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将已麻醉的小鼠固定于立体定位仪中,暴露颅骨。
降低注射器固定装置,直至针尖与颅骨参考点前囟对齐。
根据预先确定的立体定位坐标,定位脑室-室下区或
V-SVZ 是一个主要含有神经干细胞(NSCs)的神经发生微环境,并标记该区域。
移除注射器,并小心钻一个小孔,避免损伤脑组织。
用携带转基因的病毒填充无菌注射器,并将针头置于脑表面。
重新放置注射器并将其下移,直至针尖接触最内层的脑表面。
穿透大脑以到达侧脑室下区(V-SVZ),缓慢注射病毒,短暂停留,然后撤出注射器。
在侧脑室下区(V-SVZ)中,病毒通过膜融合进入神经干细胞(NSCs),其RNA逆转录为DNA。
这段DNA随后整合到NSC基因组中,从而实现对NSCs的稳定遗传修饰。
麻醉后,对一只6至8周龄的小鼠剃除其两耳之间的毛发。接着,使用碘伏(如聚维酮碘)或70%乙醇对皮肤进行消毒。然后,将动物俯卧位固定于立体定位仪上。
使用仪器的耳杆和腭部支撑小心固定其头部。将小鼠置于设定为37摄氏度的加热垫上,并在其眼睛上涂抹眼用润滑剂。
接下来,在头皮上做一个1厘米长的切口,并轻轻牵拉皮肤以暴露颅骨。使用无菌棉签仔细清洁骨面,去除任何残留组织。随后,将已灭菌的注射器通过注射器固定架安装到立体定位仪上。将针头置于前囟位置,并确保背腹轴的0位置与前囟处的颅骨表面齐平。
现在,将注射器移至指定的 x 和 y 坐标位置,然后在游标卡尺上标注 x、y 和 z 方向的目标坐标作为注射位点,并使用外科标记笔在骨头上做标记。
游标卡尺是一种精确的测量工具,可使我们高精度地确定相对于前囟的立体定位坐标。主尺上的0标记表示单位,与主尺对齐的刻度数字则表示十分之一毫米。
随后,将注射器移离工作区域。小心在颅骨上钻孔,避免损伤脑组织。
钻头必须与颅骨表面呈水平方向使用,并需持续监测钻进过程,一旦暴露软脑膜表面即应停止钻孔。切勿损伤下方脑组织。
然后,使用一支装有33号锐利斜面针头的注射器吸取1 µL病毒溶液。将注射器针头垂直于脑表面(90度角)定位。将注射器移回注射位点并缓慢下降,直至针尖接触软脑膜表面并刺入脑组织。
为尽量减少因液体压力过高对脑组织造成的损伤,应缓慢释放病毒悬液。注射后,等待5至10分钟,以减少病毒悬液的回流,然后缓慢撤出注射器。