革兰氏阴性菌内膜和外膜组分的分离

0 次观看3:47 分钟 • August 29th, 2025

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从革兰氏阴性菌的总膜部分(包括内膜和外膜囊泡)开始,悬浮在保持结构完整性的低密度蔗糖中。

为了分离膜囊泡,依次将高密度和中密度蔗糖溶液加入超速离心管中。

接下来,加入膜组分和低密度蔗糖以创建不连续的蔗糖梯度。

超速离心机根据囊泡的密度分离囊泡。

密度较低的内膜囊泡在顶部形成一层。

致密的外膜囊泡富含脂多糖和蛋白质,在中密度和高密度蔗糖溶液的界面处形成一条带。

收集内膜层并丢弃梯度溶液,留下少量。

然后,收集外膜层。

每个馏分添加储存缓冲液以稳定。

心分离囊泡并除去上清液。

悬纯化的膜囊泡,均质化,并在低温下储存以进行进一步分析。

要制备蔗糖梯度,请将聚丙烯或超透明开顶管保持在稍微倾斜的位置。

慢慢加入两毫升更高密度的蔗糖溶液。然后加入四毫升低密度蔗糖溶液。制备密度梯度时,缓慢加入蔗糖溶液,避免层混合。

蔗糖层应略微可见,并显示一般轮廓分明。接下来,加入先前重悬于一毫升低密度等密度蔗糖溶液中的总膜组分。最后,通过加入大约六毫升的低密度等密度蔗糖梯度溶液来填充管的其余部分。

使用摆动桶转子在 288,000 倍 G 和 4 摄氏度下对样品进行超速离心 16 至 23 小时。将 P1000 移液器吸头的末端从该点处切下约 5 毫升。离心完成后,使用移液器从试管中去除上部棕色层。

将含有内膜部分的该层转移到聚碳酸酯瓶中进行超速离心。在53%蔗糖和73%蔗糖之间的界面上方留下约两毫升蔗糖溶液,以确保较低的白色外膜组分不会交叉污染内膜组分。再次使用去除末端的 P1000 移液器吸头,去除外膜层并将其转移到聚碳酸酯瓶中。

用分离的膜储存缓冲液填充聚碳酸酯瓶的剩余空隙,并通过倒置或移液混合。将样品保留在冰上。要收集膜,请将聚碳酸酯瓶在 184,500 倍 G 和 4 摄氏度下超速离心一小时。

最后,弃去上清液并加入 500 至 1,000 微升储存缓冲液。通过 Dounce 均质化重悬膜。将样品收集在两个毫升微量离心管中。

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最后更新:1 八月 2026