鸡蛋一起取出。我们还加入一小撮食物 A，这是碎鱼的食物，然后将托盘放在架子上。
我们应该在开始托盘的那天将托盘调平，以及它们在这里是什么物种。这是在您之后，这是您把鸡蛋放入托盘后的第二天。也就是说，这些是一天前的，但实际的规程是蚊子日的第五天。
这些是黑色的，是卵，它们即将孵化成幼虫。这些是蚊子的食物。对于蚊子饲养，我们通常使用三种不同的食物。
食物 A 实际上是磨碎的鱼粮，也就是说，当我们开始蚊子培养时，当它们处于 X 阶段时，我们每天添加两片食物 C，这是从 Purina 购买的猫粮。八九天后，我们更换托盘中的水并给予淡水。那时，我们加入一小撮食物 B，而不是食物 A，它只不过是磨碎的食物，C 是磨碎的猫粮，以及加入两片食物 C，鸡蛋，幼虫孵化。
幼虫有三个不同的阶段。第一个是安装，第二个是安装，第三个是安装。这些是装有幼虫的托盘，幼虫有 5 或 6 天大。
这些 Ravi 处于更晚的阶段，比如 9 到 10 天大。在这两者之间，换了水，加入了淡水和新鲜的食物。这个托盘有成人和个人防护装备。
正如你所看到的，这些是成虫，在蚊帐下飞行。在边缘，你可以看到所有深色的个人防护装备，这些防护装备将要给成年儿童孵化。一旦你有了成虫，它们就可以被收集在一个笼子里，看起来像这样。
它里面有一层纸巾衬里，还有一个装有 10% 超级溶液的小瓶子和一个棉皂罐，它将作为蚊子的食物来源。所以我们盖上盖子，这是装置，即抽吸器，它与真空装置相连，通过真空装置将成虫从这些托盘中收集出来。吸气器的这一部分，它在这里连接，在另一端。
连接到真空。我们把笼子放进去，然后把成虫收集到这个小盒子里。这是吸气器的另一部分，它有一根长管，可以放在蚊子盘里。
另一侧将连接到笼子。您必须确保一切都很紧密，这样真空才能正常工作。我们合上盖子并确保所有东西都紧紧的。
慢慢启动后端。设置准备好后，我们将这条长管慢慢放入蚊帐盘中，确保关闭蚊帐，不要让蚊子松动。正如你所看到的，蚊子被收集在小笼子里。
慢慢地把烟斗带到各处，把所有的成虫都收集起来。现在我快完成了。所有的成年鲸鱼都被收集起来了，他们都在这个笼子里，你可以看到。
然后慢慢地，我们释放真空并拆除收集装置。所以这是 Ana Gambi 成年蚊子，它们将在这个笼子里呆几天。它们会适合 10% 蔗糖，只有在我们需要产卵时，它们才会被给予血液以适应。
我刚刚向您展示了如何佩戴 Mosquitoes。Finis mb 蚊子在实验室条件下，用语言来说重要步骤是血液拟合。然后放入蛋杯，跟随鸡蛋，然后，它们会经历不同的阶段，如幼虫、个人防护装备和成虫。
最后，我们收集成虫。这项技术的重要性在于，我们必须在自然条件下模仿外面的条件，这样我们才能拥有健康的蚊子，然后我们用疟原虫感染它们，并对疟疾进行不同类型的研究，其主要目的是从世界上根除 mal。
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概览
本视频介绍了在实验室中养殖非洲按蚊的技术，展示了在所有生命阶段护理蚊子的方法。
关键研究组成部分
科学领域
- 昆虫学
- 媒介生物学
- 实验室技术
背景
- 非洲按蚊是疟疾的主要传播媒介。
- 了解蚊子的生命周期对于媒介控制至关重要。
- 实验室养殖模拟自然条件。
- 温度和湿度对于蚊子的发育至关重要。
研究目的
- 展示非洲按蚊的养殖。
- 提供实验室蚊子护理的见解。
- 促进疟疾传播研究。
使用的方法
- 在控制的虫室中维护蚊子。
- 温度控制在27摄氏度。
- 湿度控制在80%。
- 12小时的光/暗周期以模拟自然条件。
主要结果
- 成功养殖蚊子通过所有生命阶段。
- 展示有效的实验室技术。
- 蚊子发育的视觉表现。
- 对非洲按蚊环境需求的见解。
结论
- 实验室条件可以有效支持蚊子生命周期。
- 适当的护理对于研究和媒介控制研究至关重要。
- 了解这些方法有助于疟疾研究。
常见问题
Executive Industry Relevance
Reliable laboratory rearing of Anopheles gambiae is foundational for vector-borne disease research and preclinical model development. Standardized mosquito production enables controlled infection studies, supporting target validation and mechanistic de-risking in malaria research pipelines. Consistent insectary workflows underpin translational continuity from discovery biology to intervention assessment.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Enables reproducible production of disease-relevant mosquito cohorts for infection and transmission studies.
- Supports functional validation of vector-pathogen interactions under controlled conditions.
- Facilitates mechanistic de-risking by providing standardized biological material for hypothesis testing.
Screening & Assay Development
- Provides validated mosquito populations for downstream screening of transmission-blocking compounds.
- Ensures assay reproducibility through environmental and nutritional standardization.
- Enables quantitative assessment of intervention efficacy in vector models.
Translational & Preclinical Research
- Maintains disease-relevant vector systems for preclinical evaluation of candidate interventions.
- Supports continuity from laboratory discovery to translational biomarker studies in vector biology.
- Reduces biological variability, improving predictive confidence in preclinical outcomes.
Pipeline & Workflow Integration
This mosquito rearing protocol anchors the early discovery and preclinical continuum for malaria research, enabling robust infection models and intervention testing.
- Discovery Biology: Supplies standardized vectors for hypothesis-driven studies of malaria transmission.
- Screening: Delivers reproducible mosquito cohorts for compound efficacy assays.
- Analytics: Supports quantitative readouts of infection, transmission, and intervention impact.
- Translational Research: Bridges laboratory findings to preclinical validation in disease-relevant systems.
- Enterprise Reuse: Establishes a scalable, reusable platform for vector-based research across programs.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Increases predictive confidence and reduces mechanistic ambiguity in vector-pathogen studies.
- Operational Value: Standardizes mosquito production, improving reproducibility and scalability.
- Strategic Value: Enables informed go/no-go decisions for vector-targeted interventions.
- Portfolio Impact: Supports risk-adjusted prioritization of malaria research assets.
Implementation Considerations
- Requires entomological expertise and strict environmental control infrastructure.
- Demands consistent access to blood sources and specialized feeding apparatus.
- Necessitates rigorous cross-team standardization for reproducible outputs.
- Adaptation may be needed for different mosquito species or research objectives.
- Operational limitations include biosecurity and ethical sourcing of blood products.
Biopharma FAQs
Chapters in this video
11:44
Day 17-21 - The Cycle Repeats
8:20
Day 14-16 - Adult Mosquitoes Emerge
5:10
Day 4 - Eggs are Collected
12:07
Conclusion
6:22
Day 5-8 - Feed Larvae Every Day
3:43
Day 3 - Mosquitoes Lay Eggs
0:01
Introduction
8:02
Day 13 - From Larvae to Pupae
7:36
Day 9-10 - Late Stage Larvae
1:08
Day 1 - Blood-Feeding Mosquitoes
8:39
Day 16 - Collection of Adult Mosquitoes
