Name: 酸修饰的寡核苷酸锁定核酸转染和蚊虫细胞的靶基因突变 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: 学习使用锁定核酸寡核苷酸在按蚊细胞中进行定点诱变的方法。该技术通过转染和流式细胞术实现基因靶向修饰，为蚊虫基因功能研究和病媒控制策略提供精确工具。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

我们感谢加利福尼亚国家灵长类研究中心的Abbie Spinner在流式细胞术方面提供的协助。本研究由美国国立卫生研究院（NIH）下属的国家过敏与传染病研究所（NIAID）资助，项目编号为AI073745、AI080799和AI078183。

<ol>
<li>开始实验方案之前，必须确认实验所用的蚊子细胞处于健康状态，且若为贴壁细胞，则融合度约为80%（图1）。过度生长或不健康的细胞将导致转染效率低下，并产生不一致的结果。</li>
<li>使用前将所有培养基在28°C水浴中预热30分钟。
	<ol class="lalpha">
<li>A. stephensi MSQ43细胞需要E5培养基：含谷氨酰胺的MEM，Earle's配方，5%热灭活FCS，0.2% D-葡萄糖，1%青霉素-链霉素抗生素，以及1%非必需氨基酸。</li>
<li>A. gambiae SUA5B细胞需要S2培养基：Schneider's Drosophila培养基，5%热灭活FCS，以及1%青霉素-链霉素抗生素。</li>
</ol>
</li>
<li>将所有转染试剂材料、质粒和寡核苷酸从冻存状态解冻后置于冰上保存。</li>
<li>所有操作均应在组织培养超净台内采用无菌技术进行。</li>
<li>对于贴壁细胞（A. gambiae SUA5B，A. stephensi MSQ43），吸除旧培养基时避免扰动细胞，加入等体积已预热至28°C的新鲜培养基，然后用移液器将细胞从培养瓶底部轻轻吹打下来。</li>
<li>应测定细胞浓度，并调整至终浓度为1×106 个细胞/mL。在准备转染试剂材料期间，细胞可在室温下保存。</li>
<li>向6孔板的每孔中加入1 mL蚊子细胞（1×106 个细胞/mL）。为每种实验条件设置独立的培养板（见下文）。 
表I为常规转染的移液方案。表II列出了使用BFP特异性LNA-ONs成功实现单核苷酸突变的五种测试条件。前两种条件pGFP和pBFP分别为阳性和阴性对照。其余条件为含有不同浓度BFP特异性LNA-ONs的pBFP实验组。在步骤8至12中，应根据各实验条件加入相应体积的试剂。
</li>
<li>将质粒DNA转移至无菌的1.5 mL微量离心管中，并加入适量EC缓冲液。
<ol class="lalpha">
<li>对于1 μL质粒DNA（1 μg/μL），加入99 μL EC缓冲液。</li>
<li>对于1 μL pGFP（1 μg/μL），加入99 μL EC缓冲液。</li>
<li>对于1 μL pBFP（1 μg/μL），加入99 μL EC缓冲液。</li>
<li>对于1 μL pBFP（1 μg/μL）和1 μL ON（μg/μL），加入98 μL EC缓冲液。</li>
<li>对于1 μL pBFP（1 μg/μL）和5 μL ON（1 μg/μL），加入94 μL EC缓冲液。</li>
<li>对于1 μL pBFP（1 μg/μL）和10 μL ON（1 μg/μL），加入89 μL EC缓冲液。</li>
</ol>
</li>
<li>随后根据所用DNA每1 μg缓慢加入Enhancer。
<ol class="lalpha">
<li>对于1 μL质粒DNA，加入8 μL Enhancer。</li>
<li>对于1 μL pGFP，加入8 μL Enhancer。</li>
<li>对于1 μL pBFP，加入8 μL Enhancer。</li>
<li>对于1 μL pBFP和1 μL ON，加入16 μL Enhancer。</li>
<li>对于1 μL pBFP和5 μL ON，加入48 μL Enhancer。</li>
<li>对于1 μL pBFP和10 μL ON，加入88 μL Enhancer。</li>
</ol>
</li>
<li>将DNA/缓冲液/Enhancer混合物涡旋震荡1秒，并确保所有溶液均位于管底。然后在室温下孵育5分钟。</li>
<li>根据每1 μg质粒DNA加入Effectene试剂，并涡旋震荡10秒。确认所有溶液均位于管底，然后在室温下孵育10分钟。
<ol class="lalpha">
<li>对于1 μL质粒DNA，加入10 μL Effectene（表I）。</li>
<li>对于1 μL pGFP，加入10 μL Effectene（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP，加入10 μL Effectene（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和1 μL ON，加入20 μL Effectene（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和5 μL ON，加入60 μL Effectene（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和10 μL ON，加入110 μL Effectene（表II）。</li>
</ol>
</li>
<li>通过逐滴加入预热的培养基，将每管总体积补至1000 μL。若加入培养基过快，DNA可能在此时发生沉淀。用移液器轻轻吹打3–4次以混匀。
<ol class="lalpha">
<li>对于1 μL质粒DNA，加入882 μL培养基（表I）。</li>
<li>对于1 μL pGFP，加入882 μL培养基（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP，加入882 μL培养基（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和1 μL ON，加入864 μL培养基（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和5 μL ON，加入792 μL培养基（表II）。</li>
<li>对于1 μL pBFP和10 μL ON，加入702 μL培养基（表II）。</li>
</ol>
</li>
<li>接下来，将适量的DNA/Enhancer/Effectene混合液逐滴缓慢加入各孔中。</li>
<li>轻轻摇动培养板，以确保细胞和转染混合物分布均匀。将细胞置于正常培养条件下孵育。</li>
<li>转染后一天，轻轻吸除培养基，并缓慢替换为等体积的新鲜预热培养基。此操作过程中应注意不要扰动各孔底部的细胞层。</li>
<li>转染后两天，在荧光显微镜下观察转染了pGFP的阳性对照细胞，以评估转染效率（图2）。</li>
<li>SUA5B细胞生长迅速，容易过度融合。转染后四天，通过吸除旧培养基并缓慢加入等体积的新鲜预热培养基来稀释细胞。</li>
<li>向各孔加入新培养基后，用移液器反复吹打使所有细胞从孔底脱离，弃去一半体积（1 mL）的细胞悬液，并加入1 mL新鲜预热培养基，使终体积恢复至2 mL。</li>
<li>每日检查细胞状态，确保其健康且未过度生长，必要时进行稀释。</li>
<li>转染后在正常培养条件下继续培养细胞5至7天，然后收集细胞用于分析。</li>
<li>转染后5至7天，通过吸除所有孔中的旧培养基，并向每孔加入1 mL无菌室温PBS来收集细胞。</li>
<li>用移液器反复吹打使细胞从孔底脱离，将细胞悬液转移至5 mL带盖离心管中，并立即通过流式细胞术进行分析。</li>
</ol>

代表性结果
<img src="/files/ftp_upload/2355/2355fig1.jpg" alt="细胞培养显微镜图像；左右图显示实验研究中细胞密度的变化。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 
图 1. 未转染的健康A. stephensi MSQ43（A）和A. gambiae SUA5B（B）细胞，汇合度约为80%。
<img src="/files/ftp_upload/2355/2355fig2.jpg" alt="使用GFP进行基因表达分析；显微镜图像：明场、GFP荧光、合并视图。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 
图2. A. stephensi MSQ43 (A) 和 A. gambiae SUA5B (B) 细胞转染表达GFP的阳性对照质粒。
<img src="/files/ftp_upload/2355/2355fig3.jpg" alt="流式细胞术图示显示GFP表达分析；基于FSC、SSC、PI和GFP的细胞群体。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 
图3. 流式细胞术数据证实，在转染BFP特异性锁核酸修饰寡核苷酸（LNA-ONs）后，通过单个核苷酸的诱变实现了BFP向GFP的转化。SUA5B细胞分别转染表达GFP的质粒（pGFP）作为阳性对照、表达BFP的质粒（pBFP）作为阴性对照，或共转染pBFP与不同浓度的BFP特异性LNA-ONs。（A）流式细胞术数据分析的设门策略，从左至右依次显示：活细胞的前向散射（FSC）与侧向散射（SSC）、碘化丙啶（PI）阴性细胞，以及转染后第五天的GFP阳性细胞。（B）转染pBFP并加入不同浓度LNA-ONs后，GFP阳性细胞百分比的统计图，数据来自（A）所示结果。
<img src="/files/ftp_upload/2355/2355table1.jpg" alt="DNA转染实验的试剂体积表，适用于1 μg和10 μg DNA操作，实验设置" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="表1"> 
表I. 转染条件。
<img src="/files/ftp_upload/2355/2355table2.jpg" alt="DNA转染表格，质粒用量、缓冲液、增强剂、Effectene、培养基（单位：微升）。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="表2"> 
表 II. 图1中使用的转染条件。

<ol><li>Corby-Harris, V. D. A., Watkins de Jong, L., Pakpour, N., Antonova, Y., Ziegler, R., Ramberg, F., Lewis, E. E., Brown, J. M., Luckhart, S. L., Riehle, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+strategy+for+controlling+malaria+transmission+in+the+mosquito+Anopheles+stephensi%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">A novel strategy for controlling malaria transmission in the mosquito Anopheles stephensi.</a> PLOS Pathogens. , Forthcoming (2010).</li>
<li>Braasch, D. A., Corey, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Locked+nucleic+acid+%28LNA%29%3A+fine-tuning+the+recognition+of+DNA+and+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Locked nucleic acid (LNA): fine-tuning the recognition of DNA and RNA.</a> Chem Biol. 8, 1-7 (2001).</li>
<li>Andrieu-Soler, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stable+transmission+of+targeted+gene+modification+using+single-stranded+oligonucleotides+with+flanking+LNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Stable transmission of targeted gene modification using single-stranded oligonucleotides with flanking LNAs.</a> Nucleic Acids Res. 33, 3733-3742 (2005).</li>
<li>Parekh-Olmedo, H., Drury, M., Kmiec, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+nucleotide+exchange+in+Saccharomyces+cerevisiae+directed+by+short+oligonucleotides+containing+locked+nucleic+acids%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Targeted nucleotide exchange in Saccharomyces cerevisiae directed by short oligonucleotides containing locked nucleic acids.</a> Chem Biol. 9, 1073-1084 (2002).</li>
<li>Rhee, W. J., Santangelo, P. J., Jo, H., Bao, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target+accessibility+and+signal+specificity+in+live-cell+detection+of+BMP-4+mRNA+using+molecular+beacons%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Target accessibility and signal specificity in live-cell detection of BMP-4 mRNA using molecular beacons.</a> Nucleic Acids Res. 36, e30-e30 (2008).</li>
<li>Marras, S. A., Kramer, F. R., Tyagi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotyping+SNPs+with+molecular+beacons%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Genotyping SNPs with molecular beacons.</a> Methods Mol Biol. 212, 111-128 (2003).</li>
<li>Tyagi, S., Bratu, D. P., Kramer, F. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicolor+molecular+beacons+for+allele+discrimination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Multicolor molecular beacons for allele discrimination.</a> Nat Biotechnol. 16, 49-53 (1998).</li>
<li>Blandin, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+the+genetic+basis+of+resistance+to+malaria+parasites+in+Anopheles+gambiae%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Dissecting the genetic basis of resistance to malaria parasites in Anopheles gambiae.</a> Science. 326, 147-150 (2009).</li>
<li>Niare, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+loci+affecting+resistance+to+human+malaria+parasites+in+a+West+African+mosquito+vector+population%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genetic loci affecting resistance to human malaria parasites in a West African mosquito vector population.</a> Science. 298, 213-216 (2002).</li>
<li>Riehle, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+malaria+infection+in+Anopheles+gambiae+is+regulated+by+a+single+genomic+control+region%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Natural malaria infection in Anopheles gambiae is regulated by a single genomic control region.</a> Science. 312, 577-579 (2006).</li>
</ol>

未声明利益冲突。

在此我们介绍一种 体外 方法及证据：转染LNA-ONs后对附加体基因靶标中单个核苷酸进行靶向转换 A. stephensi 和 A. gambiae 细胞。LNA-ON介导的基因转换需要诱导位点特异性的DNA修复反应；我们的数据表明，蚊虫细胞能够支持这种位点特异性诱变机制。尽管本文所述方法基于游离型靶标的转换，但我们的数据提示，LNA-ON介导的转换可如其他系统中那样，在蚊虫细胞中进一步优化以适用于染色体靶标。因此，基因转换将有助于在无需复杂操作流程和长期药物筛选的情况下，建立稳定转化的蚊虫细胞系。此外，现有的基于活细胞中mRNA特异性荧光标记的技术可用于分选和富集染色体基因靶标已发生转换的蚊虫细胞，从而推动生物学研究。 5-7.

该方法的成功关键在于使用密度为70-80%的健康细胞。此外，在转染过程的每一步中，都必须通过肉眼观察溶液是否有沉淀，以确保质粒或LNA-ONs未从溶液中析出。本方案的一个可能修改是：在开始转染前24小时接种细胞，这建议用于生长缓慢或敏感的细胞系。我们发现质粒DNA与LNA-...

<table><tbody><tr><td>Effectene 转染试剂</td><td>Qiagen</td><td>301425</td><td></td></tr><tr><td>GFP对照质粒（pcDNA6.2-GW/EmGFP-miR-neg）</td><td>Invitrogen</td><td>K4935-00</td><td></td></tr><tr><td>BFP 质粒 (pcDNA5/FRT/TO)</td><td></td><td></td><td>Concordet 博士惠赠&lt;sup&gt;3&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>LNA-ONs </td><td></td><td></td><td>Concordet 博士惠赠&lt;sup&gt;3&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>MEM，厄尔液&amp;rsquo;含谷氨酰胺</td><td>Invitrogen</td><td>11095</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清（FCS）</td><td>Invitrogen</td><td>16000</td><td></td></tr><tr><td>施耐德&amp;rsquo;s &lt;em&gt;果蝇&lt;/em&gt; 培养基</td><td>Invitrogen</td><td>11730</td><td></td></tr><tr><td>非必需氨基酸</td><td>Invitrogen</td><td>11140</td><td></td></tr><tr><td>10% D-葡萄糖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5767</td><td></td></tr><tr><td>青霉素-链霉素抗生素</td><td>Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>6孔培养板</td><td>康宁</td><td>3516</td><td></td></tr></tbody></table>

通过锁核酸修饰的寡核苷酸在蚊子细胞中进行靶基因转染和诱变

Transfection and Mutagenesis of Target Genes in Mosquito Cells by Locked Nucleic Acid-modified Oligonucleotides

疟原虫 疟疾的病原体疟原虫通过受感染蚊子的叮咬传播 按蚊属 每年导致超过2.5亿例新感染的蚊子。尽管数十年的研究，目前仍无有效的疟疾疫苗，凸显了开发新型防控策略的迫切需求。一种创新方法是利用基因改造蚊子，以有效控制疟原虫的传播。通过靶向诱变对蚊子细胞信号通路进行人为改造，已被发现可调控疟原虫的发育。 1从这些研究中，我们能够开始识别可用于转化的潜在基因靶点。传统的靶向诱变依赖于目标基因与大片段DNA分子之间的同源重组。然而，构建和使用此类复杂的DNA分子来获得稳定转化的细胞系，成本高昂、耗时较长，且效率通常较低。因此，采用锁核酸修饰的寡核苷酸（LNA-ONs）的策略为向附加体及染色体DNA基因靶点引入人工单核苷酸替换提供了一种有效的替代方法（详见综述于 2LNA-ON介导的靶向诱变已被用于在酵母和小鼠的培养细胞中对目的基因引入点突变 3,4我们在此证明，LNA-ONs可用于在转染的附加体型靶标中引入单个核苷酸改变，从而在两种情况下均实现由蓝色荧光蛋白（BFP）表达向绿色荧光蛋白（GFP）表达的转换 Anopheles gambiae 和 Anopheles stephensi 细胞。这一转化首次证明，蚊虫细胞中靶基因的有效诱变可由LNA-ON介导，提示该技术可能适用于染色体靶标的诱变 体外 和 体内.

寡核苷酸可用于在Anopheles gambiae和Anopheles stephensi细胞中特异性定点替换转染靶基因的单个核苷酸。

疟原虫是疟疾的致病因子，通过感染的按蚊叮咬传播，每年导致超过2.5亿例新发感染……

本实验的总体目标是展示一种在异常蚊细胞中进行位点定向突变的新策略。首先制备健康的培养细胞用于转染，随后通过加入转染试剂，将相应的对照和测试DNA转入细胞中。该实验步骤的下一步是监测对照细胞的荧光信号，并降低实验组细胞的密度。最后，可在转染后5至7天通过流式细胞术测定实验组细胞中的基因转换频率。最终可获得结果，显示通过锁核酸寡核苷酸诱导的DNA修复实现附加体质粒基因靶点的定点突变。大家好，我是来自加州大学戴维斯分校医学微生物学与免疫学系 Shirley Lockhart 博士实验室的 Nazy Pacor 博士。今天我们将向您展示一种针对按蚊细胞进行定点突变的新型实验方法。我们利用该方法通过定点突变技术研究蚊子先天免疫应答基因的功能。那么我们开始吧。在启动实验方案之前，获取健康且约80%融合的蚊子细胞。如果细胞贴壁过度、生长过密或状态不佳，将导致转染效率低下，并产生不一致的结果。本实验方案以ananais Gambier SUA五B细胞为例进行演示，但也可使用Ananais ensi MS Q4三细胞。开始转染前，将S二培养基置于28°C水浴中预热30分钟。将所有转染试剂材料、质粒和寡核苷酸置于冰上。在组织培养罩内采用无菌技术，吸除旧的培养基，加入等体积新鲜预温的培养基，轻轻冲洗使细胞从培养瓶底部脱落。使用移液器测定细胞浓度，并调整至最终浓度为每毫升1×10⁶个细胞。当调整至终浓度后，向六孔板的每孔中加入一毫升蚊虫细胞。在配制转染试剂材料时，细胞可在室温下保存，同时将转染质粒DNA转移至无菌的微量离心管中。此处以表达绿色荧光蛋白的质粒作为阳性对照，表达蓝色荧光蛋白的质粒作为阴性对照。测试DNA还包括表达BFP的质粒，但其中含有浓度递增的特异性BFP锁核酸（locked nucleic acid）、修饰的寡核苷酸或LNA os。将DNA分装后，每微克质粒DNA和LNA ON，加入99微升kage及EC缓冲液。然后每微克DNA缓慢加入8微升增强剂，涡旋混匀DNA-缓冲液-增强剂混合物。将溶液短暂离心1秒，然后在室温下孵育样品5分钟。每1微克血浆DNA加入10微升修饰试剂，涡旋振荡10秒。短暂离心使溶液沉至管底，随后在室温下孵育10分钟。孵育结束后，通过缓慢加入预热的新鲜培养基，将每管终体积补至1000微升。若加入培养基速度过快，DNA可能在此时析出；可轻轻上下吹打3至4次进行混匀。最后，将一毫升适当的DNA增强剂作用混合物缓慢加入细胞的每个孔中，每次一滴。轻轻摇动培养板，以确保细胞和转染混合物均匀分布。转染后一天，在正常培养条件下孵育细胞，轻轻吸去细胞培养液，并缓慢替换为等体积的新鲜预温培养基。注意不要扰动培养板孔底部的细胞层。转染后两天，在荧光显微镜下观察转染了表达GFP质粒的阳性对照细胞，以确定转染效率。转染后第四天，由于B细胞生长迅速，容易过度生长，因此必须

transfection-mutagenesis-target-genes-mosquito-cells-locked-nucleic

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

酸修饰的寡核苷酸锁定核酸转染和蚊虫细胞的靶基因突变

本文介绍了一种通过使用可被幼虫摄食的壳聚糖/干扰RNA纳米颗粒来抑制疾病媒介蚊虫基因功能的方法。...

壳聚糖/干扰RNA纳米颗粒介导的病媒蚊虫幼虫基因沉默

RNA干扰（RNAi）是揭示基因功能的极为重要的工具。然而，在主要的人类疟疾传播媒介冈比亚按蚊（Anopheles...

向Anopheles gambiae蛹体内递送RNAi触发物

我们报告采用一种人工内含子小RNA表达策略来开发非缺陷型重组病毒 埃及伊蚊 浓核病毒（AaeDV） 体内 递送系统。本文详细描述了rAaeDV载体的构建、包装和定量分析以及幼虫感染的完整实验流程。...

利用重组蚊媒浓核病毒作为基因递送载体对蚊子幼虫基因进行功能分析

高效位点特异性突变的胚胎显微注射技术 致倦库蚊

CRISPR/Cas9 越来越多地被用于在非模式生物中鉴定基因功能。本实验方案描述了如何从制备显微注射混合物、获取并注射蚊子胚胎，到饲养、杂交和筛选注射后的蚊子及其后代以获得目标突变，从而建立致倦库蚊（Culex...

使用 CRISPR/Cas9 技术制备并注射 Culex 蚊胚胎以产生无效突变

双组分GAL4-UAS系统是一种多功能工具，可用于在可控的时空条件下调控基因表达，从而在Anopheles...

利用GAL4-UAS系统在Anopheles gambiae中进行功能遗传学研究

该方案描述了如何在基因组中实现定点修饰 按蚊属 疟疾蚊子使用 φC31 系统。所描述的修饰包括基因组中转基因盒的整合与置换...

定点 φC31介导的整合与盒式交换 按蚊属 疟疾的传播媒介

本文报告的方案展示了在实验室封闭的小型笼具试验中评估用于病媒控制的基因工程蚊子性能的三种替代方法。每种方案均根据蚊子品系所携带的特定修饰（基因驱动或非基因驱动）以及所测量参数的类型进行定制。...

小型笼具中对基因工程按蚊的实验室试验

本文详细介绍了一种利用高分辨率熔解分析对埃及伊蚊（Aedes...

利用高分辨率熔解分析在蚊子Aedes aegypti中检测CRISPR/Cas9诱变后的插入缺失

通过细菌产生的双链RNA（dsRNA）进行口服给药，是一种常用于Caenorhabditis...

有效的口服RNA干扰（RNAi）给药至成年Anopheles gambiae蚊子

本文介绍了一种利用CRISPR-Cas9技术通过胚胎显微注射对蚊子A.

利用 CRISPR-Cas9 对埃及伊蚊 Aedes aegypti 进行基因组编辑

学习使用锁定核酸寡核苷酸在按蚊细胞中进行定点诱变的方法。该技术通过转染和流式细胞术实现基因靶向修饰，为蚊虫基因功能研究和病媒控制策略提供精确工具。

通过锁核酸修饰的寡核苷酸在蚊子细胞中进行靶基因转染和诱变

探索更多视频